补骨脂素对牙周干细胞来源外泌体调控成骨分化的作用

Effect of psoralen on the regulation of osteogenic differentiation induced by periodontal stem cell-derived exosomes.

作者信息Jie Yu, Xiaonan Wu, Wenyi Zhang, Fuhang Chu, Qi Zhang, Meihua Gao, Yingjie Xu, Yingtao Wu
PMID37269415
期刊Hum Cell
发布时间2023-07
DOI10.1007/s13577-023-00918-2

实验完整度

包含细胞鉴定、成骨分化功能验证、外泌体鉴定与测序、抑制剂功能验证等多层级实验,证据链完整。

主要模型

人牙周膜干细胞(hPDLSCs) hPDLSC来源的外泌体

重点核对

hPDLSCs分离自健康第三磨牙牙周膜(18-25岁无系统疾病患者) 补骨脂素浓度10 μg/mL(CCK-8实验确定最佳浓度) 外泌体提取条件:10 μg/mL补骨脂素处理72小时,无外泌体血清饥饿培养48小时 hsa-miR-125b-5p抑制剂转染:2×10^5 cells/well六孔板,转染24小时

摘要

牙周炎是一种慢性炎症性疾病,是成人牙齿脱落的主要原因,牙周炎治疗的关键是牙周骨组织的修复和再生。补骨脂素是补骨脂的主要成分,具有抗菌、抗炎和成骨活性。它促进牙周膜干细胞向成骨方向分化。干细胞分泌的外泌体在成骨分化过程中起重要的信息传递作用。本文旨在探讨补骨脂素在调控牙周干细胞及其外泌体中成骨相关miRNA信息中的作用及其具体机制。实验结果表明,经补骨脂素处理的人牙周膜干细胞来源的外泌体(hPDLSCs + Pso-Exos)与未处理的外泌体(hPDLSC-Exos)在大小和形态上无显著差异。与hPDLSC-Exos相比,hPDLSCs + Pso-Exos中发现35个差异表达miRNAs上调,58个差异表达miRNAs下调(P < 0.05)。hsa-miR-125b-5p与成骨分化相关。其中,hsa-miR-125b-5p与成骨分化相关。抑制hsa-miR-125b-5p后,hPDLSCs的成骨水平增强。综上所述,补骨脂素通过下调hPDLSCs中hsa-miR-125b-5p基因的表达促进hPDLSCs的成骨分化,且外泌体中hsa-miR-125b-5p基因的表达也下调。这一发现为利用补骨脂素促进牙周组织再生提供了新的治疗思路。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
补骨脂素是否通过调控牙周膜干细胞及其外泌体中的miRNA表达来促进成骨分化,具体机制是什么?
核心机制
补骨脂素通过下调hsa-miR-125b-5p基因表达促进hPDLSCs成骨分化,且外泌体中hsa-miR-125b-5p表达也下调,可能继续传递成骨相关信息。
主要证据
高-throughput测序显示经补骨脂素处理后外泌体中hsa-miR-125b-5p表达下降(0.73倍,P<0.001);抑制hsa-miR-125b-5p后,ALP活性、RUNX2、OCN和ALP表达均显著高于空白对照组。
研究意义
为利用补骨脂素促进牙周组织再生提供新的治疗思路,hsa-miR-125b-5p可能成为补骨脂素治疗的潜在靶基因。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

牙周膜干细胞的分离与鉴定

验证分离的细胞是否具有间充质干细胞特征,可用作后续实验模型。

从健康第三磨牙牙周膜分离hPDLSCs,通过形态观察、成骨和成脂分化实验(茜素红和油红O染色)以及流式细胞术检测表面标志物(CD73、CD90、CD105阳性,CD34、CD45阴性)。

2

补骨脂素对细胞活力及成骨分化的作用

确定补骨脂素的最佳处理浓度,并验证其对hPDLSCs成骨分化的促进作用。

CCK-8实验检测不同浓度补骨脂素(0、5、10、15、20 μg/mL)处理1、3、5、7天后细胞活力;ALP染色和定量、茜素红染色定性定量检测成骨分化。

3

外泌体的提取与鉴定

获取并验证hPDLSCs来源的外泌体,确保后续测序分析的对象是外泌体。

用差速离心法提取外泌体,通过透射电镜观察形态、纳米颗粒跟踪分析(NTA)测定粒径和浓度、Western blot检测标志物(Syntenin-1、Calnexin、TSG101)。

