ELK3通过激活HIF-1α/VEGF-A信号轴促进胶质瘤血管生成

Glioma angiogenesis is boosted by ELK3 activating the HIF-1 α /VEGF-A signaling axis.

作者信息Mou Yueyang, Hu Yaqin, Xue Guolian, Zhao Wenjian, Jiao Yang, Li Chen, Cao Haiyan, Chao Min, Deng Jianping, Dai Penggao, Zhu Hongli, Wang Liang
PMID37452291
发布时间2023-07-14
DOI10.1186/s12885-023-11069-w

实验完整度

研究包含体外细胞功能实验(增殖、凋亡、迁移等)、体内动物模型(裸鼠原位移植),以及多层级验证(临床样本、数据库分析、机制研究)。

主要模型

U87和U251胶质瘤细胞系 HUVEC人脐静脉内皮细胞 裸鼠原位移植瘤模型 临床胶质瘤组织样本(组织芯片)

重点核对

ELK3表达水平在胶质瘤组织中的上调(TMA和Western blot) ELK3敲低或过表达对细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭的影响 ELK3调控VEGF-A表达和分泌,及对HUVEC管形成的影响 ELK3与HIF-1α的相互作用及对HIF-1α泛素化的影响 体内实验中ELK3敲低对肿瘤生长和血管生成的影响(CD31、Ki-67、Caspase-3染色)

摘要

背景:临床研究表明,一线使用抗血管生成治疗可延长无进展生存期,但在延长患者总生存期方面进展甚微。我们探讨了ELK3在胶质瘤血管生成中的作用,以改进和设计更有效的疗法。方法:使用组织微阵列和免疫组织化学分析检测了400例胶质瘤患者中ELK3蛋白的表达。使用CCK-8、EdU、Transwell实验和流式细胞术监测U87和U251细胞的增殖、转移、细胞周期和凋亡。采用管形成实验、大鼠主动脉环出芽实验和Matrigel Plug实验检测ELK3的抗血管生成活性。使用ELISA、Western blot和CGGA数据集的相关性分析检测ELK3与VEGF-A或ELK3与HIF-1α之间的关联。此外,使用裸鼠原位移植以及体外肿瘤的组织病理学和免疫学分析来探讨ELK3对肿瘤进展和中位生存期的影响。结果:ELK3在胶质瘤组织中上调,并与不良预后相关。在体外,ELK3促进细胞增殖和细胞周期进展,诱导转移,抑制凋亡。然后,沉默ELK3通过促进HIF-1α经泛素化降解来抑制VEGF-A的表达和分泌。最后,敲低ELK3在体外和体内抑制肿瘤进展和血管生成,并延长裸鼠的中位生存期。结论:我们的发现首次证明ELK3对胶质瘤至关重要,因为它通过激活HIF-1α/VEGF-A信号轴促进血管生成。因此,我们建议ELK3是胶质瘤血管生成的潜在预后标志物,以ELK3为靶点的治疗策略可能有望提高抗血管生成疗法的疗效。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ELK3在胶质瘤血管生成中的作用及其潜在机制是什么?
核心机制
ELK3通过与HIF-1α相互作用,抑制HIF-1α的泛素化降解,从而上调VEGF-A的表达和分泌,激活HIF-1α/VEGF-A信号轴促进胶质瘤血管生成。
主要证据
组织芯片和Western blot显示ELK3在胶质瘤中高表达;体外细胞实验表明ELK3促进增殖、迁移和血管生成;体内裸鼠模型显示敲低ELK3抑制肿瘤生长和血管生成;Co-IP和泛素化实验证实ELK3与HIF-1α相互作用并影响其稳定性。
研究意义
ELK3是胶质瘤血管生成的潜在预后标志物,靶向ELK3的治疗策略可能提高抗血管生成疗法的疗效。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本和数据库分析

