体外OGD模型建立和药物浓度筛选
确定OGD最佳时间点和C15的有效浓度。
使用CCK-8测定OGD不同时间点(1-4小时)BV2和HT-22细胞活力;使用RT-qPCR检测不同C15浓度(100、250、500、1000 ng/mL)下IL-1β、TNF-α、Arg-1的mRNA表达。
Chemerin 15 peptide reduces neuroinflammation via the ChemR23 receptor after ischemia-reperfusion injury.
包含体外OGD细胞模型、BV2/HT-22共培养、体内tMCAO/R小鼠模型及行为学测试等多个独立证据层级,并进行功能验证和机制验证。
BV2小胶质细胞OGD模型 BV2与HT-22共培养体系 tMCAO/R小鼠缺血再灌注损伤模型
C15浓度:体外500 ng/mL,体内0.3 ng/kg鼻内给药 α-NETA浓度:体外100 nM,体内10 mg/kg腹腔注射 OGD持续时间:3小时 小鼠品系:C57/BL6J雄性,8-10周龄 tMCAO/R模型:阻塞1.5小时后恢复灌注
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定OGD最佳时间点和C15的有效浓度。
使用CCK-8测定OGD不同时间点(1-4小时)BV2和HT-22细胞活力;使用RT-qPCR检测不同C15浓度(100、250、500、1000 ng/mL)下IL-1β、TNF-α、Arg-1的mRNA表达。
评估OGD和C15处理对小胶质细胞表型和炎症因子分泌的影响。
使用流式细胞术检测BV2细胞CD86和CD206表达;使用ELISA检测IL-1β、IL-6、iNOS、TNF-α、Arg-1、IL-10水平。
验证C15通过调节小胶质细胞对神经元的间接保护作用。
使用Transwell共培养BV2和HT-22细胞,OGD后测定HT-22细胞凋亡(Annexin V-APC/PI染色,流式细胞术)。
探讨C15是否通过诱导ChemR23内化调控AMPK/NF-κB信号通路。
使用流式细胞术检测BV2细胞膜表面ChemR23表达;使用免疫荧光观察ChemR23分布;使用Western blot检测p-AMPK和NF-κB p65的表达。
验证C15在缺血再灌注损伤小鼠中的抗炎和神经保护作用。
建立tMCAO/R模型,给予C15和α-NETA,评估梗死体积(TTC染色)、神经元凋亡(NeuN/TUNEL免疫荧光)、小胶质细胞极化(IBA1/CD86/CD206免疫荧光)、炎症因子表达(ELISA)和神经行为学。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 高糖DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Gibco | -- | |
| 胰蛋白酶 | HyClone | -- | |
| 无糖DMEM培养基 | ServiceBio | -- | |
| BV2细胞 | ProCell | CL-0493A | |
| HT-22细胞 | ProCell | CL-0595 | |
| 实验处理 | Chemerin 15肽 | Sicierbio Co. LTD. | -- |
| α-NETA | MCE | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | BOSTER | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| RT-qPCR | ExonScript反转录预混液(含dsDNase) | Exongen | -- |
| Fast SYBR Green qPCR预混液UDG | Exongen | -- | |
| 共培养 | Transwell系统 | Corning | -- |
| 流式细胞术 | PE标记抗小鼠CD86抗体 | BioLegend | 105007 |
| BV421标记抗小鼠CD206抗体 | BioLegend | 141717 | |
| Alexa Fluor 488标记抗小鼠ChemR23抗体 | R&D Systems | FAB7610G | |
| Annexin V-APC/PI细胞凋亡检测试剂盒 | Elabscience | -- | |
| 流式细胞仪 | BD LSRFortessa流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | BOSTER | -- |
| 蛋白酶抑制剂 | BOSTER | -- | |
| 磷酸酶抑制剂 | BOSTER | -- | |
| 蛋白提取 | 细胞膜/细胞质/核膜蛋白提取试剂盒 | Solarbio | -- |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | -- |
| 抗AMPKα兔抗体 | Cell Signaling Technology | 5832 | |
| 抗磷酸化AMPKα (Thr172)兔抗体 | Cell Signaling Technology | 50081 | |
| 抗NF-κB p65重组兔单克隆抗体 | Huabio | HA721307 | |
| 抗ChemR23兔多克隆抗体 | Huabio | ER63003 | |
| 抗β-actin兔单克隆抗体 | BOSTER | BM3873 | |
| HRP标记山羊抗兔IgG抗体 | BOSTER | BA1054 | |
| ChemiDoc MP成像系统 | Bio-Rad | -- | |
| TTC染色 | 2% TTC溶液 | BioFroxx | -- |
| 免疫荧光 | 抗CD86大鼠单克隆抗体 | Thermo Fisher Scientific | 14-0862-82 |
| 抗CD206山羊多克隆抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-46994 | |
| 抗IBA1兔多克隆抗体 | Cell Signaling Technology | 17198 | |
| 抗NeuN重组兔单克隆抗体 | Huabio | ET1602-12 | |
| FITC标记兔抗山羊IgG抗体 | Huabio | HA1007 | |
| Alexa Fluor 647标记山羊抗兔IgG抗体 | Huabio | HA1106 | |
| FITC标记山羊抗兔IgG抗体 | Huabio | HA1124 | |
| Alexa Fluor 488标记山羊抗大鼠IgG抗体 | Cell Signaling Technology | 4416 | |
| DAPI | Absin | -- | |
| TUNEL检测试剂盒 | BOSTER | -- | |
| ELISA | IL-1β ELISA试剂盒 | JINGMEI BIOTECHNOLOGY | -- |
| IL-6 ELISA试剂盒 | JINGMEI BIOTECHNOLOGY | -- | |
| iNOS ELISA试剂盒 | JINGMEI BIOTECHNOLOGY | -- | |
| TNF-α ELISA试剂盒 | JINGMEI BIOTECHNOLOGY | -- | |
| IL-10 ELISA试剂盒 | JINGMEI BIOTECHNOLOGY | -- | |
| Arg-1 ELISA试剂盒 | JINGMEI BIOTECHNOLOGY | -- | |
| 显微成像 | 共聚焦激光扫描显微镜 | Leica | -- |
| 动物实验 | 线栓 | Sinon Technology | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与OGD | BV2和HT-22细胞系来源、培养基成分、OGD处理时间、C15和α-NETA处理浓度及时间 阅读提示:Methods中的Cell culture和C15 peptide synthesis |
| 共培养实验 | Transwell孔径、细胞接种密度、OGD后共培养时间 阅读提示:Methods中的Co-culture system和Additional Figure 3 |
| 流式细胞术 | 抗体克隆号、荧光标记、同型对照、细胞数量 阅读提示:Methods中的Flow cytometry |
| Western blot | 一抗、二抗稀释度及来源,内参蛋白,蛋白上样量 阅读提示:Methods中的Western blot analysis |
| 动物模型 | 小鼠品系、性别、年龄、线栓规格、缺血时间、药物给药途径和剂量 阅读提示:Methods中的Animals和Transient middle cerebral artery occlusion/reperfusion model |
| 行为学测试 | 测试时间点、具体参数(如水迷宫水温、平台位置、训练次数) 阅读提示:Methods中的Neurological function assessment |