双功能水凝胶修饰的微孔植入体具有抗菌和成骨特性,促进感染性骨缺损中的骨整合。

Microporous Implants Modified by Bifunctional Hydrogel with Antibacterial and Osteogenic Properties Promote Bone Integration in Infected Bone Defects.

作者信息Yiping Pu, Xuecai Lin, Qiang Zhi, Shichong Qiao, Chuangqi Yu
PMID37103316
发布时间2023-04-16
DOI10.3390/jfb14040226

实验完整度

包含体外细胞实验(BMSCs成骨分化、抗菌实验)、体内动物模型(兔股骨感染缺损植入)、micro-CT、组织学及力学测试等多层级验证。

主要模型

兔骨髓间充质干细胞 新西兰白兔股骨感染缺损模型 金黄色葡萄球菌和耐甲氧西林金黄色葡萄球菌

重点核对

水凝胶制备中PVA与TPA的浓度均为50 mg/mL 万古霉素和BMP-2的载药量分别为0.5 mg和0.2 mg 动物模型中注射的细菌量为1.0×10^6 CFU micro-CT扫描参数为90 kV、114 mA、18 μm像素尺寸 push-out测试速度为0.1 mm/s

摘要

在临床实践中,假体植入和细菌感染下的骨整合是艰巨的挑战。众所周知,骨缺损周围细菌感染产生的活性氧(ROS)会进一步阻碍骨愈合。为了解决这个问题,我们通过交联聚乙烯醇和ROS响应性连接子N1-(4-硼苄基)-N3-(4-硼苯基)-N1,N1,N3,N3-四甲基丙烷-1,3-二铵制备了一种ROS清除水凝胶,用于修饰微孔钛合金植入体。所制备的水凝胶用作先进的ROS清除工具,通过抑制植入体周围的ROS水平来促进骨愈合。双功能水凝胶作为药物递送系统,可以释放治疗分子,包括万古霉素以杀灭细菌和骨形态发生蛋白-2以诱导骨再生和整合。这种结合机械支持和疾病微环境靶向的多功能植入系统为感染性骨缺损中骨再生和植入体整合提供了一种新策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何通过修饰微孔钛合金植入体,在感染性骨缺损中实现抗菌和促进骨整合的双重功能?
核心机制
水凝胶通过清除感染微环境中的ROS,并持续释放万古霉素和BMP-2,抑制细菌感染,同时促进BMSCs成骨分化和骨再生,从而增强植入体与宿主骨的整合。
主要证据
体外实验表明,负载万古霉素和BMP-2的水凝胶(Dual@Gel)显著抑制金黄色葡萄球菌和MRSA生长,并促进BMSCs钙结节沉积、ALP活性和成骨相关基因表达;体内兔股骨感染缺损模型中,Dual@Gel组表现出更高的骨体积分数(BV/TV 35.1%)、更大的推出力(185.9 N)和更快的矿化沉积速率(1.6 μm/天)。
研究意义
该多功能植入体系统为感染性骨缺损的治疗提供了一种新策略,具有潜在的临床应用转化意义。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

