ADSC来源的外泌体通过抑制星状细胞活化和重塑肝细胞谷氨酰胺合成酶介导的谷氨酰胺和氨稳态来改善肝纤维化

ADSCs-derived exosomes ameliorate hepatic fibrosis by suppressing stellate cell activation and remodeling hepatocellular glutamine synthetase-mediated glutamine and ammonia homeostasis.

作者信息Baitong Wu, Jiuxing Feng, Jingyi Guo, Jian Wang, Guanghui Xiu, Jiaqi Xu, Ke Ning, Bin Ling, Qingchun Fu, Jun Xu
PMID36195966
发布时间2022-10-04
DOI10.1186/s13287-022-03049-x

实验完整度

高

包含体内肝纤维化小鼠模型、体外LX-2和AML12细胞实验、RNA-seq转录组分析以及Glul抑制剂回补实验等多个独立证据层级,且包含功能验证和机制验证。

主要模型

DEN/CCl4诱导的肝纤维化小鼠模型 TGF-β活化的LX-2人肝星状细胞系 AML12小鼠肝细胞系 原代小鼠肝星状细胞

重点核对

ADSC-EXO给药剂量:10 μg/g,尾静脉注射,两周内三次 肝纤维化模型建立:DEN(20 mg/kg)每周一次共2周,然后CCl4(5 ml/kg)每周三次共6周 LX-2活化条件:TGF-β 10 ng/ml处理12小时,ADSC-EXO 200 μg/ml处理24小时 AML12损伤条件:TGF-β1 5 ng/ml处理48小时,ADSC-EXO 200 μg/ml处理24小时 Glul抑制剂MSO剂量:10 mg/kg,腹腔注射,在ADSC-EXO治疗后立即给予,两周内三次

摘要

背景:肝纤维化是慢性肝病发展过程中的常见病理阶段,最终可能导致肝硬化。越来越多的证据表明,基于脂肪间充质基质细胞(ADSC)的疗法因其优异的特性,包括组织修复能力和免疫调节作用,在肝损伤疾病中显示出很好的治疗潜力。然而,细胞疗法仍受限于一些如移植效率和免疫反应等问题,这阻碍了基于ADSC的疗法的发展。因此,ADSC来源的细胞外囊泡(EV),特别是外泌体(ADSC-EXO),作为有希望的无细胞疗法来改善肝纤维化。ADSC-EXO在肝纤维化中的作用和潜在机制仍不清楚。方法:通过腹膜内连续注射二乙基亚硝胺(DEN)两周,然后注射四氯化碳(CCl4)六周,建立肝纤维化小鼠模型。随后,肝纤维化小鼠通过尾静脉输注ADSC-EXO(10 μg/g)或PBS,两周内三次。为了评估ADSC-EXO的抗纤维化能力,我们通过组织病理学检查、血清学检测和天狼星红染色检测肝脏形态和ECM沉积,通过qRT-PCR检测促纤维化标志物。用TGF-β(10 ng/ml)处理LX-2细胞12小时,用于评估ADSC-EXO对活化肝星状细胞(HSC)的影响。进行RNA-seq进一步分析ADSC-EXO在肝纤维化中的潜在调控机制。结果:在本研究中,我们获得了分离的ADSC,收集并分离了ADSC来源的外泌体。我们发现ADSC-EXO治疗能有效改善DEN/CCl4诱导的肝纤维化,通过改善小鼠肝功能并减少肝脏ECM沉积。此外,ADSC-EXO干预可以逆转体内外的促纤维化表型,包括抑制HSC活化和抑制促纤维化标志物。此外,RNA-seq分析进一步证实,肝纤维化小鼠肝静脉周围肝细胞中降低的谷氨酰胺合成酶(Glul)可以被ADSC-EXO治疗显著上调;同时,谷氨酰胺和氨代谢相关的关键酶OAT上调,而GLS2被ADSC-EXO治疗下调。此外,谷氨酰胺合成酶抑制剂会消除ADSC-EXO对肝纤维化的治疗作用。结论:这些发现表明,ADSC来源的外泌体可以通过抑制HSC活化和重塑由肝细胞谷氨酰胺合成酶介导的谷氨酰胺和氨代谢来有效缓解肝纤维化,这可能成为肝纤维化疾病的一种新颖且有前景的抗纤维化疗法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ADSC来源的外泌体(ADSC-EXO)是否能够改善肝纤维化及其潜在的作用机制。
核心机制
ADSC-EXO通过抑制肝星状细胞活化,并上调肝静脉周围肝细胞中的谷氨酰胺合成酶(Glul),同时上调OAT、下调GLS2,从而重塑谷氨酰胺和氨代谢,改善氨稳态和肝脏微环境。
主要证据
在DEN/CCl4诱导的肝纤维化小鼠模型中,ADSC-EXO治疗改善肝功能、减少ECM沉积、抑制HSC活化;RNA-seq显示Glul上调,Western blot和qRT-PCR验证;体外AML12细胞条件培养基实验显示Glul上调的肝细胞分泌物抑制活化HSC的α-SMA和Collagen I表达;Glul抑制剂MSO消除ADSC-EXO的治疗效果。
研究意义
研究表明ADSC-EXO可能作为一种多功能、高效的无细胞疗法,用于治疗肝纤维化疾病。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

