丹参酮IIA促进骨髓间充质干细胞的成骨分化潜能并抑制其成脂分化潜能

Tanshinone IIA promotes osteogenic differentiation potential and suppresses adipogenic differentiation potential of bone marrow mesenchymal stem cells.

作者信息Wei Wang, Hangqin Wu, Shujing Feng, Xingrui Huang, Hao Xu, Xinxin Shen, Yajing Fu, Shuchen Fang
PMID39129299
发布时间2024-10
DOI10.3892/mmr.2024.13301

实验完整度

包含体外细胞分化实验(ALP、茜素红、油红、RT-qPCR)、RNA-seq、Western blot、信号通路抑制剂验证及小鼠卵巢切除模型体内实验,多个独立证据层级。

主要模型

小鼠骨髓间充质干细胞(BMSCs) 卵巢切除小鼠模型

重点核对

Tan IIA浓度:5×10-5 mg/l 低氧环境:5% O2 成骨分化诱导:21天,成脂分化诱导:14天 信号通路抑制剂:Akti 1/2(10 nM)和SB431542(10 nM) 动物模型:卵巢切除小鼠,Tan IIA腹腔注射,每两天一次,持续4周

摘要

丹参酮IIA可能通过靶向骨髓间充质干细胞对股骨头缺血性坏死具有治疗作用。Tan IIA对BMSCs成脂和成骨能力的影响及其潜在机制仍有待阐明。在本研究中,BMSCs在低氧环境下用成骨或成脂分化培养基处理,有或没有Tan IIA。通过碱性磷酸酶测定、茜素红染色和成骨标志基因的逆转录定量PCR评估成骨分化潜能。通过油红染色和成脂标志基因的RT-qPCR评估成脂分化潜能。通过RNA-seq和小分子处理在BMSCs成骨和成脂过程中探讨详细机制。在BMSCs成骨分化过程中,Tan IIA处理后ALP水平、矿化结节和成骨标志基因的表达水平显著增加。在BMSCs成脂分化过程中,Tan IIA处理后脂滴和成脂标志基因的表达水平显著降低。RNA-seq数据的基因本体论和京都基因与基因组百科全书分析表明,Tan IIA处理后Akt和TGFβ信号增强。进一步的western blot实验证实,Tan IIA显著激活Akt/cAMP反应元件结合蛋白信号和TGFβ/Smad3信号。应用Akti1/2(一种Akt抑制剂)显著降低了Tan IIA诱导的成骨促进作用,而加入SB431542显著降低了Tan IIA引起的成脂抑制作用。Tan IIA可能通过激活AKT信号促进BMSCs的成骨分化潜能,并通过激活TGFβ信号抑制BMSCs的成脂分化潜能。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Tan IIA在低氧环境下对BMSCs成骨和成脂分化能力的影响及其潜在机制是什么?
核心机制
Tan IIA通过激活AKT/CREB信号通路促进BMSCs成骨分化,通过激活TGFβ/Smad3信号通路抑制BMSCs成脂分化。
主要证据
体外成骨分化实验中ALP水平、矿化结节和成骨标志基因表达增加;成脂分化实验中脂滴和成脂标志基因表达减少。RNA-seq和Western blot显示Akt和TGFβ信号通路激活。使用Akti 1/2和SB431542抑制剂分别逆转了Tan IIA的促成骨和抑成脂效应。体内卵巢切除小鼠模型中,micro-CT显示Tan IIA抑制骨丢失。
研究意义
揭示了Tan IIA通过靶向BMSCs治疗ANFH的潜在机制,为使用Tan IIA治疗ANFH提供了实验依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

BMSCs分离与培养

获取用于分化实验的原代骨髓间充质干细胞。

从6周龄雄性C57BL/6小鼠股骨中分离BMSCs,在含α-MEM、10% FBS和1%青霉素-链霉素的生长培养基中培养,并在低氧(5% O2)环境下进行分化。

2

成骨分化诱导及Tan IIA处理

评估Tan IIA对BMSCs成骨分化的影响。

BMSCs达到90%融合后,用成骨培养基(Procell, cat. no. PD-003-200)诱导21天,加入或不加入5×10-5 mg/l Tan IIA。通过ALP测定、茜素红染色和RT-qPCR检测成骨标志基因。

3

成脂分化诱导及Tan IIA处理

评估Tan IIA对BMSCs成脂分化的影响。

BMSCs用成脂诱导培养基(含高糖DMEM、10% FBS、1 µg/ml胰岛素、0.25 µM地塞米松、0.5 mM IBMX和1%青霉素-链霉素)诱导14天,加入或不加入Tan IIA。通过油红染色和RT-qPCR检测成脂标志基因。

4

机制探索:RNA-seq和Western blot

揭示Tan IIA影响BMSCs分化的潜在信号通路。

对有无Tan IIA处理的BMSCs进行RNA-seq,分析差异表达基因并进行GO和KEGG富集分析。通过Western blot验证Akt/CREB和TGFβ/Smad3信号通路的活化。

