白细胞介素-22在肺纤维化中的保护功能

Protective function of interleukin-22 in pulmonary fibrosis.

作者信息Peiyu Gu, Dandan Wang, Ji Zhang, Xin Wang, Zhiyong Chen, Lina Gu, Mengying Liu, Fanqing Meng, Jun Yang, Hourong Cai, Yonglong Xiao, Yin Chen, Mengshu Cao
PMID34459137
发布时间2021-08
DOI10.1002/ctm2.509

实验完整度

高

包含临床样本分析、IL-22R敲除和IL-22补充小鼠模型,以及多种细胞体外机制研究,多层次验证了IL-22的保护作用。

主要模型

临床队列(IPF患者和健康对照) 小鼠模型(IL-22R-/-和WT,BLM诱导肺纤维化) 细胞系(A549、HELF) 原代细胞(小鼠AT2、人原代成纤维细胞)

重点核对

IL-22血浆水平在IPF患者中显著降低(58.19±7.20 vs 97.47±5.74 pg/ml),与CT评分负相关,与FEV1% pred正相关 IL-22R-/-小鼠在BLM处理后炎症和纤维化病理评分显著高于WT小鼠(p=0.01和p=0.03) 鼻内滴注重组IL-22(100 ng/50 μl)在BLM模型中显著降低肺泡炎和纤维化评分(p=0.011和p=0.007) IL-22处理抑制A549和小鼠原代AT2细胞中TGF-β1诱导的α-SMA和Collagen-I表达,部分恢复E-cadherin IL-22处理在体外和体内降低TGF-βR2表达和Smad2/3磷酸化

摘要

特发性肺纤维化(IPF)是一种病因未知的慢性进行性瘢痕性疾病。转化生长因子-β(TGF-β)在IPF发生和发展中的致病作用证据充分。在本研究中,我们通过调控TGF-β通路探讨了白细胞介素-22(IL-22)在IPF发病机制中的作用。我们测量了IPF临床队列的参数和组织样本。使用IL-22R敲除(IL-22RA1-/-)和IL-22补充小鼠模型来确定IL-22在体内是否具有保护作用。在机制研究中,我们检测了A549、小鼠原代II型肺泡上皮细胞、人胚肺成纤维细胞和原代成纤维细胞对IL-22和/或TGF-β1的反应。在临床队列中,IPF患者外周血和肺组织中IL-22的表达水平低于健康对照,且较低的IL-22表达与较差的肺功能相关。IL-22R-/-小鼠表现出加剧的炎症和纤维化。相反,通过鼻内滴注重组IL-22增强IL-22可抑制炎症和纤维化表型。在体外,IL-22处理抑制了TGF-β1诱导的代表上皮-间质转化和成纤维细胞-肌成纤维细胞转化的基因标志物,可能通过抑制TGF-β受体表达和随后的Smad2/3激活实现。IL-22似乎通过抑制TGF-β1信号传导对肺纤维化具有保护作用,增强IL-22可能是治疗IPF的有前景的方法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
IL-22是否在IPF发病中起保护作用,其机制是否涉及抑制TGF-β信号通路?
核心机制
IL-22通过抑制TGF-β受体(特别是TGF-βR2)的表达,进而减少Smad2/3的磷酸化,从而抑制TGF-β1诱导的上皮-间质转化和成纤维细胞-肌成纤维细胞转化。
主要证据
临床队列显示IL-22水平与疾病严重程度负相关;IL-22R-/-小鼠加剧BLM诱导的炎症和纤维化,而IL-22补充减轻;体外细胞实验表明IL-22抑制TGF-β通路。
研究意义
作者提出IL-22增强可能是治疗IPF的新方法,并提到IL-22Fc融合蛋白和携带IL-22的乳酸杆菌可用于开发以增强肺中IL-22表达。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本关联分析

评估IPF患者与健康对照之间IL-22表达水平差异及其与疾病严重程度的相关性。

收集IPF患者和健康对照的外周血和肺组织样本,通过ELISA、RT-qPCR和Western blot检测IL-22水平,并通过CT评分和肺功能测试评估疾病严重程度。

2

BLM诱导小鼠模型评估IL-22缺失效应

确定IL-22信号缺失是否会加重博来霉素诱导的肺纤维化。

对WT和IL-22R-/-小鼠气管内注射BLM或NS,在不同时间点(7、14、21天)收集肺组织,评估炎症和纤维化病理,并检测TGF-β通路分子表达。

3

IL-22补充对BLM模型的保护效果

测试外源性IL-22补充是否减轻BLM诱导的炎症和纤维化。

BLM处理后于第1、7、14天鼻内滴注重组IL-22(100 ng),在不同时间点(7、14、21天)评估病理和分子变化。

4

体外细胞实验验证IL-22对TGF-β通路的影响

在细胞水平探究IL-22是否抑制TGF-β1诱导的纤维化标志物和信号激活。

使用A549、小鼠原代AT2细胞、HELF和人原代FB,用TGF-β1和/或IL-22处理,检测上皮-间质转化和成纤维细胞-肌成纤维细胞标志物以及Smad2/3磷酸化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
IL-22 ELISA试剂盒R&D SystemsD2200
A549细胞系Shanghai Cell Bank--
小鼠原代AT2细胞Wuhan ProcellCP-M003
HELF细胞系Shanghai Cell Bank--
重组人IL-22R&D Systems782-IL
重组人TGF-β1R&D Systems240-B
TRIzol试剂Invitrogen15596026
抗IL-22抗体Abcamab181007
抗TGF-β1抗体Abcamab92486
抗α-SMA抗体Abcamab7818
抗TGF-βR2抗体Abcamab61213
抗Smad2/3抗体CST8685S
抗磷酸化Smad2/3抗体CST8828S
抗GAPDH抗体CST14C10
抗波形蛋白抗体Abcamab92547
抗纤连蛋白抗体BD Systems610077
抗I型胶原抗体Abcamab34717
二抗(山羊抗兔)CST7076S
二抗(兔抗小鼠)CST7074S
博来霉素Nippon Kayaku--
重组IL-22(小鼠)R&D Systems582-ML
气管内定量试剂给药装置Yuyan InstrumentsHRH-MAG4
抗TGF-β1抗体Abcamab92486
抗TGF-βR2抗体Abcamab61213

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床样本
样本来源:IPF和健康对照的外周血;肺组织;IL-22水平(ELISA和mRNA)
阅读提示:Methods 2.1 和 Results 3.1,图1
动物模型
小鼠品系(C57BL/6,WT和IL-22R-/-),年龄6-8周;BLM剂量5 mg/kg;IL-22补充剂量100 ng/50 μl(鼻内滴注);给药时间;每组动物数(n=6)
阅读提示:Methods 2.2 和 Results 3.3-3.4,图3-4
细胞实验
细胞类型:A549、小鼠原代AT2、HELF、人原代FB;处理浓度(IL-22 10 ng/ml,TGF-β1 5 ng/ml);处理时间(72h, 2h, 0-120min)
阅读提示:Methods 2.5 和 Results 3.5,图5-6
分子检测
抗体信息(anti-IL-22, anti-TGF-β1等);PCR引物序列;内参基因(GAPDH)
阅读提示:Methods 2.6-2.7 和 Table 1