LncRNA牛磺酸上调基因1通过调节核质穿梭蛋白HuR在神经元缺血条件下发挥促凋亡作用

LncRNA Taurine Up-Regulated 1 plays a proapoptotic role by regulating nuclear-cytoplasmic shuttle of HuR under the condition of neuronal ischemia.

作者信息Xiaocheng Shi, Wei Wei, Yichun Zou, Lixin Dong, Hengping Wu, Jiazhi Jiang, Xiang Li, Jincao Chen
PMID36367790
发布时间2022-12-14
DOI10.1097/WNR.0000000000001848

实验完整度

中

包含体外细胞模型、生物信息学预测、fRIP、Western blot、RT-qPCR、CCK-8等实验,但缺少动物模型和患者样本等体内验证,实验层级较单一。

主要模型

小鼠海马神经元细胞系HT22 体外氧糖剥夺(OGD)模型

重点核对

HT22细胞系来源:Procell,武汉,中国 OGD条件:37°C,0.5% O2,94.5% N2,5% CO2 TUG1敲低方法:ASO(核内)和siRNA(胞质) OGD处理时间:4、6、12小时 fRIP实验:甲醛交联,HuR抗体(A19622)

摘要

本研究旨在通过TUG1与RNA结合蛋白HuR的直接相互作用,确定TUG1是HT22(小鼠海马神经元细胞)凋亡的重要调控因子。为了研究TUG1在缺血背景下的作用,我们使用经氧糖剥夺处理的小鼠海马神经元细胞建立体外缺血模型。采用生物信息学分析和甲醛RNA免疫沉淀(fRIP)研究其生物学功能。采用Western blot和逆转录聚合酶链反应检测相关分子的表达。通过细胞增殖和细胞毒性实验检测神经元凋亡。在OGD处理下,TUG1在HT22细胞中表现出定位特异性表达模式。生物信息学分析显示TUG1与HuR之间存在强相关性,且这一相互作用随后通过fRIP-qPCR得到证实。我们发现缺血处理后,HuR从细胞核转位至细胞质,随后靶向并稳定COX-2 mRNA,导致COX-2 mRNA水平升高和HT22细胞凋亡。此外,核特异性敲低TUG1阻止了HuR向细胞质的转位,降低了COX-2 mRNA的表达,从而提高了细胞活力并部分逆转了凋亡。总之,实验证明TUG1通过促进HuR向细胞质的转移并稳定COX-2 mRNA加速了凋亡过程。这些结果为缺血性卒中的治疗靶点提供了有用信息。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
LncRNA TUG1在神经元缺血条件下是否通过调控RNA结合蛋白HuR的核质穿梭来影响细胞凋亡?
核心机制
TUG1在细胞核内与HuR相互作用,促进HuR从细胞核转位至细胞质,进而稳定COX-2 mRNA,导致COX-2表达升高和神经元凋亡。
主要证据
在OGD处理的HT22细胞中,fRIP-qPCR证实TUG1与HuR直接结合;Western blot显示HuR核转位;ASO敲低核内TUG1可逆转HuR转位并降低COX-2 mRNA水平和凋亡。
研究意义
TUG1和HuR在神经元缺血缺氧中发挥促凋亡作用,抑制其表达或阻止其亚细胞转位可能达到抗凋亡效果,为缺血性卒中的治疗提供潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

