建立动物模型和体外模型
建立体内脑缺血再灌注模型和体外OGD/R共培养模型,以研究髓系Notch1的作用。
使用Notch1FL/FL和Notch1M-KO小鼠进行MCAO手术,构建CIRI模型;体外将Notch1-siRNA转染的BV2细胞与HT22细胞共培养并进行OGD/R处理。
Targeting Microglia/Macrophages Notch1 Protects Neurons from Pyroptosis in Ischemic Stroke.
包含体内MCAO模型、体外细胞共培养模型、功能验证(神经功能评分、梗死体积)和机制验证(蛋白表达、通路分析)。
脑缺血再灌注小鼠模型(Notch1FL/FL和Notch1M-KO小鼠,MCAO) BV2小胶质细胞与HT22海马神经元共培养模型
Notch1M-KO小鼠的基因型验证(髓系细胞Notch1蛋白缺失) 体外OGD/R处理条件:6小时缺氧(1% O2)和12小时复氧 共培养条件:BV2细胞与HT22细胞以1×10^4 cells/cm^2密度,Transwell板(0.4 μm孔径) 体内MCAO模型:1小时阻塞、72小时再灌注 流式分析脑内MDM的比例(CD45highCD11b+)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立体内脑缺血再灌注模型和体外OGD/R共培养模型,以研究髓系Notch1的作用。
使用Notch1FL/FL和Notch1M-KO小鼠进行MCAO手术,构建CIRI模型;体外将Notch1-siRNA转染的BV2细胞与HT22细胞共培养并进行OGD/R处理。
评估髓系Notch1敲除对CIRI严重程度的影响。
通过神经功能评分和TTC染色评估梗死体积。
观察Notch1敲除对小胶质细胞/巨噬细胞极化的影响。
免疫荧光染色检测CD68、iNOS、YM1,Western blot检测iNOS和YM1蛋白表达。
评估Notch1敲除对CIRI诱导的焦亡的影响。
Western blot和RT-qPCR检测NLRP3、Cl-caspase1、Cl-GSDMD、IL-1β和IL-18的表达。
验证小胶质细胞Notch1敲低对神经元凋亡和JAK2/STAT3通路的影响。
通过共培养系统,流式检测HT22细胞凋亡,CCK-8检测细胞活力,Western blot检测Bcl2、Bax、P-JAK2、P-STAT3。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫荧光染色 | CD68抗体 | Invitrogen | 14-0688-82 |
| Notch1抗体 | Invitrogen | MA5-32080 | |
| Ym1抗体 | STEMCELL Technologies | 60130 | |
| iNOS抗体 | Servicebio | GB11119-100 | |
| Iba1抗体 | Servicebio | GB12105 | |
| Alexa Flour 594 驴抗兔IgG抗体 | Ant Gene | ANT030 | |
| Alexa Flour 594 驴抗鼠IgG抗体 | Ant Gene | ANT029 | |
| Alexa Fluot 488 山羊抗鼠IgG抗体 | Ant Gene | ANT044 | |
| Alexa Fluot 488 驴抗兔IgG抗体 | Ant Gene | ANT024 | |
| Western blot | Notch1抗体 | Invitrogen | MA5-32080 |
| 裂解的caspase1抗体 | Cell Signaling Technology | 89332 | |
| 裂解的GSDMD抗体 | ABMART | P30823S | |
| NLRP3抗体 | ABMART | T55651S | |
| IL1β抗体 | Cell Signaling Technology | 12242 | |
| IL18抗体 | ABMART | M027287S | |
| JAK2抗体 | Cell Signaling Technology | 3230 | |
| P-JAK2抗体 | Cell Signaling Technology | 66245 | |
| STAT3抗体 | Cell Signaling Technology | 12640S | |
| P-STAT3抗体 | Cell Signaling Technology | 9145S | |
| Bax抗体 | Cell Signaling Technology | 41162 | |
| Bcl2抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-492 | |
| iNOS抗体 | Abcam | ab49999 | |
| GAPDH抗体 | Servicebio | GB11002 | |
| β-actin抗体 | Servicebio | GB12001 | |
| 抗兔IgG HRP偶联抗体 | Cell Signaling | 7074S | |
| 抗鼠IgG HRP偶联抗体 | Cell Signaling Technology | 7076S | |
| 流式细胞术 | CD45抗体 | BD Bioscience | 553079 |
| CD11b抗体 | BD Bioscience | 550993 | |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| Hifair® Ⅱ 第一链cDNA合成SuperMix | Yeasen Biotechnology | 11123ES | |
| SYBR Premix Ex Taq2 | TaKaRa | -- | |
| 细胞培养 | 高糖DMEM培养基 | Gibco | C11995500BT |
| 胎牛血清 | TianHang Biotechnology | 11011-8611 | |
| 无糖DMEM培养基 | Procell Life Science & Technology | PM150270 | |
| 细胞处理 | 嘌呤霉素 | -- | -- |
| 凋亡检测 | Annexin V-EGFP | -- | -- |
| 碘化丙啶 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系和基因型(Notch1FL/FL和Notch1M-KO);年龄(8周龄);性别(雄性);MCAO阻塞时间(1小时)和再灌注时间(72小时) 阅读提示:Materials and Methods 2.1和2.2节 |
| 细胞培养与处理 | BV2和HT22细胞系;共培养密度(1×10^4 cells/cm^2);OGD/R条件:无糖DMEM,6小时缺氧(1% O2),复氧12小时 阅读提示:Materials and Methods 2.11和2.12节 |
| 转染 | Notch1-siRNA慢病毒序列(GCCAGGTTATGAAGGTGTATA);转染时细胞密度(3~5×10^4 cells/mL);病毒体积(10 μL)和HiTransG A体积(40 μL);筛选浓度(2 μg/mL puromycin) 阅读提示:Materials and Methods 2.10节 |
| 检测指标 | 流式细胞术检测脑内单核细胞(CD45highCD11b+)和凋亡细胞比例;Western blot检测焦亡相关蛋白和JAK2/STAT3磷酸化;免疫荧光检测CD68、iNOS、YM1阳性细胞数量 阅读提示:Materials and Methods 2.5、2.6、2.7和2.14节;Results 3.2、3.3、3.5和3.6节 |