构建SPOP过表达的人正常肝细胞模型
验证SPOP过表达对WRL68细胞增殖的影响。
使用SPOP过表达慢病毒和空载体病毒转染WRL68细胞,经嘌呤霉素筛选后通过qRT-PCR验证SPOP表达。
SPOP regulates the expression profiles and alternative splicing events in human hepatocytes.
包含细胞增殖实验(CCK8、克隆形成)、转录组测序及qRT-PCR验证、可变剪接分析及公共数据库生存分析,但缺乏动物模型或临床样本的功能验证。
人正常肝细胞WRL68 SPOP过表达WRL68细胞模型
SPOP过表达慢病毒转染WRL68细胞,并经1.5 μg/mL嘌呤霉素筛选2周 CCK8实验细胞密度1×10^3细胞/孔,培养24、48、72、96小时 克隆形成实验细胞密度1×10^3细胞/孔,培养2周 RNA-seq每组3个生物学重复,差异基因筛选阈值|log2FC|>0且padj<0.05 TCGA数据包含374例HCC与50例正常对照
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证SPOP过表达对WRL68细胞增殖的影响。
使用SPOP过表达慢病毒和空载体病毒转染WRL68细胞,经嘌呤霉素筛选后通过qRT-PCR验证SPOP表达。
评估SPOP过表达是否促进WRL68细胞增殖。
采用CCK8实验和克隆形成实验检测细胞增殖能力。
鉴定SPOP过表达后差异表达基因和可变剪接事件。
对SPOP组和vec组细胞进行RNA-seq,分析DEGs和RASEs,并进行GO和KEGG富集分析。
评估SPOP表达与HCC进展及预后的相关性。
利用TCGA和GEO数据库分析SPOP在HCC组织和正常组织中的表达差异,并分析与临床病理参数和生存期的关系。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 杜氏改良Eagle培养基 | Procell | PM150210 |
| 胎牛血清 | Gibco | 10099141C | |
| 青霉素-链霉素 | Invitrogen | 15140122 | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | 11668027 |
| RNA提取 | RNA提取试剂 | Vazyme | R401-01 |
| 反转录 | Hiscript III逆转录酶 | Vazyme | R302-01 |
| qRT-PCR | Taq Pro通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme | Q712-02 |
| LightCycler 96SW1.1实时荧光定量PCR系统 | Roche | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK8试剂盒 | Beyotime Biotechnology | C0038 |
| RNA-seq | RNA Nano 6000检测试剂盒 | -- | -- |
| NEBNext Ultra定向RNA文库制备试剂盒(Illumina) | NEB | -- | |
| Bioanalyzer 2100系统 | Agilent | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | WRL68细胞来源、培养基、血清浓度、抗生素浓度。 阅读提示:Materials and Methods 2.1 |
| SPOP过表达 | 慢病毒构造、转染试剂、筛选浓度和时间。 阅读提示:Materials and Methods 2.1 |
| 细胞增殖实验 | CCK8实验的细胞密度、培养时间、检测波长;克隆形成实验的细胞密度、培养时间、染色方法。 阅读提示:Materials and Methods 2.3, 2.4 |
| RNA-seq | 建库试剂盒、测序平台、读长、比对软件及参数、差异表达分析软件及阈值。 阅读提示:Materials and Methods 2.5-2.9 |
| 公共数据分析 | TCGA数据集中HCC和正常样本的数量、GEO数据集编号、生存分析工具。 阅读提示:Materials and Methods 2.10 |