ADSC分离和鉴定

获取并验证人脂肪间充质基质细胞(ADSC)的间充质干细胞特性和纯度。

从健康供体脂肪组织经胶原酶消化分离ADSC,培养后通过流式细胞术检测CD44、CD73、CD90、CD105表面标志物表达。

2

ADSC-EXO的收集和表征

获得并验证ADSC来源的外泌体(ADSC-EXO)的形态、大小和标志物。

收集ADSC条件培养基,通过超速离心分离外泌体,并用TEM观察形态、NTA分析粒径和浓度、Western blot检测外泌体标志物。

3

肝纤维化小鼠模型的建立和ADSC-EXO治疗

评估ADSC-EXO对DEN/CCl4诱导的肝纤维化的治疗效果。

将小鼠随机分组,用DEN/CCl4诱导肝纤维化,然后尾静脉注射ADSC-EXO或PBS,检测肝功能、肝脏组织学、胶原沉积和促纤维化标志物。

4

体外验证ADSC-EXO对活化HSC的作用

验证ADSC-EXO是否能抑制体外活化的肝星状细胞活化及增殖。

用TGF-β活化LX-2细胞,然后ADSC-EXO处理,通过Western blot、qRT-PCR和CCK8检测HSC活化标志物、促纤维化基因和增殖能力。

5

RNA-seq分析ADSC-EXO处理的转录组变化

探索ADSC-EXO治疗肝纤维化的潜在分子机制,特别是谷氨酰胺代谢相关通路。

提取对照和ADSC-EXO处理小鼠肝脏RNA,进行RNA-seq,分析差异表达基因并进行GO和KEGG富集分析,并验证关键基因表达。

6

验证ADSC-EXO对肝细胞Glul表达和细胞间通讯的影响

探讨ADSC-EXO是否通过上调损伤肝细胞中Glul表达,进而影响HSC活化。

用TGF-β1处理AML12细胞模拟损伤肝细胞,ADSC-EXO处理,收集条件培养基(CM)处理活化的原代小鼠HSC,检测Glul、α-SMA和Collagen I蛋白表达。

