体外细胞活性评估
评估吡咯替尼联合曲妥珠单抗对HER2依赖性乳腺癌细胞生长的抑制作用
用结晶紫染色和CCK8法检测细胞活力,用Bliss模型分析协同作用
Pyrotinib and trastuzumab combination treatment synergistically overcomes HER2 dependency in HER2-positive breast cancer: insights from the PHILA trial.
包含体外细胞实验、异种移植瘤模型、TUBO免疫活性模型、临床病例及患者ctDNA测序等多层级验证,并涵盖功能与机制研究。
BT474细胞系 SKBR3细胞系 HCC1954细胞系 TUBO小鼠肿瘤模型
HER2依赖性乳腺癌细胞系(BT474、SKBR3)的处理浓度:吡咯替尼10 nmol/L、曲妥珠单抗10 μg/mL BT474和HCC1954异种移植模型的细胞接种量分别为1×10^7和2×10^6 TUBO肿瘤模型中BALB/c小鼠随机分组,每组7只 PHILA中心队列(18例患者)ctDNA靶向测序,检测HER2信号通路基因改变 ADCC报告生物测定和LDH测定中效应细胞与靶细胞的比例
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估吡咯替尼联合曲妥珠单抗对HER2依赖性乳腺癌细胞生长的抑制作用
用结晶紫染色和CCK8法检测细胞活力,用Bliss模型分析协同作用
检测联合治疗对HER2及其下游信号通路的影响
Western blot检测pHER2、HER2、pEGFR、pHER3、pAKT、pERK等蛋白水平
验证联合治疗在体内对HER2信号通路的抑制效果
建立BT474和HCC1954异种移植瘤模型,给予不同治疗处理,IHC检测相关蛋白
在免疫活性小鼠模型中验证协同抗肿瘤效应
TUBO细胞皮下接种BALB/c小鼠,给予吡咯替尼和抗neu抗体7.16.4治疗,测量肿瘤体积和重量
评估联合治疗在HER2阳性转移性乳腺癌患者中的疗效及HER2膜表达变化
收集患者治疗前后配对活检样本,进行HER2免疫组化染色;评估肿瘤反应
分析HER2信号通路基因改变与PFS的相关性
对PHILA中心队列18例患者的ctDNA进行1021基因靶向测序,分析基因改变
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | HyClone | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | HyClone | -- | |
| 细胞专用培养基 | Procell Life Science & Technology Co. | -- | |
| 药物处理 | 曲妥珠单抗 | Cancer Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences | -- |
| 帕妥珠单抗 | Cancer Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences | -- | |
| ADCC实验 | 利妥昔单抗 | MedChemExpress | -- |
| 动物实验 | 抗neu单克隆抗体7.16.4 | BioXcell | BE0277 |
| Western blotting | pHER2抗体 | CST | 2243S |
| HER2抗体 | CST | 2165S | |
| HER2抗体 | Abcam | ab237715 | |
| 免疫荧光 | HER2抗体 | Abcam | ab214275 |
| Western blotting | pEGFR抗体 | CST | 3777S |
| EGFR抗体 | CST | 4267S | |
| pHER3抗体 | CST | 4791S | |
| HER3抗体 | CST | 12708S | |
| pAKT抗体 | CST | 4060S | |
| AKT抗体 | CST | 4691S | |
| pERK抗体 | CST | 4370S | |
| ERK抗体 | CST | 4695S | |
| GAPDH抗体 | CST | 5174S | |
| Survivin抗体 | CST | 2808S | |
| cPARP抗体 | CST | 9541S | |
| 免疫组化 | Ki67抗体 | CST | 9129S |
| Western blotting | Na-K ATPase抗体 | Abcam | ab76020 |
| 细胞活力检测 | CCK8检测试剂盒 | Dojindo | -- |
| 酶标仪 | Thermo Scientific | -- | |
| 动物实验 | 基质胶 | Corning | 354248 |
| 雌激素缓释片 | Innovative Research of America | -- | |
| 蛋白质提取 | 裂解液 | Beyotime | P0013 |
| 蛋白酶和磷酸酶抑制剂 | Beyotime | P1049 | |
| 膜蛋白提取 | Mem-PER™ Plus膜蛋白提取试剂盒 | Thermo Fisher | 89842 |
| Western blotting | PVDF膜 | Millipore | -- |
| 增强化学发光底物 | Thermo Fisher | 32106 | |
| 免疫沉淀 | MG-132 | Beyotime | S1748 |
| 蛋白A/G磁珠 | MedChemExpress | HY-K0202 | |
| ADCC报告生物测定 | 工程化Jurkat效应细胞 (GS-J2C/CD16A 158 V) | GenScript ProBio | -- |
| Bio-Lite™荧光素酶检测系统 | -- | -- | |
| PBMC分离 | Ficoll-Paque分离液 | GE Healthcare | -- |
| PBMC培养 | 细胞专用培养基 (CM-H158) | Procell Life Science & Technology Co. | CM-H158 |
| LDH检测 | LDH释放检测试剂盒 | Beyotime | C0017 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与处理 | 细胞系种类、培养基类型(DMEM或专用培养基)、血清浓度、处理药物浓度(吡咯替尼10 nmol/L、曲妥珠单抗10 μg/mL)及处理时间 阅读提示:Methods: Cells and cell culture; Cell viability assay |
| 体外细胞活力检测 | 细胞接种密度(6孔板10,000-20,000细胞/孔,96孔板8000细胞/孔)、处理时间(1-3周或72小时)、检测方法(结晶紫染色或CCK8) 阅读提示:Methods: Cell viability assay |
| 动物模型 | 小鼠品系(BALB/c-nu 或 BALB/c)、周龄(5周龄)、细胞接种量(BT474 1×10^7、HCC1954 2×10^6、TUBO 5×10^5)、给药剂量与途径(吡咯替尼10 mg/kg口服每日一次,曲妥珠单抗10 mg/kg腹腔每周两次)、治疗时长(7天或21天) 阅读提示:Methods: Animal experiments |
| 蛋白检测 | 裂解液及抑制剂(Beyotime P0013、P1049)、膜蛋白提取试剂盒(Thermo Fisher 89842)、电泳与转膜条件、抗体特异性及稀释度 阅读提示:Methods: Protein extraction and Western blotting |
| 免疫组化 | 组织固定、切片厚度(5 μm)、抗原修复方法、抗体孵育条件、图像分析软件(QuPath 0.5.1) 阅读提示:Methods: IHC staining |
| ADCC实验 | 效应细胞(Jurkat 细胞或PBMC)与靶细胞比例(3:1)、预处理时间(1小时)、检测方法(荧光素酶报告或LDH释放) 阅读提示:Methods: ADCC reporter bioassay; PBMC isolation and LDH assay |
| 临床队列分析 | 患者样本量(18例)、治疗前采集血液、测序panel(1021基因)、ctDNA提取和测序流程 阅读提示:Methods: Targeted next generation sequencing and bioinformatics analysis |