探讨ELK3在胶质瘤中的表达水平及其与患者预后的相关性。

利用GEPIA、TCGA、CGGA数据库分析ELK3表达,并在组织芯片上进行IHC染色,结合临床数据评估预后。

2

体外细胞功能实验

验证ELK3对胶质瘤细胞恶性表型(增殖、凋亡、迁移、侵袭、细胞周期)的影响。

在U87和U251细胞中敲低或过表达ELK3,使用CCK-8、EdU、Transwell、流式细胞术检测细胞功能。

3

血管生成实验

评估ELK3对血管生成的影响。

使用HUVEC管形成实验、大鼠主动脉环出芽实验和Matrigel plug实验检测ELK3敲低或过表达对血管生成的影响。

4

机制研究

阐明ELK3调控VEGF-A的分子机制。

通过Western blot、qRT-PCR、ELISA检测ELK3对VEGF-A表达和分泌的影响;通过Co-IP和泛素化实验验证ELK3与HIF-1α的相互作用及其对HIF-1α泛素化的影响。

5

体内动物实验

验证ELK3在体内对胶质瘤进展和血管生成的作用。

将稳定敲低ELK3的U87细胞原位注射到裸鼠脑内,观察肿瘤生长、生存期和血管生成指标。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
TRIzol试剂Invitrogen15596018
PrimeScript RT Master MixTakaraRR036A
RIPA裂解液Beyotime--
超敏ECL试剂盒GlpBioGK10008
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen--
CCK-8试剂盒Beyotime--
美仑EdU细胞增殖检测试剂盒(Alexa Fluor 488)Meilun Biotechnology, Ltd.--
FITC Annexin V凋亡检测试剂盒ISigma Aldrich--
PI/RNase染色缓冲液BD Biosciences--
DMEM培养基ProcellPM150310
Transwell小室Costar--
Matrigel基质胶BD Biosciences--
Leica显微镜LeicaDM2500
μ-Slide血管生成载玻片--81506
倒置显微镜LeicaDMI 6000B
Image J软件----
EXPO32 ADC分析软件Beckman Coulter--
ModFit 3.0分析软件Verity Software House, Inc.--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床样本分析
组织芯片包含400例胶质瘤患者;IHC评分分组阈值(>6高表达,≤6低表达);样本类型(肿瘤组织与癌旁组织)。
阅读提示:Methods: Clinical specimens and cell lines, Results: ELK3 is upregulated in glioma and correlated with poor prognosis, 图1-2图注
细胞培养与转染
U87和U251细胞系来源;转染密度约80%;ELK3过表达质粒和siRNA序列(来自Genepharma);转染试剂Lipofectamine 2000。
阅读提示:Methods: Clinical specimens and cell lines, Cell transfections
细胞功能实验
CCK-8检测细胞接种密度(1×10^3/孔),连续检测6天,450nm吸光度;EdU孵育时间16-24小时;Transwell实验细胞密度(1×10^5/孔),迁移30小时,侵袭48小时(Matrigel包被);凋亡和细胞周期检测细胞数(1×10^6)。
阅读提示:Methods: Cell Counting Kit-8 assay, EdU staining, Flow cytometric analysis, Transwell assay
血管生成实验
HUVEC管形成实验:使用胶质瘤细胞条件培养基(siELK3或siNC处理),孵育6小时,μ-Slide包被Matrigel;Matrigel plug实验方法参考文献;大鼠主动脉环实验条件。
阅读提示:Methods: HUVEC tube formation assay, Matrigel plug assay, Results: Silencing ELK3 inhibits angiogenesis in vitro and in vivo
机制研究
低氧处理条件(1% O2,时间点2,4,6,8,10小时,最终选择6小时);ELK3敲低或过表达后检测HIF-1α和VEGF-A蛋白及mRNA水平;Co-IP实验验证ELK3和HIF-1α相互作用;泛素化实验检测HIF-1α泛素化水平。
阅读提示:Methods: Western blot analysis, Results: ELK3 regulates VEGF-A by interacting with HIF-1α, 图6图注
动物实验
裸鼠品系(免疫缺陷);细胞注射量(未明确说明);注射坐标(AP=-2, ML=-2, DV=-3);每组动物数(每组10只);观察终点(死亡);肿瘤组织处理(HE、CD31、Ki-67、Caspase-3染色)。
阅读提示:Methods: Animal experiments, Results: ELK3 inhibits tumor progression and angiogenesis in vivo, 图7图注