ADSC分离和鉴定
获取并验证人脂肪间充质基质细胞(ADSC)的间充质干细胞特性和纯度。
从健康供体脂肪组织经胶原酶消化分离ADSC,培养后通过流式细胞术检测CD44、CD73、CD90、CD105表面标志物表达。
ADSCs-derived exosomes ameliorate hepatic fibrosis by suppressing stellate cell activation and remodeling hepatocellular glutamine synthetase-mediated glutamine and ammonia homeostasis.
包含体内肝纤维化小鼠模型、体外LX-2和AML12细胞实验、RNA-seq转录组分析以及Glul抑制剂回补实验等多个独立证据层级,且包含功能验证和机制验证。
DEN/CCl4诱导的肝纤维化小鼠模型 TGF-β活化的LX-2人肝星状细胞系 AML12小鼠肝细胞系 原代小鼠肝星状细胞
ADSC-EXO给药剂量:10 μg/g,尾静脉注射,两周内三次 肝纤维化模型建立:DEN(20 mg/kg)每周一次共2周,然后CCl4(5 ml/kg)每周三次共6周 LX-2活化条件:TGF-β 10 ng/ml处理12小时,ADSC-EXO 200 μg/ml处理24小时 AML12损伤条件:TGF-β1 5 ng/ml处理48小时,ADSC-EXO 200 μg/ml处理24小时 Glul抑制剂MSO剂量:10 mg/kg,腹腔注射,在ADSC-EXO治疗后立即给予,两周内三次
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并验证人脂肪间充质基质细胞(ADSC)的间充质干细胞特性和纯度。
从健康供体脂肪组织经胶原酶消化分离ADSC,培养后通过流式细胞术检测CD44、CD73、CD90、CD105表面标志物表达。
获得并验证ADSC来源的外泌体(ADSC-EXO)的形态、大小和标志物。
收集ADSC条件培养基,通过超速离心分离外泌体,并用TEM观察形态、NTA分析粒径和浓度、Western blot检测外泌体标志物。
评估ADSC-EXO对DEN/CCl4诱导的肝纤维化的治疗效果。
将小鼠随机分组,用DEN/CCl4诱导肝纤维化,然后尾静脉注射ADSC-EXO或PBS,检测肝功能、肝脏组织学、胶原沉积和促纤维化标志物。
验证ADSC-EXO是否能抑制体外活化的肝星状细胞活化及增殖。
用TGF-β活化LX-2细胞,然后ADSC-EXO处理,通过Western blot、qRT-PCR和CCK8检测HSC活化标志物、促纤维化基因和增殖能力。
探索ADSC-EXO治疗肝纤维化的潜在分子机制,特别是谷氨酰胺代谢相关通路。
提取对照和ADSC-EXO处理小鼠肝脏RNA,进行RNA-seq,分析差异表达基因并进行GO和KEGG富集分析,并验证关键基因表达。
探讨ADSC-EXO是否通过上调损伤肝细胞中Glul表达,进而影响HSC活化。
用TGF-β1处理AML12细胞模拟损伤肝细胞,ADSC-EXO处理,收集条件培养基(CM)处理活化的原代小鼠HSC,检测Glul、α-SMA和Collagen I蛋白表达。
验证Glul上调是否是ADSC-EXO抗纤维化效应的关键机制。
在ADSC-EXO治疗的基础上给予Glul抑制剂MSO,检测肝纤维化程度、肝脏组织学、肝功能和Glul表达,以及氨和谷氨酰胺代谢指标。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| ADSC分离和培养 | I型胶原酶 | Gibco | -- |
| DMEM-F12培养基 | Gibco | -- | |
| 碱性成纤维细胞生长因子 | Stem Cell | -- | |
| ADSC鉴定 | FACSCalibur流式细胞仪 | BD | -- |
| 抗人CD44-PE抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗人CD90-FITC抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗人CD73-APC抗体 | eBioscience | -- | |
| 抗人CD105-PerCP-cy5.5抗体 | eBioscience | -- | |
| 外泌体分离 | 超速离心管 | Beckman | 355618 |
| 外泌体表征 | NanoSight300纳米颗粒分析仪 | Malvern Instruments Ltd | -- |
| 日立HT7800电子显微镜 | Hitachi | HT-7800 | |
| 肝纤维化模型 | 二乙基亚硝胺 | Sigma-Aldrich | -- |
| Glul抑制 | 甲硫氨酸亚砜亚胺 | Sigma-Aldrich | -- |
| 细胞培养 | 高糖DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| 细胞活化 | 转化生长因子-β1 | Novoprotein | -- |
| 细胞培养 | AML12特异性培养基 | Procell | -- |
