网络药理学与分子对接的综合应用:一种草药配方通过细胞焦亡改善H9c2细胞损伤

Integrative applications of network pharmacology and molecular docking: An herbal formula ameliorates H9c2 cells injury through pyroptosis.

作者信息Zhongwen Qi, Zhipeng Yan, Yueyao Wang, Nan Ji, Xiaoya Yang, Ao Zhang, Meng Li, Fengqin Xu, Junping Zhang
PMID36926601
发布时间2023-03
DOI10.1016/j.jgr.2022.03.003

实验完整度

研究包含网络药理学和分子对接的生物信息学分析,以及体外OGD诱导的H9c2细胞实验,验证了Rh2对焦亡相关蛋白和炎症因子的影响,但缺乏体内动物实验验证。

主要模型

H9c2大鼠心肌细胞系 OGD诱导的H9c2细胞损伤模型

重点核对

OGD模型建立:H9c2细胞在无血清无糖DMEM中,缺氧(1% O2)处理12小时 Rh2处理浓度:2 μM 细胞活力检测:CCK-8法 焦亡相关蛋白表达:Western blot检测NLRP3、caspase-1、GSDMD、IL-18、IL-1β和HMGB1 炎症因子水平检测:ELISA试剂盒检测细胞上清中IL-18和IL-1β

摘要

背景 芪参益气滴丸(QSYQ)是一种中药配方,在临床上对心肌梗死(MI)患者的治疗具有显著效果。然而,QSYQ调控MI后细胞焦亡的分子机制仍不完全清楚。因此,本研究旨在揭示QSYQ中活性成分的作用机制。 方法 采用网络药理学和分子对接的综合方法,筛选QSYQ在干预MI后细胞焦亡中的活性成分及相应的共同靶基因。随后,应用STRING和Cytoscape构建PPI网络,并获取候选活性化合物。进行分子对接以验证候选成分与焦亡蛋白的结合能力,并应用氧糖剥夺(OGD)诱导的心肌细胞损伤来探索候选药物的保护作用及机制。 结果 初步筛选出两种类药性化合物,并通过氢键结合验证了人参皂苷Rh2(Rh2)与关键靶点高迁移率族蛋白B1(HMGB1)之间的结合能力。2 μM Rh2可阻止OGD诱导的H9c2细胞死亡,并降低IL-18和IL-1β水平,这可能通过减少NLRP3炎症小体的激活、抑制p12-caspase1的表达以及减弱焦亡执行蛋白GSDMD-N的水平来实现。 结论 我们提出QSYQ中的Rh2可能部分通过改善细胞焦亡来保护心肌细胞,这似乎为MI的治疗潜力提供了新的见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
芪参益气滴丸(QSYQ)中的活性成分是否通过调控心肌细胞焦亡来发挥心肌保护作用,其潜在机制是什么?
核心机制
Rh2通过抑制NLRP3炎症小体激活,降低p12-caspase1表达,减少GSDMD-N水平,从而抑制细胞焦亡,并降低HMGB1蛋白表达,减轻炎症反应。
主要证据
网络药理学和分子对接预测Rh2与HMGB1结合;体外OGD诱导的H9c2细胞实验中,2 μM Rh2显著提高细胞存活率,降低IL-18和IL-1β分泌,并下调焦亡相关蛋白表达。
研究意义
该研究为QSYQ治疗心肌梗死提供了新的机制见解,并提示Rh2可能作为治疗MI的潜在候选药物,但需进一步体内和临床研究验证。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

网络药理学筛选活性化合物

筛选QSYQ中可能干预心肌梗死后细胞焦亡的活性成分及其靶点。

利用TCMSP数据库筛选QSYQ中四味中药的活性化合物,并通过UniProt数据库归一化靶基因,构建草药-化合物-靶点网络。

2

靶点鉴定与PPI网络分析

识别QSYQ、心肌梗死和细胞焦亡的共同靶点,并分析蛋白-蛋白相互作用。

通过GeneCards数据库获取心肌梗死和焦亡相关基因,与药物靶点取交集,利用STRING和Cytoscape构建PPI网络,筛选关键靶点。

3

分子对接验证候选化合物结合能力

验证候选化合物与关键靶蛋白的结合能力。

利用PubChem获取化合物结构,AutoDock Tools进行分子对接,预测结合能和结合位点。

4

OGD模型建立与形态学观察

建立OGD诱导的H9c2细胞损伤模型,并观察细胞焦亡形态学变化。

H9c2细胞在无糖无血清DMEM中,置于缺氧室(1% O2)培养12小时或24小时,通过扫描电镜观察细胞膜孔洞形成。

5

细胞活力与药物毒性检测

评估Rh2对H9c2细胞的毒性及对OGD损伤的保护作用。

CCK-8法检测不同浓度Rh2(0.1-50 μM)处理后的细胞活力,并筛选最佳保护浓度。

6

炎症因子水平检测

检测OGD及Rh2处理后细胞上清液中IL-18和IL-1β水平的变化。

收集细胞上清,使用ELISA试剂盒检测IL-18和IL-1β活性。

7

焦亡相关蛋白表达检测

验证Rh2对焦亡信号通路蛋白表达的影响。

Western blot检测NLRP3、caspase-1、GSDMD、IL-18、IL-1β和HMGB1的蛋白水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
中药系统药理学数据库与分析平台----
Cytoscape----
AutoDock Tools--1.5.6
高糖DMEM培养基----
无糖DMEM培养基----
低氧培养箱Billups-Rothenberg--
细胞增殖-毒性检测试剂盒Yeasen--
锇酸Ted Pella--
扫描电子显微镜HITACHISU8100
IL-18活性检测试剂盒NeoBioscience--
IL-1β活性检测试剂盒NeoBioscience--
抗NLRP3抗体Abcam--
抗Caspase 1抗体Abcam--
抗GSDMD抗体Abcam--
抗IL-18抗体Abcam--
抗IL-1β抗体Abcam--
抗HMGB1抗体Abcam--
人参皂苷Rh2----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养和OGD模型
H9c2细胞培养条件(高糖DMEM, 4.5 g/L);OGD处理(无糖无血清DMEM, 1% O2, 12小时)
阅读提示:材料与方法2.6节
药物处理
Rh2浓度(2 μM)
阅读提示:材料与方法2.7节及结果3.9.1节
细胞活力检测
CCK-8检测步骤,包括孵育时间(3小时)
阅读提示:材料与方法2.7节
炎症因子检测
ELISA检测IL-18和IL-1β的流程,包括离心条件(1200g, 10分钟)和检测波长(450 nm)
阅读提示:材料与方法2.9节
Western blot
抗体稀释比例:NLRP3 1:800, Caspase 1 1:1000, GSDMD 1:500, IL-18 1:1000, IL-1β 1:1000, HMGB1 1:500
阅读提示:材料与方法2.10节