7

Glul抑制剂(MSO)阻断实验

验证Glul上调是否是ADSC-EXO抗纤维化效应的关键机制。

在ADSC-EXO治疗的基础上给予Glul抑制剂MSO,检测肝纤维化程度、肝脏组织学、肝功能和Glul表达,以及氨和谷氨酰胺代谢指标。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
I型胶原酶Gibco--
DMEM-F12培养基Gibco--
碱性成纤维细胞生长因子Stem Cell--
FACSCalibur流式细胞仪BD--
抗人CD44-PE抗体eBioscience--
抗人CD90-FITC抗体eBioscience--
抗人CD73-APC抗体eBioscience--
抗人CD105-PerCP-cy5.5抗体eBioscience--
超速离心管Beckman355618
NanoSight300纳米颗粒分析仪Malvern Instruments Ltd--
日立HT7800电子显微镜HitachiHT-7800
二乙基亚硝胺Sigma-Aldrich--
甲硫氨酸亚砜亚胺Sigma-Aldrich--
高糖DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素Gibco--
转化生长因子-β1Novoprotein--
AML12特异性培养基Procell--
肝星状细胞培养基ProcellCM-M041
RIPA裂解液----
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime Biotech--
PVDF膜Millipore--
抗Alix抗体CST92880S
抗Tsg101抗体ABclonalA2216
抗CD63抗体Santa Cruzsc5275
抗Calnexin抗体ABclonalA4846
抗α-SMA抗体Abcamab124964
抗I型胶原抗体Absinabs131984
抗谷氨酰胺合成酶抗体ABclonalA19641
抗Lamin B抗体Proteintech66095-1-Ig
抗GAPDH抗体CST2118S
ECL化学发光试剂盒Abcam--
Amersham Imager 600化学发光成像系统----
Trizol试剂Invitrogen--
EasyScript®一步法cDNA合成试剂盒TransGene Biotech--
ChamQ SYBR qPCR预混液Vazyme--
LightCycler96实时荧光定量PCR仪Roche--
全自动生化分析仪Rayto--
抗α-SMA抗体Abcamab124964
抗I型胶原抗体Absinabs131984
HRP标记的山羊抗兔IgG----
DAB显色液ZSGO-BIO--
抗小鼠ALB抗体Novus BiologicalsNB600-41,532
抗谷氨酰胺合成酶抗体ABclonalA19641
DAPI染色液----
奥林巴斯BX53荧光显微镜OLYMPUSBX53
III型胶原ELISA试剂盒RuiXin-BioSU-B29885
透明质酸ELISA试剂盒RuiXin-BioSU-B20667
细胞计数试剂盒-8Beyotime--
SpectraMax M5酶标仪Molecular Devices--
Agilent 2100生物分析仪Agilent Technologies--
Illumina基因组分析仪平台Illumina--
氨检测试剂盒Abcamab83360
谷氨酸检测试剂盒Abcamab138883
谷氨酰胺检测试剂盒Abcamab197011
谷胱甘肽检测试剂盒Abcamab235670

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
ADSC分离和鉴定
脂肪组织来源、消化条件(0.1%胶原酶I 45分钟)、培养条件(DMEM-F12、10% FBS、1%青霉素/链霉素、10 ng/ml bFGF)、传代密度
阅读提示:Methods:Isolation and identification of ADSCs
ADSC-EXO分离和表征
超速离心条件(120,000 g 70分钟)、外泌体浓度和粒径分布
阅读提示:Methods:Separation and characterization of ADSC-EXO
肝纤维化模型和ADSC-EXO治疗
DEN剂量(20 mg/kg)和注射频率、CCl4剂量(5 ml/kg)和注射频率、ADSC-EXO剂量(10 μg/g)和注射途径及频率、每组动物数(n=5或6)
阅读提示:Methods:Liver fibrosis mouse model and grouping; Figure 2A
体外细胞实验
LX-2活化条件(TGF-β 10 ng/ml 12小时)、ADSC-EXO处理浓度和时间(200 μg/ml 24小时)、AML12损伤条件(TGF-β1 5 ng/ml 48小时)
阅读提示:Methods:Cell lines and cell culture; Figure 4 legend
机制验证:MSO抑制Glul
MSO剂量(10 mg/kg)和给药方式(腹腔注射)及时间(ADSC-EXO治疗后)
阅读提示:Methods:Liver fibrosis mouse model and grouping; Figure 6A