4

外泌体miRNA高通量测序及差异分析

筛选补骨脂素处理后外泌体中差异表达的miRNAs,并识别与成骨相关的关键miRNA。

使用Illumina HiSeq2000/2500平台进行小RNA测序,比较hPDLSCs + Pso-Exos和hPDLSC-Exos的miRNA表达谱,通过T检验筛选差异miRNAs,并进行KEGG功能富集分析。

5

hsa-miR-125b-5p抑制剂转染及功能验证

验证hsa-miR-125b-5p对hPDLSCs成骨分化的抑制作用,并确认补骨脂素的作用机制。

使用hsa-miR-125b-5p抑制剂转染hPDLSCs,检测ALP染色和活性、Western blot和RT-PCR检测成骨标志物(RUNX2、ALP、OCN)的表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-MEM培养基Biological Industries--
胎牛血清Procell--
青霉素-链霉素----
成脂分化诱导培养基Procell--
油红O----
成骨分化诱导培养基Procell--
茜素红----
抗人CD34抗体ElabscienceE-AB-F1143C
抗人CD45抗体ElabscienceE-AB-F1137C
抗人CD105抗体ElabscienceE-AB-F1143D
抗人CD73抗体ElabscienceE-AB-F1242D
抗人CD90抗体ElabscienceE-AB-F1167D
流式细胞仪Beckman CoulterDxFLEX
补骨脂素SolarbioHPLC ≥ 98%, wavelength 280 nm
细胞计数试剂盒-8Absin Bioscience Inc.--
酶标仪Bio-TekSynergyH1/H1M
ALP染色试剂盒(改良Gomori钙钴法)Solarbio--
RIPA裂解液Elabscience--
BCA蛋白定量试剂盒Elabscience--
PBS缓冲液HyCloneSH30028.02
透射电子显微镜HitachiHT-7700
聚苯乙烯微球(100 nm)----
纳米颗粒跟踪分析仪MalvernNano Sight NS300
抗Calnexin抗体Abcamab22595
抗Syntenin-1抗体Abcamab19903
抗TSG101抗体Abcamab125011
TruSeq小RNA样本制备试剂盒Illumina--
Illumina HiSeq 2000/2500测序仪Illumina--
hsa-miR-125b-5p抑制剂Ribobio--
微量超微量分光光度计Bio DLMicro Drop
GAPDH引物Abcam--
RUNX2引物----
OCN引物----
ALP引物----
RUNX2抗体Abcamab114133
ALP抗体Abcamab229126
ECL化学发光试剂盒----
Image J 2.0软件----
GraphPad Prism 9软件----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
hPDLSCs来源(健康第三磨牙牙周膜,18-25岁患者,无系统疾病),细胞代数(3-6代),培养基(α-MEM),血清浓度(文中未明确说明不同实验的具体浓度),培养条件(37℃,5% CO2)
阅读提示:见Materials and methods中Cell culture部分
补骨脂素处理
最佳浓度10 μg/mL(基于CCK-8结果确定),处理时间(细胞活力1-7天,成骨21天)
阅读提示:见Results中Effect of psoralen on cell viability部分
外泌体提取
补骨脂素处理浓度10 μg/mL,处理时间72小时,饥饿培养时间48小时,离心梯度(300 g, 2000 g, 10000 g, 100000 g)
阅读提示:见Materials and methods中Exosome extraction部分
miRNA测序
测序平台(Illumina HiSeq2000/2500),读长单端1×50 bp,差异筛选阈值P<0.05
阅读提示:见Materials and methods中High-throughput MicroRNA sequencing部分
抑制剂转染
细胞密度2×10^5 cells/well(六孔板),转染时间24小时,对照组设置(空白对照、NC、抑制剂+补骨脂素、补骨脂素、抑制剂)
阅读提示:见Materials and methods中Inhibitor production and transfection部分