建立糖尿病大鼠模型和细胞损伤模型
模拟糖尿病肾小管损伤的体内和体外环境
使用STZ诱导糖尿病大鼠模型,持续24周;使用HG/TGF-β刺激HK-2细胞,以模拟糖尿病肾小管细胞损伤状态。
VDR regulates mitochondrial function as a protective mechanism against renal tubular cell injury in diabetic rats.
包含STZ诱导糖尿病大鼠模型、HG/TGF-β刺激的HK-2细胞、VDR过表达/敲低、Mfn2 siRNA、3-MA干预及免疫共沉淀等多项独立实验,并进行功能验证和机制验证。
STZ诱导的糖尿病大鼠模型 HK-2人肾近端肾小管上皮细胞
STZ剂量:40 mg/kg/天,连续4天腹腔注射,血糖>16.7 mmol/L视为糖尿病模型 骨化三醇给药:1μg/kg每日口服,持续24周 体外刺激:HG 30mM + TGF-β 50 ng/ml,处理72小时 自噬抑制剂3-MA使用浓度:5 mM VDR siRNA、Mfn2 siRNA及VDR过表达质粒转染,使用Lipofectamine 3000
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟糖尿病肾小管损伤的体内和体外环境
使用STZ诱导糖尿病大鼠模型,持续24周;使用HG/TGF-β刺激HK-2细胞,以模拟糖尿病肾小管细胞损伤状态。
评估VDR激动剂对糖尿病大鼠肾损伤的改善作用
通过HE、PAS、Masson染色观察肾脏病理变化,检测尿白蛋白、血清肌酐等生化指标,并用Western blot检测FN、Col-1表达。
明确糖尿病状态下VDR对线粒体自噬和分裂/融合的调节作用
用IHC和Western blot检测VDR、PINK1、Parkin、LC3II、Mfn2等蛋白表达。
揭示VDR直接调控Mfn2的分子机制
通过免疫共沉淀检测VDR与Mfn1、Mfn2、Drp1、Fis1的相互作用。
验证VDR激活对线粒体功能的影响及Mfn2的介导作用
在HK-2细胞中使用VDR过表达质粒、VDR siRNA、Mfn2 siRNA、3-MA等干预,检测线粒体自噬、ROS、MMP、ATP等指标。
验证VDR-Mfn2-MAMs-Fundc1通路在调节线粒体自噬中的作用
通过TEM和IF双染观察MAMs结构,检测Mfn2与SERCA2共定位,并检测线粒体Ca2+水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | 骨化三醇 | Selleck | S1466 |
| 帕立骨化醇 | Selleck | S6681 | |
| 3-甲基腺嘌呤 | GlpBio | GC10710 | |
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | GIBCO | -- |
| 胎牛血清 | Procell | -- | |
| 牛血清白蛋白 | GIBCO | -- | |
| 细胞因子处理 | 重组人TGF-β1蛋白 | Proteintech | HZ-1011 |
| 动物造模 | 链脲佐菌素 | Sigma-Aldrich | -- |
| 免疫荧光 | MitoTracker Red CMXRos | Thermo Fisher Scientific | M7512 |
| 线粒体ROS检测 | MitoSOX Red | Thermo Fisher Scientific | M36008 |
| 线粒体膜电位检测 | JC-1试剂盒 | FUSHENBIO | FS1166 |
| 内质网标记 | ER-Tracker Blue | Yeasen Biotechnology | 40761ES50 |
| 线粒体钙离子检测 | Rhod-2AM | YEASEN | -- |
| 线粒体标记 | MitoTracker-Green | YEASEN | -- |
| 复合物V活性检测 | 线粒体复合物V/ATP合酶活性检测试剂盒 | ACMEC Biochemical | AC-10311 |
| ATP检测 | ATP活性检测试剂盒 | Beyotime | S0026 |
| 线粒体分离 | 组织线粒体分离试剂盒 | MedChemExpress | HY-K1061 |
| 细胞线粒体分离试剂盒 | MedChemExpress | HY-K1060 | |
| 免疫共沉淀 | 免疫共沉淀试剂盒 | Beyotime Biotechnology | P2179M |
| 转染 | Lipofectamine 3000 | Invitrogen | -- |
| Western blot | 增强化学发光系统 | Amersham | -- |
| PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Beyotime | C0037 |
| 生化检测 | 大鼠白蛋白ELISA试剂盒 | EK-Bioscience | EK-R37872 |
| 生物化学分析 | 全自动生化分析仪 | Hitachi | 7600 |
| 血糖检测 | 血糖仪 | ROCHE ACCU-CHEK | -- |
| 图像分析 | Image J软件 | NIH | -- |
| 统计分析 | SPSS 22.0 | -- | -- |
| GraphPad Prism 7.0 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物实验 | STZ剂量和注射方式,骨化三醇剂量及给药途径,动物周龄和体重,分组及样本量 阅读提示:Methods部分“Animal experiment” |
| 细胞培养及干预 | HG浓度、TGF-β浓度、刺激时间、帕立骨化醇浓度、3-MA浓度、转染试剂及实验重复次数 阅读提示:Methods部分“Cell culture and intervention”及“Gene intervention experiment” |
| 线粒体功能检测 | MitoSOX Red浓度及孵育时间,JC-1使用方法,Rhod-2AM浓度,ATP检测试剂盒操作步骤,复合物V活性检测方法 阅读提示:Methods部分“Mitochondrial ROS and mitochondrial membrane voltage potential (MMP) detection”及“Assessment of mitochondrial Ca2+ levels”等 |
| 线粒体自噬检测 | Western blot抗体稀释比例、蛋白上样量、显影方法,IHC染色条件,IF共定位分析参数 阅读提示:Methods部分“Western blotting experiment”及“Cells Immunofluorescence (IF) examination” |
| MAMs完整性检测 | TEM样本制备方法,IF双染(ER-Tracker Blue和MitoTracker Red)的使用浓度及孵育条件,共定位分析方法 阅读提示:Methods部分“Electron microscopy observation”及“Cells Immunofluorescence (IF) examination” |