水凝胶的制备与表征

制备ROS清除水凝胶并验证其理化性质

通过PVA与TPA交联形成水凝胶,使用SEM观察微观结构,流变仪测力学性能,并评估体外降解行为。

2

ROS清除能力评估

验证水凝胶清除H2O2和细胞内ROS的能力

采用Ti(SO4)2比色法检测水凝胶对H2O2的清除效率,使用DCFH-DA探针检测BMSCs内ROS水平。

3

药物负载与释放

测定万古霉素和BMP-2从水凝胶中的释放曲线

将药物负载于水凝胶,在PBS中37°C孵育,定期取样,用ELISA检测BMP-2浓度,用高效液相色谱检测万古霉素浓度。

4

体外细胞相容性和成骨分化

评估水凝胶对BMSCs的相容性和成骨诱导能力

将BMSCs与不同水凝胶共培养,通过CCK-8和Calcein-AM/PI染色检测细胞活力,通过茜素红染色、ALP活性和RT-qPCR检测成骨分化。

5

体外抗菌评估

评价水凝胶对金黄色葡萄球菌和MRSA的抗菌效果

将细菌与水凝胶共培养,使用LIVE/DEAD BacLight试剂盒染色观察死活菌,并通过OD600测定细菌增殖。

6

动物模型构建与体内实验

在兔感染骨缺损模型中评估植入体的抗菌和成骨整合效果

构建兔股骨感染缺损模型,植入不同水凝胶修饰的3D打印钛合金植入体,通过外周血WBC和中性粒细胞评估感染,6周后通过micro-CT、组织学、免疫荧光和力学测试评估骨整合。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
聚乙烯醇----
万古霉素Macklin--
骨形态发生蛋白-2R&D Systems--
过氧化氢Beijing Chemical Works--
兔骨髓间充质干细胞Procell--
成骨分化培养基Procell--
茜素红染液Procell--
低糖DMEM培养基Gibco--
链霉素-青霉素Gibco--
胎牛血清HyClone--
CCK-8试剂盒Beyotime Biotechnology--
钙黄绿素AM/碘化丙啶Beyotime Biotechnology--
LIVE/DEAD BacLight活力试剂盒Thermo Fisher Scientific--
磷酸盐缓冲液Solarbio--
Masson染色液Solarbio--
Eastep超级总RNA提取试剂盒Promega--
Perfect Real-Time RT试剂盒Takara Bio--
BMP-2 ELISA试剂盒Shanghai Haling Biological Technology Co. Ltd.--
2,7-二氯二氢荧光素二乙酸酯Sigma-Aldrich--
荧光二抗Sigma-Aldrich--
抗Runx-2抗体Abcam--
抗BSP抗体Abcam--
抗COL-I抗体Abcam--
抗OCN抗体Abcam--
扫描电子显微镜JEOLJSM-6700F
流变仪TA Instruments-Waters LLC--
高效液相色谱Agilent1100
荧光显微镜OlympusIX53
酶标仪Thermo Fisher Scientific--
LightCycler 480Roche Diagnostics--
电子束熔化系统ArcamQ10
微型计算机断层扫描仪SkyScan1076
动态试验机ShimadzuAG-A20
SPSSSPSS Inc.19.0

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
水凝胶制备
PVA和TPA浓度均为50 mg/mL;TPA合成条件:N,N,N',N'-四甲基-1,3-丙二胺0.1克和4-溴甲基苯硼酸0.5克溶于10 mL二甲基甲酰胺,60°C搅拌16小时,冷四氢呋喃洗涤3次。
阅读提示:2.2 水凝胶制备和表征
药物负载与释放
BMP-2载药量为0.2 mg,万古霉素为0.5 mg;释放实验在5 mL PBS中37°C进行。
阅读提示:2.4 药物负载和释放
体外细胞实验
BMSCs接种密度:细胞活力实验5×10^4 cells/well,成骨分化实验5×10^5 cells/well;成骨诱导14天;RT-qPCR内参GAPDH。
阅读提示:2.5 细胞相容性,2.6 体外成骨诱导
体外抗菌实验
细菌浓度1.0×10^8 CFU/mL,培养条件37°C,100 rpm,24小时。
阅读提示:2.7 体外抗菌评价
动物实验
雌性新西兰白兔,6个月龄,40只;麻醉剂量3%戊巴比妥50 mg/kg;骨缺损尺寸6 mm×10 mm;细菌注射量1.0×10^6 CFU;6周后取材。
阅读提示:2.9 动物手术
micro-CT分析
扫描参数:90 kV,114 mA,18 μm像素;分析参数包括BV/TV、Tb.N、Tb.Th、Tb.Sp。
阅读提示:2.10 微型计算机断层扫描
组织学与免疫荧光
未脱钙切片厚度150-300 μm,研磨至40-50 μm;免疫荧光切片约5 μm;抗体稀释:anti-Runx-2 1:200,anti-BSP 1:250,anti-COL-1 1:200,anti-OCN 1:150。
阅读提示:2.11 组织学评估,2.13 免疫荧光
生物力学测试
推出速度0.1 mm/s。
阅读提示:2.12 推出试验