用可溶性死亡受体5融合蛋白阻断TRAIL-DR5信号通路减轻辐射损伤

Blocking TRAIL-DR5 signaling pathway with soluble death receptor 5 fusion protein mitigates radiation-induced injury.

作者信息Danyang Zhao, Lei Yang, Peng Han, Haihui Zhang, Fanjun Wang, Zhiyun Meng, Hui Gan, Zhuona Wu, Wenzhong Sun, Chuan Chen, Guifang Dou, Ruolan Gu
PMID37274104
发布时间2023-05-18
DOI10.3389/fphar.2023.1171293

实验完整度

包含体外细胞实验、小鼠和大鼠体内模型,以及分子、组织、生化、生存等多层级验证。

主要模型

C57BL/6J小鼠 Sprague-Dawley (SD)大鼠 人小肠黏膜上皮细胞 IEC-6细胞

重点核对

γ射线剂量:6 Gy(组织实验)或9 Gy(生存实验) sDR5-Fc给药剂量:5、10、15、20 mg/kg,尾静脉注射 照射后给药时间:模型组和给药组在照射后经尾静脉给药 阳性对照:氨磷汀(amifostine)于照射前0.5小时腹腔注射 检测时间点:照射后1天、3天、5天等

摘要

随着核技术的日益应用、急性辐射综合征(ARS)的高致死率及其复杂机制,ARS已成为亟待解决的全球性难题。本文报道,小鼠经6 Gy γ射线单次照射后,死亡受体5(DR5)及其配体肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(TRAIL)均显著上调。通过静脉给予DR5的竞争性拮抗剂——可溶性DR5融合蛋白(sDR5-Fc),辐射敏感组织(如脾脏和胸腺)中的过度凋亡被显著抑制,脾脏和胸腺的辐射损伤得到减轻,同时凋亡抑制蛋白(如Bcl-2)的表达也显著上调。受辐射影响的血清生化指标,如ALP、AST、ALT、TBIL、K和Cl水平,在sDR5-Fc给药后得到改善。sDR5-Fc还能调节免疫细胞数量并减少血细胞死亡。体外研究通过流式细胞术发现,sDR5-Fc有效抑制了人小肠黏膜上皮细胞和IEC-6细胞的凋亡。最后,生存研究表明,经9 Gy γ射线单次全身照射后给予sDR5-Fc的小鼠,其30天存活率有效提高,且呈显著剂量依赖性。总之,研究结果显示DR5/TRAIL介导的凋亡通路在ARS小鼠损伤中起重要作用,DR5可能成为ARS治疗的潜在靶点。DR5凋亡拮抗剂sDR5-Fc融合蛋白可能是一种有前景的抗ARS候选药物,值得进一步研究。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
TRAIL-DR5信号通路在急性辐射综合征(ARS)中的作用,以及sDR5-Fc融合蛋白靶向该通路治疗ARS的潜力。
核心机制
γ射线照射上调脾脏和胸腺中DR5和TRAIL的表达,激活TRAIL-DR5介导的凋亡通路;sDR5-Fc作为DR5的竞争性拮抗剂,阻断TRAIL与DR5结合,抑制下游凋亡信号,上调Bcl-2表达。
主要证据
免疫组化显示照射后DR5和TRAIL上调;Western blot显示sDR5-Fc降低DR5、TRAIL和Caspase-8表达并增加Bcl-2;TUNEL和流式细胞术显示sDR5-Fc减少脾脏、胸腺及肠道细胞凋亡;生存实验显示sDR5-Fc提高9 Gy照射小鼠30天存活率。
研究意义
研究提示DR5/TRAIL通路是ARS治疗的潜在新靶点,sDR5-Fc可能成为有前景的抗ARS候选药物,值得进一步研究。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

sDR5-Fc蛋白表征与亲和力分析

验证sDR5-Fc的分子量和纯度,并测定其与TRAIL的结合亲和力。

使用SEC-MALLS分析sDR5-Fc的分子量和纯度;使用Octet®R2系统进行生物层干涉实验,测定人TRAIL与人DR5及sDR5-Fc、小鼠TRAIL与sDR5-Fc的结合动力学。

2

照射后DR5和TRAIL表达检测

确认γ射线照射后小鼠脾脏和胸腺中DR5和TRAIL的表达变化。

C57BL/6J小鼠接受6 Gy γ射线全身照射,于照射后24、48、72小时处死,取脾脏和胸腺进行免疫组化染色,检测DR5和TRAIL表达。

3

sDR5-Fc对凋亡信号通路蛋白表达的影响

验证sDR5-Fc能否阻断TRAIL-DR5介导的凋亡信号通路。

小鼠接受6 Gy照射后经尾静脉注射15 mg/kg sDR5-Fc或生理盐水,取脾脏进行Western blot检测DR5、TRAIL、Caspase-8和Bcl-2表达。

