AML来源的间充质干细胞通过BMP通路上调CTGF表达并诱导K562-ADM梭形转化和化疗耐药

AML‑derived mesenchymal stem cells upregulate CTGF expression through the BMP pathway and induce K562‑ADM fusiform transformation and chemoresistance.

作者信息Haiying Li, Juan Li, Juan Cheng, Xuan Chen, Lanxia Zhou, Zhao Li
PMID31322275
期刊Oncol Rep
发布时间2019-09
DOI10.3892/or.2019.7237

实验完整度

包含细胞共培养、RT-qPCR、Western blot、ELISA、细胞周期等实验,但缺乏动物模型和功能验证(如敲低/过表达)。

主要模型

AML-MSCs与K562-ADM共培养体系 AML-MSCs与K562共培养体系

重点核对

共培养时间:24、48、72小时 细胞系:K562-ADM和K562细胞 RT-qPCR检测BCR-ABL、BMP4、CTGF表达 Western blot检测CTGF和p-Smad1/5蛋白表达

摘要

骨髓来源的间充质干细胞(MSCs)是构成骨髓微环境(BMM)的基本细胞成分。在急性髓系白血病(AML)中,MSCs的形态和功能随着BMM的转化而改变。此外,MSCs向成骨细胞的转化由骨形态发生蛋白(BMP)通路决定,最终导致下游粘附分子结缔组织生长因子(CTGF)的表达改变。本研究旨在探讨AML来源的间充质干细胞(AML-MSCs)与K562和K562-ADM细胞系共培养时可能的通路相互作用。将AML-MSCs与K562/K562-ADM细胞共培养,通过形态学检测、过氧化物酶染色(POX)、逆转录定量聚合酶链反应(RT-qPCR)和荧光原位杂交(FISH)验证细胞间的相互作用。通过流式细胞术检测共培养条件下K562/K562-ADM细胞的增殖。通过RT-qPCR和Western blot分析检测BMP4和CTGF的表达水平。通过酶联免疫吸附试验(ELISA)检测白细胞介素(IL)-6和IL-32。在共培养体系中,K562-ADM细胞发生梭形转化。这种转化的发生与BMP通路失调导致CTGF表达增加有关。AML-MSCs促进了K562-ADM细胞的增殖,但抑制了K562细胞的增殖。这些发现通过可溶性细胞因子IL-6和IL-32的表达变化得到证实。总的来说,本研究结果表明AML-MSCs通过BMP通路调节CTGF的表达。此外,它们影响细胞因子的产生,诱导纺锤形转化,并增加K562-ADM细胞的耐药性。因此,通过BMP通路的形态转化为我们提供了一个新的靶点,以规避肿瘤的发生、发展、耐药、侵袭和转移。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
AML-MSCs是否通过BMP通路调节CTGF表达,从而影响K562-ADM细胞的形态和化疗耐药。
核心机制
AML-MSCs通过BMP通路失调(BMP4和p-Smad1/5下调)上调CTGF表达,促进K562-ADM细胞的粘附、梭形转化和增殖,并增加IL-6和IL-32分泌,导致化疗耐药。
主要证据
共培养实验显示K562-ADM细胞发生梭形转化;RT-qPCR和Western blot显示CTGF上调、BMP4和p-Smad1/5下调;ELISA显示IL-6和IL-32升高;细胞周期显示K562-ADM增殖增加,K562增殖受抑。
研究意义
该研究为通过BMP通路抑制肿瘤发生、发展、耐药、侵袭和转移提供了新靶点,可能有助于清除微小残留病。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证AML-MSCs特性

确认从AML患者骨髓中分离的MSCs具有间充质干细胞特征。

培养AML-MSCs并诱导成骨分化,通过碱性磷酸酶染色和茜素红染色验证。

2

共培养模型建立

建立AML-MSCs与K562/K562-ADM细胞的共培养体系,观察细胞相互作用。

将AML-MSCs与K562或K562-ADM细胞共培养,分别作用24、48、72小时。

3

细胞来源和形态验证

证实梭形转化细胞来源于K562-ADM细胞而非AML-MSCs。

通过POX染色、RT-qPCR检测BCR-ABL和FISH分析验证细胞身份。

4

BMP4和CTGF表达检测

检测共培养后BMP4和CTGF在基因和蛋白水平的表达变化。

通过RT-qPCR和Western blot检测BMP4、CTGF和p-Smad1/5表达。

5

细胞因子分泌检测

检测共培养上清中IL-6和IL-32的水平变化。

通过ELISA检测共培养上清中IL-6和IL-32浓度。

6

细胞周期与增殖检测

评估共培养对K562和K562-ADM细胞增殖的影响。

通过流式细胞术分析细胞周期,计算G2+S期比例。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基----
胎牛血清ZheJiang Tianhang Biotechnology Co., Ltd.--
DMEM低糖完全培养基----
地塞米松----
维生素C----
β-甘油磷酸----
碱性磷酸酶孵育液BeiJing Solarbio Technology Co., Ltd.--
茜素红BeiJing Solarbio Technology Co., Ltd.--
MTTSigma--
iScript gDNA清除cDNA合成试剂盒Bio-Rad--
iTaq Universal SYBR-Green超混液Bio-Rad--
BCR-ABL融合基因检测试剂盒Shanghai Yuanqi Biomedical Technology Co. Ltd.--
BMP4、CTGF、β-actin引物Takara--
罗氏LightCycler 480Roche--
PVDF膜Merck Millipore--
抗CTGF抗体Abcamab6992
抗磷酸化Smad1/5抗体Cell Signaling Technology9516
抗β-actin抗体Cell Signaling Technology4970
山羊抗兔IgG辣根过氧化物酶偶联二抗Invitrogen; Thermo Fisher Scientific31460
ECL试剂盒Elabscience Biotechnology Co., Ltd.--
裂解液成分(SDS、Tris-HCl、抑肽酶、亮抑酶肽、AEBSF)----
BCR-ABL荧光探针Jinpujia Pharmaceutical Technology Co., Ltd.--
DAPI----
胃蛋白酶----
人IL-6 ELISA试剂盒Shanghai JiangLai Biotechnology Co., Ltd.--
人IL-32 ELISA试剂盒Shanghai JiangLai Biotechnology Co., Ltd.--
细胞周期染色试剂盒Hangzhou Lianke Biotechnology Co., Ltd.--
BD FACS Verse流式细胞仪BD Bioscienses--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
共培养实验
共培养时间点(24、48、72小时);K562/K562-ADM细胞起始浓度(5×10^5 cells/ml);AML-MSCs代数(第三代)
阅读提示:Materials and methods: ‘Co-culture of AML-MSCs and K562 or K562-ADM cells’
RT-qPCR
引物序列;扩增条件;内参基因(β-actin)
阅读提示:Materials and methods: ‘RT-qPCR’
Western blot
抗体稀释比例(anti-CTGF 1:1000, anti-p-Smad1/5 1:1000, anti-β-actin 1:1000);蛋白上样量(20 μg)
阅读提示:Materials and methods: ‘Western blot analysis’
ELISA
IL-6和IL-32检测试剂盒品牌;具体操作按说明书
阅读提示:Materials and methods: ‘Detection of IL-6 and IL-32 in the supernatant by enzyme linked immunosorbent assay (ELISA)’
细胞周期分析
检测时间点(24、48、72小时);细胞数量(2×10^5至1×10^6)
阅读提示:Materials and methods: ‘Cell cycle detection’