体外细胞功能实验
验证FLOT1对胃癌细胞增殖、迁移和侵袭的影响。
在HGC-27细胞中过表达FLOT1,在AGS细胞中敲低FLOT1,通过MTT、集落形成、伤口愈合和Transwell侵袭实验检测细胞功能。
FLOT1 promotes gastric cancer progression and metastasis through BCAR1/ERK signaling.
包含体外细胞功能实验、体内异种移植和肺转移模型、免疫共沉淀、Western blot、免疫组化及临床样本相关性分析等多个独立证据层级。
AGS胃癌细胞系 HGC-27胃癌细胞系 NOD-SCID小鼠皮下异种移植模型 NOD-SCID小鼠尾静脉肺转移模型 人胃癌组织芯片
细胞系:AGS(FLOT1高表达)、HGC-27(FLOT1低表达) FLOT1敲低和过表达慢病毒及其感染条件(polybrene 10μg/mL,嘌呤霉素2μg/mL,14天) 体内实验:皮下注射细胞数量(5×106或1×107),尾静脉注射细胞数量(5×106) ERK抑制剂SCH772984处理 BCAR1野生型和突变体(Y410F)质粒转染
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证FLOT1对胃癌细胞增殖、迁移和侵袭的影响。
在HGC-27细胞中过表达FLOT1,在AGS细胞中敲低FLOT1,通过MTT、集落形成、伤口愈合和Transwell侵袭实验检测细胞功能。
验证FLOT1对胃癌细胞体内肿瘤生长的影响。
将FLOT1过表达或敲低的胃癌细胞皮下注射到NOD-SCID小鼠,测量肿瘤体积和重量,并通过免疫组化检测Ki-67。
验证FLOT1对胃癌细胞肺转移的影响。
将FLOT1过表达或敲低的胃癌细胞通过尾静脉注射到NOD-SCID小鼠,通过18F-FDG PET-CT成像和肺组织HE染色评估转移。
验证FLOT1与BCAR1的物理相互作用,并检测BCAR1磷酸化及转位。
在AGS和HGC-27细胞中进行免疫共沉淀(Co-IP)验证相互作用;通过共定位实验观察转位;通过Western blot检测BCAR1 Tyr410磷酸化水平。
验证BCAR1是否介导FLOT1诱导的细胞增殖、迁移和侵袭,以及ERK信号通路的作用。
在BCAR1敲低细胞中过表达FLOT1,检测细胞功能变化和ERK激活水平;使用ERK抑制剂处理FLOT1敲低细胞并恢复BCAR1表达。
验证FLOT1和BCAR1在胃癌中的表达及与预后的相关性。
通过IHC检测80例胃癌及癌旁组织中FLOT1、BCAR1、Ki67和p-ERK1/2的表达,并进行生存分析和相关性分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Biological Industries | 01-100-1A |
| 胎牛血清 | Biological Industries | 04-001-1A | |
| 细胞增殖实验 | MTT试剂 | -- | -- |
| 二甲基亚砜 | -- | -- | |
| 集落形成实验 | 结晶紫 | Beyotime | C0121 |
| 免疫荧光 | DAPI染料 | Solarbio | C0065 |
| Western blotting | PVDF膜 | -- | -- |
| 抗FLOT1抗体 | Proteintech | 15571-1-AP | |
| 抗ERK1/2抗体 | Proteintech | 51068-1-AP | |
| 抗磷酸化ERK1/2抗体 | Proteintech | 28733-1-AP | |
| 抗p130 Cas抗体 | Cell Signaling Technology | #13846 | |
| 抗磷酸化p130 Cas抗体 | Cell Signaling Technology | #4011 | |
| HA标签兔单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | #3724 | |
| DYKDDDDK标签兔单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | #14793 | |
| 免疫沉淀 | 蛋白A/G琼脂糖珠 | Santa Cruz | sc-2003 |
| 细胞转染 | 聚乙烯亚胺 | -- | -- |
| 细胞培养 | 聚凝胺 | -- | -- |
| 嘌呤霉素 | -- | -- | |
| 动物实验 | NOD-SCID小鼠 | -- | -- |
| 18F-氟代脱氧葡萄糖 | -- | -- | |
| 免疫组化 | DAB显色试剂盒 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | AGS和HGC-27细胞系来源(Procell),培养基(RPMI1640+10%FBS),培养条件(37℃、5%CO2) 阅读提示:Methods: Cell culture |
| 慢病毒感染和质粒转染 | FLOT1/BCAR1过表达和敲低慢病毒,polybrene浓度(10μg/mL),嘌呤霉素浓度(2μg/mL),筛选时间(14天) 阅读提示:Methods: Lentivirus construction and infection and plasmids transfection |
| 细胞增殖实验 | MTT浓度(10μl/孔),孵育时间(4小时),DMSO用量(100μl),测量波长(570/630nm) 阅读提示:Methods: Cell proliferation assay |
| 集落形成实验 | 6孔板,培养时间(2-3周),结晶紫浓度(0.1%),固定液(4%多聚甲醛) 阅读提示:Methods: Colony formation assay |
| 伤口愈合实验 | 12孔板,划痕工具(10μl移液器吸头),观察时间(0h、24h或48h),无血清培养基 阅读提示:Methods: Cell wound healing assay |
| Transwell侵袭实验 | 8μm孔径Transwell,Matrigel预包被,下室20%FBS,培养时间(2天),染色(0.1%结晶紫) 阅读提示:Methods: Transwell invasion assay |
| 免疫共沉淀 | 抗体(抗HA、抗DYKDDDDK),Protein A/G PLUS Agarose(sc-2003),洗液PBST 阅读提示:Methods: Immunoprecipitation |
| 体内异种移植 | 小鼠品系(NOD-SCID,雄性,4周龄),分组(每组5只),细胞数量(OE 5×10^6,KD 1×10^7),测量频率,处死时间 阅读提示:Methods: In vivo xenograft mouse model |
| 肺转移模型 | 尾静脉注射细胞数量(5×10^6),观察时间(OE 30天,KD 60天),18F-FDG注射剂量(3.7-7.4 MBq),成像时间(注射后50-60分钟) 阅读提示:Methods: In vivo xenograft mouse model |
| 免疫组化 | 抗体稀释度(FLOT1、p130Cas、p-ERK1/2、Ki67均为1:200),抗原修复(煮沸30分钟),阻断(3%过氧化氢,10%山羊血清),评分标准 阅读提示:Methods: Human GC tissue microarray preparation and Immunohistochemistry |