临床样本和细胞系中ZYX表达分析
评估ZYX在骨肉瘤组织及细胞系中的表达水平,并探讨其与预后的关系。
通过qRT-PCR和Western blot检测骨肉瘤组织和细胞系中ZYX的mRNA和蛋白表达;使用TCGA数据库进行Kaplan-Meier生存分析。
Zyxin Inhibits the Proliferation, Migration, and Invasion of Osteosarcoma via Rap1-Mediated Inhibition of the MEK/ERK Signaling Pathway.
包含临床样本表达与预后分析、细胞功能实验(CCK-8、划痕、Transwell)、机制验证(Western blot、敲低Rap1回补实验)及体内移植瘤模型,证据层级丰富。
143B和U2OS骨肉瘤细胞系 MG63和HOS骨肉瘤细胞系 hFOB1.19人成骨细胞 裸鼠皮下移植瘤模型
ZYX在骨肉瘤组织和细胞系中的表达水平(qRT-PCR和Western blot) ZYX过表达和敲低对细胞增殖(CCK-8)、迁移(划痕)和侵袭(Transwell)的影响 Rap1敲低对ZYX过表达表型的影响 ZYX/Rap1/MEK/ERK轴蛋白表达变化 体内移植瘤模型中肿瘤体积和重量的变化
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估ZYX在骨肉瘤组织及细胞系中的表达水平,并探讨其与预后的关系。
通过qRT-PCR和Western blot检测骨肉瘤组织和细胞系中ZYX的mRNA和蛋白表达;使用TCGA数据库进行Kaplan-Meier生存分析。
验证ZYX对骨肉瘤细胞增殖、迁移和侵袭的影响。
使用慢病毒构建稳定转染的细胞系(LV-Control, LV-ZYX, shZYX, shNC),通过CCK-8、划痕实验和Transwell侵袭实验检测细胞功能。
探索ZYX调控骨肉瘤的分子机制,特别是与Rap1信号通路的关系。
通过TCGA数据库差异基因分析、KEGG富集分析、分子对接和免疫荧光共定位,发现ZYX与Rap1相互作用。
验证ZYX过表达或敲低对Rap1/MEK/ERK信号通路关键蛋白表达的影响。
通过Western blot检测Rap1、MEK、p-MEK、ERK、p-ERK的蛋白水平。
验证ZYX通过Rap1调控骨肉瘤细胞行为。
在ZYX过表达细胞中敲低Rap1(shRap1),再次检测细胞增殖、迁移和侵袭能力。
在体内验证ZYX对骨肉瘤生长的影响及机制。
将稳定转染LV-Control或LV-ZYX的143B细胞皮下注射到裸鼠,监测肿瘤体积和重量,并通过Western blot和免疫组化检测相关蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Invitrogen | -- |
| DMEM培养基 | Invitrogen | -- | |
| 胎牛血清 | Tian Hang | -- | |
| 聚凝胺 | -- | -- | |
| 嘌呤霉素 | -- | -- | |
| 细胞转染 | 慢病毒 | OBiO Technology | -- |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Servicebio Technology | -- |
| 细胞侵袭检测 | Transwell小室 | Corning Inc. | -- |
| 基质胶 | BD Biosciences | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Servicebio Technology | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime Biotechnology | -- | |
| 电化学发光检测试剂盒 | Biosharp Biotechnology | -- | |
| ZYX抗体 | Proteintech | 10330-1-AP | |
| Rap1抗体 | Servicebio | GB11608-100 | |
| ERK抗体 | Servicebio | GB11560-100 | |
| p-ERK抗体 | Servicebio | GB11004-100 | |
| MEK抗体 | CST | 4694S | |
| p-MEK抗体 | CST | 9154S | |
| GAPDH抗体 | Servicebio | GB11002 | |
| qRT-PCR | TRIzol试剂 | Servicebio | -- |
| SweScript cDNA合成预混液(含gDNA去除剂) | Servicebio | -- | |
| SYBR Green qPCR预混液 | Servicebio | -- | |
| 免疫组化 | Rap1抗体(IHC) | CST | -- |
| Ki-67抗体 | CST | -- | |
| p-ERK抗体(IHC) | CST | -- | |
| 统计 | GraphPad Prism 8.0 | GraphPad Software | -- |
| R 4.2.2 | The R Foundation for Statistical Computing | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样本收集 | 骨肉瘤及癌旁组织来源、患者临床病理特征(分期、转移等) 阅读提示:Methods 2.1 Sample Collection 和 Table 1 |
| 细胞培养 | 细胞系来源、培养基种类、血清和抗生素浓度、培养温度(143B和hFOB1.19为37°C或34°C) 阅读提示:Methods 2.3 Cell Culture and Transfection |
| 稳转细胞构建 | 慢病毒载体构建、polybrene浓度(5 μg/mL)、嘌呤霉素筛选浓度(5 μg/mL) 阅读提示:Methods 2.3 Cell Culture and Transfection |
| 细胞增殖实验 | 细胞接种密度(1000细胞/孔)、检测时间点(第1-5天)、CCK-8试剂用量和孵育时间(10 μL,1小时) 阅读提示:Methods 2.4 Cell Counting Kit-8 Assay |
| 细胞迁移实验 | 细胞接种密度(5×10^5细胞/六孔板)、培养时间(48小时)、划痕后观察时间(36小时)、血清饥饿条件 阅读提示:Methods 2.5 Wound-Healing Assay |
| 细胞侵袭实验 | Matrigel用量(80 μL)、细胞接种密度(1×10^5细胞)、血清浓度(10%和20%)、培养时间(48小时) 阅读提示:Methods 2.6 Transwell Invasion Assay |
| Western blot | 蛋白质提取方法、抗体稀释比例、电泳和转膜条件 阅读提示:Methods 2.7 Western Blot Analysis 和 Table 2 |
| qRT-PCR | RNA提取方法、cDNA合成体系、PCR反应条件和引物序列 阅读提示:Methods 2.8 Quantitative Real-Time Polymerase Chain Reaction (qRT-PCR) 和 Table 3 |
| 体内移植瘤模型 | 小鼠周龄(4-5周)、每组只数(6只)、细胞注射量(5×10^6)、注射部位(前肢腋窝)、监测频率(每7天)和实验时间(4周) 阅读提示:Methods 2.9 Xenograft Tumor Model |
| 免疫组化 | 抗体信息及稀释比例、抗原修复条件、染色流程 阅读提示:Methods 2.10 Immunohistochemistry Staining |