低血糖敏感的TRPC6功能障碍驱动糖尿病中低血糖诱导的认知损伤

Low-glucose-sensitive TRPC6 dysfunction drives hypoglycemia-induced cognitive impairment in diabetes.

作者信息Chengkang He, Peng Gao, Yuanting Cui, Qiang Li, Yingsha Li, Zongshi Lu, Huan Ma, Yu Zhao, Li Li, Fang Sun, Xiaowei Chen, Hongbo Jia, Daoyan Liu, Gangyi Yang, Hongting Zheng, Zhiming Zhu
PMID33135341
发布时间2020-10
DOI10.1002/ctm2.205

实验完整度

包含体外细胞实验、动物模型、行为学测试、组织学、线粒体功能检测、临床患者样本等多个证据层级,并有功能验证和机制验证。

主要模型

PC12细胞 原代小鼠海马神经元 STZ诱导的1型糖尿病小鼠 TRPC6基因敲除小鼠 2型糖尿病伴RH患者

重点核对

TRPC6表达在糖尿病小鼠海马和PC12细胞中受低糖刺激抑制 TRPC6敲除导致糖尿病小鼠神经元丢失和认知障碍,与RH效果相似 用hyperforin激活TRPC6可改善RH诱导的认知障碍 RH通过抑制TRPC6介导的钙内流,降低AMPK活性,促进Drp1 Ser616磷酸化,导致线粒体分裂

摘要

背景:复发性中度低血糖(RH)是糖尿病患者降糖治疗的主要不良反应,是认知障碍和痴呆的主要危险因素之一。瞬时受体电位 canonical 通道 6(TRPC6)是阿尔茨海默病(AD)的潜在治疗靶点,其表达受葡萄糖浓度高度调节。目的:探讨 RH 是否调节脑中 TRPC6 的表达,以及 TRPC6 功能障碍是否驱动糖尿病中低血糖相关的认知障碍,并揭示其潜在机制。方法:采用组织学染色、体内双光子 Ca2+ 成像和行为学测试分别检测小鼠的神经元死亡、脑网络活动和认知功能。采用高分辨率呼吸测定法和透射电子显微镜评估线粒体结构和功能。进行细胞内钙测量和分子生物学技术以揭示潜在机制。结果:在这里,我们报道在链脲佐菌素诱导的1型糖尿病小鼠中,海马中 TRPC6 的表达被 RH 特异性抑制,但在非糖尿病小鼠中则没有。TRPC6 敲除直接导致糖尿病条件下的神经元丢失、神经元活动和认知功能损害,其程度与 RH 相似。用贯叶金丝桃素激活 TRPC6 可显著改善 RH 诱导的认知障碍。机制上,TRPC6 通过激活腺苷一磷酸活化蛋白激酶抑制经历 RH 发作的糖尿病小鼠海马中的线粒体分裂,并且 TRPC6 介导的胞质钙内流是该过程所必需的。临床上,TRPC6 功能障碍与伴有 RH 的2型糖尿病患者的认知障碍密切相关。结论:我们的结果表明,TRPC6 是对低血糖敏感的关键阳离子通道,通过适当协调糖尿病患者的线粒体动力学,是预防 RH 诱导的认知障碍的有希望的靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
复发性中度低血糖是否通过调节TRPC6表达导致糖尿病相关认知障碍,其机制是什么?
核心机制
RH抑制TRPC6介导的钙内流,降低AMPK活性,促进Drp1 Ser616磷酸化并抑制Ser637磷酸化,导致海马线粒体过度分裂和功能障碍,进而引起神经元死亡和认知障碍。
主要证据
体内外实验表明,RH抑制糖尿病小鼠海马和PC12细胞TRPC6表达;TRPC6敲除小鼠表现出与RH相似的神经元丢失和认知障碍;hyperforin激活TRPC6改善这些损伤;机制涉及TRPC6/Ca2+/AMPK/Drp1通路。
研究意义
TRPC6是低血糖敏感的阳离子通道,可能成为预防糖尿病中RH诱导的认知障碍的治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外细胞实验验证TRPC6对葡萄糖浓度的敏感性