5

信号通路抑制剂验证

验证Tan IIA促进成骨和抑制成脂是否分别通过AKT和TGFβ信号通路。

在成骨分化培养基中加入Akti 1/2(10 nM),在成脂分化培养基中加入SB431542(10 nM),与Tan IIA共同处理,检测分化表型和标志基因表达的变化。

6

体内成骨效果验证

评估Tan IIA在体内对骨丢失的抑制作用。

建立小鼠卵巢切除模型,腹腔注射Tan IIA(每两天一次,持续4周),8周后通过micro-CT分析股骨骨形态和密度。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-MEM培养基Gibco; Thermo Fisher Scientific, Inc.12571071
胎牛血清Gibco; Thermo Fisher Scientific, Inc.10-013-CV
青霉素-链霉素Gibco; Thermo Fisher Scientific, Inc.15140-122
成骨培养基Procell Life Science & Technology Co., Ltd.PD-003-200
高糖DMEM培养基Gibco; Thermo Fisher Scientific, Inc.12100-046
胰岛素MilliporeSigmaI2643
地塞米松MilliporeSigmaD4902
3-异丁基-1-甲基黄嘌呤MilliporeSigmaI5879
SB431542Cell Signaling Technology, Inc.14775S
Akti-1/2Tocris Bioscience5773
细胞计数试剂盒-8Beyotime Institute of BiotechnologyC0038
碱性磷酸酶测定试剂盒Beyotime Institute of BiotechnologyP0321S
Western及IP裂解液Beyotime Institute of BiotechnologyP0013
茜素红Beijing Solarbio Science & Technology Co., Ltd.G1452
油红Beijing Solarbio Science & Technology Co., Ltd.G1260
EZ-press RNA纯化试剂盒EZ BioscienceB0004DP
M-MuLV逆转录酶New England BioLabs, Inc.M0253L
SYBR Green预混液Roche Diagnostics4913914001
CFX96实时荧光定量PCR仪Bio-Rad--
BCA蛋白浓度测定试剂盒Beyotime Institute of BiotechnologyP0010S
牛血清白蛋白Beyotime Institute of BiotechnologyST023
兔抗GAPDH抗体Cell Signaling Technology, Inc.2118L
兔抗AKT抗体Cell Signaling Technology, Inc.4865
兔抗磷酸化AKT抗体Cell Signaling Technology, Inc.4060
兔抗CREB抗体Proteintech Group, Inc.12208-1AP
兔抗磷酸化CREB抗体Cell Signaling Technology, Inc.9198S
兔抗磷酸化Smad3抗体Absin Bioscience Inc.abs140144
小鼠抗Smad3抗体Cell Signaling Technology, Inc.9520
辣根过氧化物酶标记二抗Santa Cruz Biotechnology, Inc.sc-2357
ECL化学发光试剂ShareBioSBWB012
NEB Next Ultra RNA文库制备试剂盒New England BioLabs, Inc.E7530L
Illumina HiSeq Xten测序仪Illumina, Inc.--
三溴乙醇----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
BMSCs分离与培养
小鼠品系、周龄、性别、体重(6周龄雄性C57BL/6,约16克);低氧条件(5% O2);生长培养基成分(α-MEM、10% FBS、1%青霉素-链霉素);使用的细胞代数(第3代以内)
阅读提示:Materials and methods 中 'Cell isolation, culture, differentiation and treatment' 部分
成骨分化实验
Tan IIA浓度(5×10-5 mg/l);成骨培养基(Procell, cat. no. PD-003-200);诱导时间(21天);检测时间点(ALP在7天,茜素红和RT-qPCR在21天);对照组(DMSO)
阅读提示:Materials and methods 中 'Cell isolation, culture, differentiation and treatment' 和 'Alkaline phosphatase assay'、'Alizarin red staining' 部分;Figure legends 2
成脂分化实验
Tan IIA浓度(5×10-5 mg/l);成脂诱导培养基成分(高糖DMEM、10% FBS、1 µg/ml胰岛素、0.25 µM地塞米松、0.5 mM IBMX、1%青霉素-链霉素);诱导时间(14天);对照组(DMSO)
阅读提示:Materials and methods 中 'Cell isolation, culture, differentiation and treatment' 和 'Oil red staining' 部分;Figure legend 3
信号通路抑制剂验证
Akti 1/2浓度(10 nM);SB431542浓度(10 nM);分组(DMSO、Tan IIA、Tan IIA + Akti 1/2 或 SB431542);处理时间(与分化时间一致)
阅读提示:Materials and methods 中 'Cell isolation, culture, differentiation and treatment' 部分;Results 部分 'Tan IIA promoted osteogenic differentiation...' 和 'Tan IIA suppresses the adipogenic differentiation...' 及对应图注
体内动物实验
小鼠品系、性别、周龄(10只雌性,8周龄,约18克);卵巢切除模型的建立;Tan IIA给药方式(腹腔注射,每两天一次,持续4周);麻醉剂(三溴乙醇 250 mg/kg);8周后处死;micro-CT分析指标(BV/TV, Tb.N, Tb.Sp)
阅读提示:Materials and methods 中 'Animals' 和 'Micro-computed tomography (CT) analysis' 部分;Figure legend 8