hPMSCs-EVs的分离与表征
获取并验证hPMSCs-EVs的完整性和表面标志物。
通过超速离心从hPMSCs条件培养基中分离EVs,使用TEM观察形态,NTA分析粒径分布,Western blot检测CD9、CD63、CD81和HSP70表达。
A new cell-free therapeutic strategy for liver regeneration: Human placental mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles.
文献包含体外细胞实验、70%部分肝切除小鼠模型、高通量测序及功能回复实验,通过CCK8、Western blot、双荧光素酶报告和RIP等验证机制。
L02人肝细胞系 AML12小鼠肝细胞系 C57BL/6小鼠70%部分肝切除模型
hPMSCs-EVs的剂量与给药时间:1×10^8颗粒/mL,术前24小时尾静脉注射 circ-RBM23敲低序列及转染方法:siRNA,Lipofectamine 2000转染48小时 PH手术的麻醉剂量:70mg/kg戊巴比妥 hPMSCs-EVs的分离方法:超速离心,100,000g 70分钟 主要检测终点:肝细胞有丝分裂计数、PCNA阳性率、血清ALT/AST水平
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并验证hPMSCs-EVs的完整性和表面标志物。
通过超速离心从hPMSCs条件培养基中分离EVs,使用TEM观察形态,NTA分析粒径分布,Western blot检测CD9、CD63、CD81和HSP70表达。
验证EVs是否能被肝细胞摄取并靶向肝脏。
使用PKH26标记EVs,与L02和AML12细胞共培养后,共聚焦显微镜观察细胞摄取;使用DiR标记EVs并经尾静脉注射,IVIS成像观察体内分布。
评估hPMSCs-EVs在体内是否促进肝再生并改善肝功能。
雄性C57BL/6小鼠术前24小时尾静脉注射hPMSCs-EVs,行70%部分肝切除,术后两天或三天收集肝脏和血清,进行H&E染色、PCNA染色及ALT/AST检测。
鉴定hPMSCs-EVs中高表达的circRNA,并验证其环状结构和稳定性。
对hPMSCs-EVs进行高通量测序,筛选高表达的circRNAs;RT-qPCR验证circ-RBM23表达最高;RNase R处理验证抗性;Sanger测序和circPrimer 2.0验证环状结构。
确定circ-RBM23是否通过ceRNA机制调控miR-139-5p。
通过starBase预测靶miRNA,RT-qPCR验证miR-139-5p上调;双荧光素酶报告实验验证circ-RBM23与miR-139-5p结合;RIP实验检测Ago2结合。
阐明circ-RBM23调控肝细胞增殖的分子机制。
Western blot检测RRM2、p-AKT、p-mTOR、eIF4G表达;通过miR-139-5p mimics/inhibitor及circ-RBM23过表达/敲低实验验证调控关系。
确认EVs中的circ-RBM23是介导促增殖效应的关键分子。
使用si-circ-RBM23-EVs处理L02细胞或注射小鼠,检测miR-139-5p、RRM2、p-AKT、p-mTOR、eIF4G表达及肝细胞增殖。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| EVs分离 | 0.22 μm滤膜 | Merck Millipore | -- |
| EVs超速离心 | P28Ti固定角转子 | Himac | -- |
| EVs表征 | 透射电子显微镜(H-600) | HITACHI | -- |
| EVs粒径分析 | ZetaView纳米颗粒追踪分析仪 | Particle Metrix | -- |
| EVs标记 | PKH26红色荧光标记试剂盒 | Umibio | -- |
| 细胞核染色 | DAPI | Invitrogen | -- |
| 体内示踪 | XenoLight DiR | Perkin Elmer | -- |
| 体内成像 | 小动物活体成像系统 | Caliper Life Sciences | -- |
| RNA免疫沉淀 | Magna RIP™ RNA结合蛋白免疫沉淀试剂盒 | Merck Millipore | -- |
| 抗Ago2抗体 | Invitrogen | MA5-23515 | |
| 双荧光素酶报告 | 双荧光素酶报告基因检测试剂盒 | Promega | -- |
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素/链霉素混合液 | Gibco | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 细胞增殖检测 | CCK8试剂盒 | APExBIO | -- |
| 酶标仪 | 酶标仪 | Thermo Scientific | -- |
| 血清生化分析 | 日立7600全自动生化分析仪 | Hitachi | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Roche | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Scientific | -- | |
| PVDF膜 | Bio-Rad | -- | |
| HRP标记的抗兔IgG | Beyotime | -- | |
| 增强化学发光试剂 | BOSTER | -- | |
| 流式细胞术 | Epics xL流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- |
| Western blot | 一抗:CD9, CD63, CD81, HSP70, RRM2, AKT, p-AKT, eIF4G, p-mTOR, mTOR | Abcam | -- |
| β-actin抗体 | Sigma-Aldrich | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| hPMSCs-EVs分离与表征 | hPMSCs的细胞密度(5×10^7)、培养时间(48h)、FBS浓度(10% exo-depleted)、超速离心条件(100,000g 70min) 阅读提示:Materials and methods: Isolation of EVs |
| 体内给药与PH模型 | 小鼠品系(C57BL/6, 6-8周龄)、EVs剂量(1×10^8颗粒/mL)、给药途径(尾静脉)、给药时间(术前24h)、PH手术方法(70%切除)、麻醉剂量(70mg/kg戊巴比妥) 阅读提示:Materials and methods: Animals, Murine 70% PH model, Results section 2 |
| circ-RBM23敲低与过表达 | siRNA序列信息(文中未明确说明)、转染试剂(Lipofectamine 2000)、转染时间(48h) 阅读提示:Materials and methods: Cell transfection |
| 机制验证 | 双荧光素酶报告基因实验的质粒(circ-RBM23-wt/mut)、miR-139-5p mimics/inhibitor浓度、RIP实验的细胞数(2×10^7)、抗体(anti-Ago2) 阅读提示:Materials and methods: RIP assay, Dual-luciferase report assay |