验证TRPC6表达是否受葡萄糖浓度调节

将PC12细胞在正常或高糖培养基中培养,并接受三次低糖刺激(3.0 mM,12小时/次),检测TRPC6表达。

2

动物模型建立及分组

建立糖尿病模型并施加复发性中度低血糖或药物处理,以评估TRPC6的作用

使用STZ诱导1型糖尿病小鼠,并施加RH或hyperforin处理;包括TRPC6敲除小鼠。

3

组织学染色评估神经元损伤和线粒体形态

评估海马神经元死亡、树突丢失和线粒体形态变化

进行免疫染色(NeuN, MAP2)和TUNEL染色检测神经元凋亡;TEM观察线粒体形态。

4

行为学测试

评估认知功能(空间学习记忆、探索能力)

进行Morris水迷宫、Y迷宫和旷场实验。

5

体内双光子钙成像

评估皮层神经元自发钙瞬变频率反映神经活动

在麻醉小鼠上对前额叶皮层2/3层神经元进行双光子钙成像。

6

线粒体功能检测

评估海马线粒体呼吸功能和ATP合成

分离海马线粒体,使用高分辨率呼吸测定法(Oxygraph-2k)测量呼吸能力,并测定ATP水平。

7

机制验证:AMPK和Drp1磷酸化

验证TRPC6下游信号通路(AMPK和Drp1)

Western blot检测AMPK、CaMKK2、Drp1及其磷酸化水平;使用AMPK抑制剂Compound C和激活剂AICAR、钙螯合剂BAPTA-AM、siRNA等干预。

8

临床样本验证

验证糖尿病患者中TRPC6表达与认知功能的关系

收集2型糖尿病伴或不伴RH患者的白细胞,检测TRPC6 mRNA表达和TRPC6介导的钙内流。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
链脲佐菌素文中未明确说明--
甘精胰岛素文中未明确说明--
胰岛素Wanbang, China--
贯叶金丝桃素SigmaPHL89225
Fura 2-AMInvitrogen--
Cal-520AMAAT-Bioquest--
原代神经元分离试剂盒Invitrogen88280
BAPTA-AMMCE--
化合物CMCE--
AICARMCE--
抗TRPC6抗体AlomoneACC-017
抗磷酸化AMPKα抗体CST2535S
抗AMPKα抗体CST2532S
抗Drp1抗体Abcamab184247
抗磷酸化Drp1 (S616)抗体InvitrogenPA5-64821
抗磷酸化Drp1 (S637)抗体Abcamab193216
Oxygraph-2k高分辨呼吸测定仪Oroboros Instruments--
二氢乙啶文中未明确说明--
MitoSOX Red文中未明确说明--
ELISA试剂盒FineTest--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
STZ剂量(50 mg/kg/天)连续5天;随机血糖>16.7 mM定义为糖尿病;胰岛素治疗方案(甘精胰岛素每日一次);小鼠品系(C57BL/6或TRPC6-/-);年龄和体重(约16周龄,体重>27g)
阅读提示:Methods 2.1
RH诱导方案
胰岛素剂量(DM小鼠8.0 U/kg,ND小鼠0.5-0.8 U/kg);给药途径(皮下注射);频率(每两天一次,每周三次,持续8周);空腹条件(给药前4小时);低血糖终止方式(胰岛素注射后2小时喂食)
阅读提示:Methods 2.2
药物处理
hyperforin剂量(6 mg/kg/天,腹腔注射);溶剂(生理盐水);给药时间(持续8周)
阅读提示:Methods 2.2
细胞培养实验
PC12细胞培养条件(1640培养基,10% FBS,5%马血清);低糖刺激(3 mM,12小时/次,共三次);hyperforin浓度(5 µM);Compound C浓度(10 µM);AICAR浓度(1 mM);BAPTA-AM浓度(2 µM)
阅读提示:Methods 2.9
行为学测试
测试时间(最后一次低血糖后第4天开始);Morris水迷宫(平台试验4天,探针试验第5天);Y迷宫和旷场实验的具体参数;每组样本量(n=8-10)
阅读提示:Methods 2.3
电生理成像
双光子钙成像记录前额叶皮层(坐标:1.7 mm外侧,2.9 mm前囟前);Cal-520AM浓度(0.5 mM);记录时间(4-6分钟);帧率(40 Hz)
阅读提示:Methods 2.4
线粒体功能检测
线粒体分离方法(Tissue Mitochondria Isolation Kit);呼吸测定使用底物浓度(glutamate 10 mM, malate 2.5 mM, ADP 10 mM, succinate 1 mM, FCCP, rotenone 0.5 µM, antimycin A 1 µM)
阅读提示:Methods 2.11, 2.12