NEK2通过Keap1/Nrf2调控HMOX1表达影响胃癌细胞铁死亡敏感性

NEK2 affects the ferroptosis sensitivity of gastric cancer cells by regulating the expression of HMOX1 through Keap1/Nrf2.

作者信息Jianyong Wu, Desheng Luo, Laizhen Tou, Hongtao Xu, Chuan Jiang, Dan Wu, Haifeng Que, Jingjing Zheng
PMID38503948
发布时间2025-01
DOI10.1007/s11010-024-04960-y

实验完整度

研究包含细胞模型(AGS细胞系)、铁死亡诱导、功能验证(细胞活力、死亡、铁离子、氧化应激)和机制验证(RNA-seq、Western blot、siRNA回复实验)。

主要模型

AGS细胞系(人胃癌细胞) 体外铁死亡模型(RSL3或Erastin诱导)

重点核对

铁死亡诱导剂RSL3浓度32 μM、Erastin浓度10 μM,处理12小时 siRNA敲低NEK2、HMOX1、Nrf2及其效率验证 MG132(10 μM)、CQ(25 μM)、Baf-A1(100 nM)处理时间6小时 CCK-8检测细胞活力,Calcein-AM/PI染色检测活死细胞 RNA-seq筛选差异表达基因(|log2FC|≥1且q<0.05)

摘要

NEK2是一种丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,参与调控多种肿瘤的进展。我们之前的研究发现NEK2在胃癌中高表达,并提示患者预后较差。然而,其在胃癌中的作用和机制研究较少。在本研究中,我们在体外建立了由RSL3或Erastin诱导的AGS细胞铁死亡模型,并通过siRNA敲低NEK2、HMOX1、Nrf2。使用检测试剂盒分析细胞活力、MDA水平、GSH和GSSG含量,并使用FeRhoNox™-1荧光探针、BODIPY™ 581/591 C11脂质氧化探针、CM-H2DCFDA荧光探针分别检测细胞内Fe2+、脂质过氧化和ROS水平。使用Calcein-AM/PI染色检测活死细胞比例,qRT-PCR和Western blot用于鉴定细胞中基因的mRNA和蛋白水平,免疫荧光染色用于分析Nrf2在细胞中的定位,RNA-seq用于分析mRNA表达谱的变化,并结合FerrDb数据库筛选铁死亡相关分子,以阐明NEK2对胃癌细胞铁死亡敏感性的影响。我们发现抑制NEK2可增强胃癌细胞对RSL3和Erastin诱导的铁死亡的敏感性,这体现在与单独诱导铁死亡相比,抑制NEK2联合诱导铁死亡时:细胞活力和GSH水平进一步降低,而死亡细胞比例、Fe2+水平、ROS水平、脂质氧化水平、MDA水平、GSSG水平和GSSG/GSH比值进一步升高。机制研究发现,抑制NEK2可促进铁死亡相关基因HMOX1的表达,并通过增加HMOX1增强胃癌细胞对铁死亡的敏感性。进一步的机制研究发现,抑制NEK2可促进Keap1的泛素化和蛋白酶体降解,增加细胞核中Nrf2的水平,从而促进HMOX1的表达。本研究证实NEK2可通过Keap1/Nrf2信号调控HMOX1表达,进而影响胃癌细胞对铁死亡的敏感性,丰富了NEK2在胃癌中的作用和机制。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
NEK2是否通过调控铁死亡相关基因影响胃癌细胞对铁死亡的敏感性?
核心机制
NEK2通过Keap1/Nrf2信号调控HMOX1表达:抑制NEK2促进Keap1的泛素化-蛋白酶体降解,增加核内Nrf2水平,从而上调HMOX1表达,增强铁死亡敏感性。
主要证据
在AGS细胞中,敲低NEK2增强RSL3/Erastin诱导的铁死亡(降低活力、增加死亡、Fe2+、ROS、脂质过氧化、MDA,降低GSH);敲低HMOX1逆转这些效应;敲低Nrf2降低HMOX1表达并恢复细胞活力。
研究意义
该研究揭示了NEK2在胃癌中的新机制,为靶向NEK2通路预防和治疗胃癌提供证据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立铁死亡模型并检测NEK2表达

