体外胞葬作用模型建立及巨噬细胞表型检测
验证巨噬细胞对凋亡骨肉瘤细胞的胞葬作用及其对巨噬细胞表型的影响。
紫外诱导K7M2细胞凋亡,PKH26标记后与RAW264.7或BMDM共孵育,通过免疫荧光和流式细胞术检测吞噬,并检测M2极化标志物(Arg1、Il4、Il10、CD206)和PD-L1表达。
MerTK-mediated efferocytosis promotes immune tolerance and tumor progression in osteosarcoma through enhancing M2 polarization and PD-L1 expression.
包含体外胞葬实验、基因敲低、通路抑制剂实验、生物信息学分析及小鼠体内模型等多层级验证,并进行功能验证和机制验证。
RAW264.7巨噬细胞系 小鼠骨髓来源巨噬细胞(BMDM) K7M2小鼠骨肉瘤细胞系 BALB/c小鼠皮下移植瘤模型
体外胞葬实验:凋亡K7M2细胞经UV诱导,PKH26标记,与BMDM或RAW264.7共孵育1小时 MerTK抑制:UNC2025 (1 μM) 预处理16小时或MerTK shRNA敲低 体内模型:BALB/c小鼠皮下注射5×10^6 K7M2细胞,肿瘤体积达20 mm³后每日灌胃75 mg/kg UNC2025或溶剂,持续14天 检测指标:流式细胞术检测M2 (CD206+) 和M1 (CD80+) 巨噬细胞、CD8+ T细胞及PD-1+TIM3+耗竭T细胞比例
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证巨噬细胞对凋亡骨肉瘤细胞的胞葬作用及其对巨噬细胞表型的影响。
紫外诱导K7M2细胞凋亡,PKH26标记后与RAW264.7或BMDM共孵育,通过免疫荧光和流式细胞术检测吞噬,并检测M2极化标志物(Arg1、Il4、Il10、CD206)和PD-L1表达。
确定MerTK是否介导骨肉瘤相关胞葬作用。
分析GEO和TARGET数据集评估MerTK表达及通路富集;通过UNC2025抑制或shRNA敲低MerTK,检测胞葬作用的变化。
验证MerTK敲低能否逆转胞葬作用诱导的M2极化和PD-L1表达。
在RAW264.7中敲低MerTK后,进行胞葬作用,检测M2标志物和PD-L1的表达变化。
探究MerTK介导的胞葬作用调节巨噬细胞表型的下游信号通路。
检测胞葬作用后不同时间点p38和STAT3磷酸化水平;使用p38抑制剂SB203580验证通路关系。
评估MerTK抑制对骨肉瘤肿瘤生长及免疫景观的影响。
建立K7M2皮下移植瘤模型,给予UNC2025处理,测量肿瘤体积和重量,并通过流式细胞术分析肿瘤免疫细胞。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 流式细胞术 | 抗F4/80 FITC抗体 | BD Pharmingen | -- |
| 抗CD11b PC7抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| 抗CD206 APC抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| 抗CD80 PE抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| 抗CD16/CD32抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD45 mCHERRY抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD3 FITC抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD4 APCA750抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD8 APC抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗PD1 PE抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗TIM3 PC7抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CD25 BV450抗体 | BioLegend | -- | |
| Western blot | F4/80抗体 | Abcam | -- |
| Arg1抗体 | Abcam | -- | |
| 磷酸化MerTK抗体 | Abcam | -- | |
| MerTK抗体 | Abcam | -- | |
| 磷酸化p38抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| p38抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 磷酸化STAT3抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| STAT3抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| PD-L1抗体 | Proteintech | -- | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | -- | |
| HRP偶联IgG二抗 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 免疫荧光 | FITC偶联IgG二抗 | Beyotime Biotechnology | -- |
| Alexa Fluor 647偶联IgG二抗 | Beyotime Biotechnology | -- | |
| DAPI溶液 | Beyotime Biotechnology | -- | |
| 细胞标记 | PKH26红色荧光细胞连接试剂盒 | Sigma-Aldrich | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 原代细胞培养 | α-MEM培养基 | -- | -- |
| 巨噬细胞集落刺激因子 | Gibco | -- | |
| 凋亡检测 | Annexin V凋亡检测试剂盒(含PI) | BioLegend | -- |
| RNA提取 | Trizol试剂 | -- | -- |
| qRT-PCR | SYBR Premix Ex Taq II | Takara | -- |
| 蛋白提取 | RIPA裂解液 | -- | -- |
| Western blot | PVDF膜 | -- | -- |
| ECL化学发光检测试剂 | Fude Biologic Technology | -- | |
| Bio-Rad XRS化学发光检测系统 | Bio-Rad | -- | |
| 体内实验 | UNC2025 | -- | -- |
| 流式细胞术 | IV型胶原酶 | Gibco | -- |
| 透明质酸酶 | Sigma | -- | |
| 红细胞裂解液 | Solarbio | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外胞葬实验 | 凋亡K7M2细胞的诱导条件(400 μW/cm2紫外照射1小时)、PKH26标记浓度(2×10^-3 mM)、巨噬细胞类型(BMDM或RAW264.7)、共孵育时间(1小时)、UNC2025预处理(1 μM, 16小时)、MerTK shRNA敲低效率 阅读提示:Methods: In vitro efferocytosis assay; Figure legends 1 and 2 |
| 细胞培养 | 细胞系来源(Procell)、培养基(DMEM+10%FBS+1%P/S)、培养条件(37°C、5% CO2)、BMDM分离条件(BALB/c小鼠6-8周龄、M-CSF浓度30 ng/ml、培养5-7天) 阅读提示:Methods: Cell lines; Isolation of mouse primary macrophage |
| 信号通路验证 | MerTK敲低后胞葬作用时间点(0, 15, 30, 60, 120, 240分钟)、p38抑制剂SB203580处理浓度和时间(文中未明确说明具体浓度和时间,需查原文) 阅读提示:Results: Efferocytosis promoted PD-L1 expression and M2 polarization through the MerTK/p38/STAT3 pathway; Figure 4 legend |
| 体内动物模型 | 小鼠品系(BALB/c,6-8周龄,雄性)、K7M2细胞注射量(5×10^6)、皮下注射部位(腋窝)、UNC2025剂量(75 mg/kg)、给药方式(口服灌胃)、给药频率(每日一次)、开始给药时间(肿瘤体积达20 mm³)、治疗持续时间(14天)、每组动物数(n=5) 阅读提示:Methods: Xenograft model mice; Figure 5 legend |
| 流式细胞术分析 | 肿瘤单细胞悬液制备(胶原酶IV 1 mg/mL和透明质酸酶1 mg/mL消化45分钟)、红细胞裂解时间(5分钟)、抗体孵育浓度和时间(文中未明确说明,需查原文)、门控策略 阅读提示:Methods: Flow cytometry; Figure 6 legend |