| 肝星状细胞培养基 | Procell | CM-M041 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime Biotech | -- | |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 抗Alix抗体 | CST | 92880S | |
| 抗Tsg101抗体 | ABclonal | A2216 | |
| 抗CD63抗体 | Santa Cruz | sc5275 | |
| 抗Calnexin抗体 | ABclonal | A4846 | |
| 抗α-SMA抗体 | Abcam | ab124964 | |
| 抗I型胶原抗体 | Absin | abs131984 | |
| 抗谷氨酰胺合成酶抗体 | ABclonal | A19641 | |
| 抗Lamin B抗体 | Proteintech | 66095-1-Ig | |
| 抗GAPDH抗体 | CST | 2118S | |
| ECL化学发光试剂盒 | Abcam | -- | |
| Amersham Imager 600化学发光成像系统 | -- | -- | |
| RT-qPCR | Trizol试剂 | Invitrogen | -- |
| EasyScript®一步法cDNA合成试剂盒 | TransGene Biotech | -- | |
| ChamQ SYBR qPCR预混液 | Vazyme | -- | |
| LightCycler96实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| 肝纤维化模型 | 全自动生化分析仪 | Rayto | -- |
| 免疫组织化学 | 抗α-SMA抗体 | Abcam | ab124964 |
| 抗I型胶原抗体 | Absin | abs131984 | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG | -- | -- | |
| DAB显色液 | ZSGO-BIO | -- | |
| 免疫荧光 | 抗小鼠ALB抗体 | Novus Biologicals | NB600-41,532 |
| 抗谷氨酰胺合成酶抗体 | ABclonal | A19641 | |
| DAPI染色液 | -- | -- | |
| 奥林巴斯BX53荧光显微镜 | OLYMPUS | BX53 | |
| ELISA | III型胶原ELISA试剂盒 | RuiXin-Bio | SU-B29885 |
| 透明质酸ELISA试剂盒 | RuiXin-Bio | SU-B20667 | |
| CCK8实验 | 细胞计数试剂盒-8 | Beyotime | -- |
| SpectraMax M5酶标仪 | Molecular Devices | -- | |
| RNA-seq | Agilent 2100生物分析仪 | Agilent Technologies | -- |
| Illumina基因组分析仪平台 | Illumina | -- | |
| 血浆氨检测 | 氨检测试剂盒 | Abcam | ab83360 |
| 谷氨酸检测 | 谷氨酸检测试剂盒 | Abcam | ab138883 |
| 谷氨酰胺检测 | 谷氨酰胺检测试剂盒 | Abcam | ab197011 |
| GSH检测 | 谷胱甘肽检测试剂盒 | Abcam | ab235670 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| ADSC分离和鉴定 | 脂肪组织来源、消化条件(0.1%胶原酶I 45分钟)、培养条件(DMEM-F12、10% FBS、1%青霉素/链霉素、10 ng/ml bFGF)、传代密度 阅读提示:Methods:Isolation and identification of ADSCs |
| ADSC-EXO分离和表征 | 超速离心条件(120,000 g 70分钟)、外泌体浓度和粒径分布 阅读提示:Methods:Separation and characterization of ADSC-EXO |
| 肝纤维化模型和ADSC-EXO治疗 | DEN剂量(20 mg/kg)和注射频率、CCl4剂量(5 ml/kg)和注射频率、ADSC-EXO剂量(10 μg/g)和注射途径及频率、每组动物数(n=5或6) 阅读提示:Methods:Liver fibrosis mouse model and grouping; Figure 2A |
| 体外细胞实验 | LX-2活化条件(TGF-β 10 ng/ml 12小时)、ADSC-EXO处理浓度和时间(200 μg/ml 24小时)、AML12损伤条件(TGF-β1 5 ng/ml 48小时) 阅读提示:Methods:Cell lines and cell culture; Figure 4 legend |
| 机制验证:MSO抑制Glul | MSO剂量(10 mg/kg)和给药方式(腹腔注射)及时间(ADSC-EXO治疗后) 阅读提示:Methods:Liver fibrosis mouse model and grouping; Figure 6A |