验证铁死亡诱导剂RSL3和Erastin是否影响NEK2表达。

用10 μM Erastin或32 μM RSL3处理AGS细胞12小时,通过Western blot检测NEK2蛋白水平。

2

敲低NEK2并检测铁死亡指标

评估抑制NEK2对胃癌细胞铁死亡敏感性的影响。

使用siRNA敲低NEK2,然后单独或联合RSL3/Erastin处理,检测细胞活力、Fe2+、ROS、脂质过氧化、MDA、GSH/GSSG和活死细胞比例。

3

RNA-seq筛选铁死亡相关基因

发现NEK2调控的潜在铁死亡相关基因。

对敲低NEK2的AGS细胞进行RNA-seq,筛选差异表达基因与FerrDb数据库交叉,鉴定HMOX1和CHAC1作为候选,并通过qRT-PCR和Western blot验证。

4

验证HMOX1在NEK2调控铁死亡中的作用

确定HMOX1是否是NEK2调控铁死亡敏感性的关键分子。

在敲低NEK2的基础上再敲低HMOX1,检测铁死亡相关指标。

5

研究NEK2调控HMOX1的机制

阐明NEK2如何影响HMOX1表达。

检测NEK2敲低对HMOX1蛋白降解、Nrf2水平和定位、Keap1水平的影响;使用MG132、CQ、Baf-A1处理分析Keap1降解途径;在敲低NEK2基础上敲低Nrf2,检测HMOX1水平、细胞活力和死亡。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
F12K培养基iCell0007
胎牛血清Procell164210-500
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen11668-019
Opti-MEM培养基GIBCO31985
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
核蛋白和胞浆蛋白提取试剂盒BeyotimeP0027
蛋白定量染料试剂Bio-Rad5000006
PVDF膜Bio-Rad162-0177
NEK2抗体abcamab279717
Nrf2抗体affnityBF8017
Keap1抗体abcamab227828
HMOX1抗体abcamab68477
GAPDH抗体abcamab9485
Lamin B抗体abcamab16048
HRP标记的二抗Dianova--
ECL显影液Bio-Rad170-5060
GelDoc成像系统Bio-Rad--
Trizol试剂Invitrogen life technologies--
CCK-8检测试剂盒Seven Seas Biology20150520
FeRhoNox-1荧光探针GoryoGC901
CM-H2DCFDA荧光探针SolarbioD6470
BODIPY 581/591 C11脂质氧化探针InvitrogenD3861
MDA检测试剂盒BeyotimeS0131S
Calcein-AM/PI双染试剂盒Yi Sheng Bio40747ES7
Nrf2抗体proteintech16396-1-AP
Cy3标记的二抗Wuhan Bode BioengineeringBA1032
DAPI染料BeyotimeC1002
MG132蛋白酶体抑制剂----
氯喹----
巴弗洛霉素A1----
AGS细胞系Sebikonh016

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与转染
AGS细胞培养基(F12K+5%FBS)、siRNA转染方法(Lipofectamine 2000)、转染时间
阅读提示:Materials and methods: Cell lines, Cell transfection
铁死亡诱导
RSL3浓度32 μM、Erastin浓度10 μM、处理时间12小时
阅读提示:Figure 1 legend
铁死亡指标检测
CCK-8细胞活力、Fe2+探针浓度5 μM、ROS探针孵育时间20分钟、脂质氧化探针孵育时间20分钟、MDA检测方法、GSH/GSSG检测方法、Calcein-AM/PI染色
阅读提示:Materials and methods: Cell viability, Fe2+ level detection, ROS, Lipid oxidation levels, MDA detection, GSH and GSSG levels, Detection of living/dead cells
分子表达检测
Western blot抗体(NEK2、Nrf2、Keap1、HMOX1)、qRT-PCR引物序列
阅读提示:Materials and methods: Western blot, qRT-PCR
机制验证
CHX处理时间、MG132浓度10 μM、CQ浓度25 μM、Baf-A1浓度100 nM、处理时间6小时、siRNA敲低Nrf2
阅读提示:Figure 4 legend, Materials and methods: Cell transfection
RNA-seq分析
差异基因筛选标准(|log2FC|≥1且q<0.05)、FerrDb数据库交叉
阅读提示:Materials and methods: RNA-seq, Results: Inhibition of NEK2 promoted the expression of HMOX1