建立大鼠肝癌术后模型并验证JDF疗效
评估JDF对肝癌切除术后复发和转移的影响。
用DMN诱导大鼠肝纤维化,再行原位移植Walker 256细胞建立肝癌模型,术后不同剂量JDF灌胃处理,观察转移情况,并检测M2巨噬细胞浸润。
JDF promotes the apoptosis of M2 macrophages and reduces epithelial-mesenchymal transition and migration of liver cancer cells by inhibiting CSF-1/PI3K/AKT signaling pathway.
包含大鼠原位移植瘤模型、细胞共培养、基因敲低、通路激动剂等,涵盖体内外模型及功能与机制验证。
大鼠肝癌原位移植瘤模型 THP-1来源M2巨噬细胞 MHCC-97H肝癌细胞
JDF给药剂量:12.74、38.22、63.70 g/kg/day(大鼠体内实验) JDF处理浓度:3 mg/mL(细胞实验,IC50) M2巨噬细胞诱导:PMA 320 nM 6 h,IL-4 20 ng/mL 18 h CSF-1敲低:shRNA慢病毒感染THP-1细胞(MOI 30) 细胞迁移检测:划痕实验和Transwell实验
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估JDF对肝癌切除术后复发和转移的影响。
用DMN诱导大鼠肝纤维化,再行原位移植Walker 256细胞建立肝癌模型,术后不同剂量JDF灌胃处理,观察转移情况,并检测M2巨噬细胞浸润。
分析JDF是否影响M2巨噬细胞中CSF-1和CSF-1R的表达及分泌。
THP-1细胞经PMA和IL-4诱导分化为M2,用JDF处理,MTT检测细胞活力,Western blot检测CSF-1/CSF-1R蛋白,ELISA检测上清CSF-1浓度。
确定CSF-1是否为JDF发挥抑制作用的关键介导因子。
构建CSF-1敲低的THP-1细胞并诱导M2分化,收集条件培养基处理MHCC-97H细胞,划痕和Transwell检测迁移;共培养实验检测迁移和EMT标志物。
探究JDF促进M2巨噬细胞凋亡的分子机制。
用JDF或/和CSF-1敲低处理M2,Western blot检测p-PI3K、p-AKT、cleaved caspase-3,流式检测凋亡,并用740Y-P激动剂验证通路特异性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Biological Industries | 01-100-1ACS |
| 胎牛血清 | Biological Industries | C04001-500 | |
| 佛波酯(PMA) | Sigma | 16561-29-8 | |
| 重组人白细胞介素-4 | Abcam | ab155733 | |
| Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | 11668019 | |
| 细胞活力检测 | MTT试剂盒 | Solarbio | M1020 |
| 迁移实验 | 结晶紫 | Beyotime | C02121 |
| 蛋白检测 | RIPA裂解液 | Beyotime | P0013 |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | P0010 | |
| 硝酸纤维素膜 | Pall | 66485 | |
| 脱脂奶粉 | Sangon Biotech | A600669-0250 | |
| 羊抗兔/鼠IgG二抗(HRP标记) | Affinity | S0001/S0002 | |
| GAPDH抗体 | Abways | AB0037 | |
| qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596026 |
| HiScript III一步法逆转录预混液 | Vazyme | R333-01 | |
| ChamQ通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme | -- | |
| 免疫荧光 | EDTA抗原修复液 | Servicebio | G1206 |
| 过氧化氢溶液 | ANNJET | 3032 | |
| 含山羊血清的BSA封闭液 | Beyotime | C0265 | |
| CD206抗体 | Affinity | DF4149 | |
| CD68抗体 | Affinity | DF7518 | |
| HRP标记二抗 | Servicebio | G1223, GB22303 | |
| Triton X-100 | Amresco | X100 | |
| CSF-1R抗体 | Abcam | Ab233387 | |
| DAPI染色液 | Servicebio | G1012 | |
| 抗荧光淬灭封片剂 | Servicebio | G1401 | |
| 凋亡检测 | Annexin V-APC / 7AAD凋亡检测试剂盒 | Procell | P-CA-066 |
| 仪器设备 | CO2培养箱 | Thermo | 371 |
| 显微镜 | Olympus | CKX3-SLP | |
| 荧光显微镜 | ECHO | RVL-100-G | |
| 精密电子天平 | METTLER TOLEDO | ME104E | |
| 细胞活力检测 | 酶标仪 | Thermo | 1510 |
| qPCR | 实时荧光定量PCR仪 | Analytic Jena | qTOWER3G |
| 流式分析 | FACSCanto II流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 数据分析 | SPSS 20.0统计软件 | SPSS Inc | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 大鼠模型建立与给药 | 大鼠品系、周龄、数量;DMN给药剂量和频率;Walker 256细胞数量;JDF给药剂量和持续时间。 阅读提示:Methods 2.1 |
| M2巨噬细胞诱导 | THP-1细胞来源;PMA浓度和处理时间;IL-4浓度和处理时间。 阅读提示:Methods 2.3.1 |
| JDF处理浓度 | JDF溶液制备方法,是否使用冻干粉;细胞实验中的JDF浓度(3 mg/mL)。 阅读提示:Methods 2.4, Results 3.2 |
| CSF-1敲低 | shRNA序列、载体、转染方法、MOI值;敲低效率验证。 阅读提示:Methods 2.3.2 |
| 细胞迁移和共培养 | MHCC-97H细胞来源和培养条件;细胞接种密度;条件培养基制备;处理时间。 阅读提示:Methods 2.6-2.8 |
| PI3K/AKT通路和凋亡检测 | 抗体信息;处理条件(JDF浓度、时间);740Y-P浓度;凋亡检测试剂。 阅读提示:Methods 2.9-2.11 |