OGD模型建立和TUG1表达检测

建立体外缺血模型,检测TUG1在OGD处理下的表达变化及其亚细胞定位。

使用HT22细胞,在OGD条件下培养,通过RT-qPCR检测总RNA中TUG1的表达水平,并通过分离核质部分检测TUG1的亚细胞分布。

2

生物信息学预测和fRIP验证TUG1与HuR相互作用

预测并验证TUG1与HuR之间的直接相互作用。

使用RPISeq、RBPmap、RBPDB和CatRAPID进行预测,并通过fRIP-qPCR实验验证OGD条件下TUG1与HuR的结合。

3

检测OGD下HuR的亚细胞定位变化

检测OGD处理后HuR蛋白在细胞核和细胞质中的表达变化,以确定其是否发生转位。

使用Western blot检测总HuR蛋白、核内和胞质内HuR蛋白水平,分别以β-actin和H3作为内参。

4

敲低TUG1并观察HuR定位变化

验证TUG1是否调控HuR的核质穿梭,并区分核内和胞质TUG1的作用。

使用ASO-TUG1核内敲低和siRNA-TUG1胞质敲低,在OGD条件下检测HuR在核质中的分布。

5

敲低TUG1对细胞凋亡和COX-2表达的影响

评估TUG1敲低对细胞存活和凋亡的影响,以及COX-2 mRNA表达的变化。

使用CCK-8检测细胞活力,通过RT-qPCR检测COX-2 mRNA表达,并利用fRIP-qPCR验证HuR与COX-2 mRNA的结合。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
HT22细胞专用培养基ProcellCM-0697
DMEM培养基ProcellPM150210
胎牛血清Procell164210-500
青霉素/链霉素ProcellPB180120
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen11668-027
siRNA-TUG1Sangon--
反义寡核苷酸-TUG1Sangon--
无糖DMEMProcellPM150270
三气培养箱Heraeus--
Western和IP细胞裂解液BeyotimeP0013
核质蛋白提取试剂盒BeyotimeP0027
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0012
TBS-T缓冲液NCM BiotechWB21000
脱脂奶粉ServicebioG5002
抗β-肌动蛋白抗体ABclonalAC026
HuR抗体ABclonalA19622
增强化学发光检测试剂盒Thermo Fisher Scientific32209
化学发光成像系统Tanon2500
CCK-8试剂盒VazymyA311-01
磷酸盐缓冲液ServicebioG4202
DMEM培养基ServicebioG4510
甲醛----
甘氨酸----
二硫苏糖醇----
蛋白酶抑制剂混合物Thermo ScientificPI-87785
RNase抑制剂Thermo Scientific10777019
RIPA裂解液ServicebioG2002
NP-40缓冲液----
蛋白酶抑制剂混合物Roche4693132001
蛋白G磁珠MCEHY-K0202
RNA纯化浓缩试剂盒--R1014
Trizol试剂TakaraT9108
细胞质和细胞核RNA纯化试剂盒Norgen21000
HiScript Q RT SuperMix for qPCR反转录试剂盒VazymyR123
ChamQ Universal SYBR qPCR Master MixVazymyQ711
Covaris超声破碎仪----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
HT22细胞来源(Procell,武汉,中国),培养基(HT22细胞专用培养基,含DMEM、10% FBS、1% P/S),培养条件(37°C,5% CO2,95%空气),传代比例1:6
阅读提示:Methods - Cell cultures and transfection
OGD模型建立
OGD条件(无糖DMEM,37°C,0.5% O2,94.5% N2,5% CO2),OGD处理时间(4、6、12小时)
阅读提示:Methods - Oxygen-glucose deprivation model
转染
转染试剂(Lipofectamine 2000),siRNA-TUG1和ASO-TUG1序列及浓度(文中未明确说明),转染效率验证(qPCR,24小时)
阅读提示:Methods - Cell cultures and transfection
fRIP实验
甲醛交联浓度(0.1%),交联时间(5分钟),甘氨酸终止浓度(125 mmol/l),抗体(HuR抗体,A19622,5 μg),磁珠(蛋白G磁珠),洗涤条件
阅读提示:Methods - Crosslink cells, Formaldehyde RNA immunoprecipitation, Figure 2 legend
Western blot
一抗稀释比例(1:1000),抗体(抗β-actin AC026,HuR A19622),内参(β-actin和H3),二抗孵育时间(2小时)
阅读提示:Methods - Protein isolation and Western blot analysis