4

sDR5-Fc对组织损伤的改善作用

评估sDR5-Fc对辐射诱导的脾脏和胸腺组织损伤的修复效果。

SD大鼠接受6 Gy γ射线全身照射后,给予不同剂量(5、10、15 mg/kg)的sDR5-Fc或生理盐水,于照射后第1天和第5天取脾脏和胸腺进行H&E染色,并计算器官指数。

5

sDR5-Fc对细胞凋亡的抑制作用

验证sDR5-Fc是否减少辐射诱导的脾脏、胸腺及胸腺细胞凋亡。

使用TUNEL染色检测大鼠脾脏和胸腺的凋亡细胞;使用流式细胞术检测小鼠胸腺细胞凋亡比例。

6

sDR5-Fc对血清生化指标和血常规的影响

评估sDR5-Fc对辐射引起的血清生化指标紊乱和血细胞减少的调节作用。

SD大鼠6 Gy照射后给予不同剂量sDR5-Fc,于照射后第1天和第5天检测血清ALT、AST、ALP、TBIL、K、Cl水平,并计数全血白细胞和血小板。

7

sDR5-Fc对肠道上皮细胞凋亡的抑制

验证sDR5-Fc在体外抑制辐射诱导的肠道上皮细胞凋亡。

人小肠黏膜上皮细胞和IEC-6细胞经不同剂量照射后,用CCK-8检测细胞活力,确定15 Gy和50 μg/mL sDR5-Fc为处理条件,然后用流式细胞术检测凋亡。

8

sDR5-Fc对小鼠生存率的影响

评估sDR5-Fc对致死剂量照射小鼠的生存改善作用。

C57BL/6J小鼠接受9 Gy γ射线全身照射后,经尾静脉给予不同剂量的sDR5-Fc或生理盐水,阳性对照组照射前0.5小时腹腔注射氨磷汀,监测30天生存率和体重。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

细胞凋亡检测
细胞活力检测
组织病理学检测
血液生化与血常规检测
生存分析

产品清单

实验环节名称品牌货号
安捷伦1200高效液相色谱系统Agilent Technologies--
DAWN多角度激光光散射检测器Wyatt--
Optilab示差折光检测器Wyatt--
TSKgel G4000PWXL色谱柱TOSOH--
Octet®R2蛋白分析系统Sartorius--
链霉亲和素生物传感器Sartorius--
抗TRAIL抗体abcamab231265
抗DR5抗体abcamab8416
抗caspase8抗体abcamab25901
抗Bcl-2抗体abcamab196495
抗β-actin抗体Applygen Techologies Inc.C1313
RIPA裂解液Applygen Techologies Inc.--
蛋白酶抑制剂混合物Applygen Techologies Inc.--
高灵敏度化学发光底物Applygen Techologies Inc.--
细胞计数试剂盒-8Applygen Techologies Inc.--
BCA蛋白定量试剂盒Thermo--
聚偏二氟乙烯膜Immobilon®-PSQ--
FITC Annexin V凋亡检测试剂盒IBD--
TUNEL凋亡检测试剂盒Servicebio--
蛋白酶KServicebio--
氨磷汀MedChemExpress--
人TRAIL蛋白Sino Biological Inc.10409-HNAE
小鼠TRAIL蛋白Sino Biological Inc.50166-M07E
人DR5蛋白Sino Biological Inc.10465-H02H
可溶性DR5-Fc融合蛋白Amshenn Inc.--
杜氏改良 Eagle 培养基gibco812619
胎牛血清cytiva HyCloneSV30208.02
青霉素-链霉素gibco15140-122
人小肠黏膜上皮细胞ProcellCP-H039
人小肠黏膜上皮细胞完全培养基ProcellCM-H039
IEC-6细胞----
正置光学显微镜(CK31)Olympus--
MSHOT成像系统MSHOTTVO.63XC-MO
PANNORAMIC 扫描仪3D HISTECH--
Tanon成像系统Tanon--
流式细胞仪BD--
正置光学显微镜(Eclipse E100)Nikon--
正置荧光显微镜(ECLIPSE C1)Nikon--
成像系统(DS-U3)Nikon--
数字玻片扫描仪(PANNORAMIC DESK/MIDI/250/1000)3DHISTECH--
日立生化分析仪Hitachi--
细胞计数器Mindray--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系、性别、周龄、体重;大鼠品系、性别、周龄、体重。
阅读提示:见Methods 2.4 Animals
照射条件
照射剂量、剂量率、照射距离、照射时间。
阅读提示:见Methods 2.4 Animals 和 2.7 Survival
给药方案
sDR5-Fc给药剂量、给药途径(尾静脉)、给药时间点;氨磷汀给药剂量、给药途径(腹腔注射)、给药时间(照射前0.5小时)。
阅读提示:见Methods 2.4 Animals 和 2.7 Survival
检测时间点
各实验的检测时间点,如照射后1天、3天、5天等。
阅读提示:见Results各节及图注