焦亡相关基因遗传变异分析
初步验证52个PRGs在PAAD中的遗传变异和表达,为后续分子分型提供依据。
分析TCGA-PAAD中52个PRGs的体细胞突变、拷贝数变异,并结合TCGA和GTEx数据库比较癌与正常组织的表达差异,以及预后相关性。
Construction and comprehensive analysis of a novel prognostic signature associated with pyroptosis molecular subtypes in patients with pancreatic adenocarcinoma.
包含转录组数据分析、预后模型构建及体外细胞功能实验,功能性验证为独立证据。
TCGA-PAAD队列 GSE102238队列 CFPAC-1细胞系
23个PRGs的表达数据 风险评分公式:SFTA2×0.118 + NCAM1×(-0.256) + SPRR1B×0.109 CFPAC-1细胞系(来源Procell,货号CL-0059) siRNA转染(GenePharma,序列见补充表3) CCK-8实验:5×10^3细胞/孔,0、24、48、72小时检测
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
初步验证52个PRGs在PAAD中的遗传变异和表达,为后续分子分型提供依据。
分析TCGA-PAAD中52个PRGs的体细胞突变、拷贝数变异,并结合TCGA和GTEx数据库比较癌与正常组织的表达差异,以及预后相关性。
基于PRGs表达将PAAD患者分为不同亚型,并识别亚型间的差异表达基因。
对TCGA+GSE102238合并队列(n=227)中23个PRGs进行一致性聚类,得到三个PRGclusters。比较亚型间OS、免疫细胞浸润和功能通路,并筛选DEGs。
构建基于焦亡分子亚型的预后特征并在多个队列中验证其预测性能。
对PRGclusters间预后相关DEGs进行LASSO Cox回归分析,构建PMSRPS。在训练、测试、TCGA+GSE102238、ICGC和GSE57495队列中验证风险和预后关系、独立性及临床相关性。
评估PMSRPS预测免疫细胞浸润、TME评分、免疫检查点分子、免疫治疗反应及其他指标(TMB、RNAss)的能力。
使用CIBERSORT、ESTIMATE、IPS等方法比较高低风险组的免疫学特征,并分析TMB及RNAss。
预测高低风险组对化疗药物的敏感性,并筛选潜在小分子药物。
计算IC50比较化疗药物敏感性,并利用L1000FWD网站对高、低风险组差异表达基因进行药物匹配。
验证模型中的风险基因SFTA2在PAAD中的表达和功能。
通过qRT-PCR检测PAAD组织与癌旁组织中SFTA2表达,并在CFPAC-1细胞中敲低SFTA2,进行CCK-8、EdU和Transwell实验评估细胞活力、增殖和迁移。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | CFPAC-1细胞系 | Procell | CL-0059 |
| 专用培养基 | Procell | CM-0059 | |
| 转染 | Lipofectamine 3000试剂 | Invitrogen | -- |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂 | GlpBio | GK10001 |
| 增殖检测 | EdU试剂盒 | RiboBio | C10310-2 |
| 迁移实验 | Transwell小室 | Corning | 3422 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样本收集与RNA提取 | PAAD组织及配对癌旁组织来源、储存条件、RNA提取方法 阅读提示:Methods 2.8 Samples and real-time quantitative PCR |
| 细胞培养与转染 | CFPAC-1细胞来源和培养条件,siRNA序列,转染试剂和方法 阅读提示:Methods 2.7 Cell culture and transfection |
| 体外功能实验 | CCK-8、EdU、Transwell实验中的细胞密度、处理时间、检测条件 阅读提示:Methods 2.9 In vitro functional experiments |
| qRT-PCR验证 | 引物序列、反应条件、内参基因 阅读提示:Methods 2.8 Samples and real-time quantitative PCR,补充表3 |