人脐带间充质干细胞通过Hippo通路保护激素性股骨头坏死

Human Umbilical Cord Mesenchymal Stem Cells Protect Against Steroid-Induced Osteonecrosis of the Femoral Head Through Hippo Pathway.

作者信息Hengte Xing, Wenxiang Cai, Junwen Chen, Hanzhe Xu, Yubiao Zhang, Changheng Zhong, Jianlin Zhou, Hao Peng
PMID41898371
发布时间2026-03-22
DOI10.3390/biomedicines14030727

实验完整度

包含体内动物模型和体外细胞实验两个独立证据层级,并通过Western blot、免疫荧光、生化检测和电子显微镜等进行了功能与机制验证。

主要模型

C57BL/6小鼠SANFH模型 原代小鼠骨微血管内皮细胞(BMECs) 人脐带间充质干细胞(hUC-MSCs)

重点核对

SANFH小鼠模型建立:LPS(20 μg/kg)腹腔注射和甲泼尼龙(MPS,20 mg/kg)肌肉注射,周期和频率需核对 hUC-MSCs干预:尾静脉注射5×10^5细胞/只,注射频率和周期需核对 BMECs损伤条件:Dex浓度10 μM处理24小时 hUC-MSCs与BMECs共培养比例:8:1 铁死亡抑制对照:Fer-1浓度1 μM处理24小时

摘要

背景:糖皮质激素(GCs)是激素性股骨头缺血性坏死(SANFH)的关键致病因素。GCs可直接损伤骨微血管内皮细胞(BMECs),导致骨内血供受损。近期研究表明Hippo信号通路可能参与SANFH的发病机制;然而,其在血管内皮修复和血管生成中的作用仍不清楚。本研究旨在探讨人脐带间充质干细胞(hUC-MSCs)对SANFH的治疗作用,特别关注其对BMECs的保护或修复机制。方法:在体内,建立SANFH小鼠模型,分为NC、MPS和hUC-MSCs组,随后进行Micro-CT成像、苏木精-伊红(HE)染色和免疫组织化学(IHC)(每组n=8)。在体外,将BMECs分为NC、地塞米松(Dex)、hUC-MSCs和Fer-1组,分析细胞生物学行为。通过Western blotting和免疫荧光显微镜评估靶蛋白表达。通过生化测定检测铁死亡相关标志物。通过透射电子显微镜观察线粒体超微结构变化。结果:在体内,MPS组表现出显著的骨空洞、骨小梁稀疏和骨小梁结构紊乱。hUC-MSCs组骨微结构明显改善,HE染色显示股骨头空骨陷窝率显著降低,IHC结果显示CD31和血管内皮生长因子(VEGF)表达显著增加。在体外,Dex刺激抑制了BMECs增殖。在Dex处理的细胞中,细胞内活性氧(ROS)、脂质过氧化物、亚铁离子(Fe2+)、丙二醛(MDA)、酰基辅酶A合成酶长链家族成员4(ACSL4)和烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸氧化酶4(NOX4)水平均升高,而谷胱甘肽(GSH)和谷胱甘肽过氧化物酶4(GPX4)表达降低。透射电子显微镜显示质膜破裂和线粒体嵴减少或消失。此外,Dex促进了Hippo介导的Yes相关蛋白(YAP)/转录共激活因子PDZ结合基序(TAZ)磷酸化,上调NOX4表达,并抑制CD31和VEGF表达。hUC-MSCs处理后,BMECs增殖、迁移和成管能力增强。细胞内GSH和GPX4水平升高,抗氧化能力恢复,过氧化物积累减少,细胞免受铁死亡,效果与Fer-1组相当。此外,hUC-MSCs抑制YAP/TAZ磷酸化并促进CD31和VEGF表达升高。结论:这些发现表明,hUC-MSCs可能通过调节Hippo-YAP/TAZ信号通路,减轻Dex诱导的BMECs铁死亡,增强BMECs迁移和血管生成,并改善SANFH的股骨头微结构。本研究为hUC-MSCs治疗SANFH的潜力提供了新的见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
hUC-MSCs是否通过Hippo信号通路保护BMECs免受糖皮质激素诱导的铁死亡,从而改善SANFH的骨微结构和血管生成?
核心机制
hUC-MSCs通过抑制Hippo介导的YAP/TAZ磷酸化,下调NOX4表达,减轻BMECs的铁死亡,并促进CD31和VEGF表达,增强血管生成。
主要证据
在SANFH小鼠模型中,hUC-MSCs治疗改善了股骨头骨微结构,CD31和VEGF表达增加;在BMECs中,hUC-MSCs抑制了Dex诱导的YAP/TAZ磷酸化、NOX4上调及铁死亡相关指标(ROS、Fe2+、MDA、ACSL4)增加,同时恢复了GPX4和GSH水平,增强了细胞增殖、迁移和成管能力。
研究意义
该研究为hUC-MSCs治疗SANFH提供了新的机制见解,表明其可能通过调节Hippo信号通路发挥治疗潜力。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体内SANFH模型建立与hUC-MSCs干预

评估hUC-MSCs对SANFH小鼠股骨头骨微结构和微血管的保护作用。

使用C57BL/6小鼠,通过LPS和MPS诱导SANFH模型,分为NC、MPS和hUC-MSCs组,hUC-MSCs组接受尾静脉注射hUC-MSCs。

2

股骨头微结构和血管标志物分析

检测hUC-MSCs对SANFH小鼠股骨头骨微结构和血管生成的影响。

通过Micro-CT评估骨小梁参数,HE染色分析空骨陷窝率,免疫组化检测CD31和VEGF表达。

3

BMECs的分离、鉴定和损伤模型建立

获得BMECs并确定Dex损伤和hUC-MSCs共培养的最佳条件。

培养原代BMECs,通过免疫荧光鉴定CD31和vWF表达。使用CCK-8评估不同Dex浓度和不同共培养比例对细胞活力的影响。

4

BMECs功能检测

评估Dex和hUC-MSCs对BMECs迁移、侵袭和成管能力的影响。

使用划痕实验、Transwell侵袭实验和Matrigel成管实验检测BMECs功能。

5

铁死亡相关指标检测

验证Dex是否诱导BMECs铁死亡以及hUC-MSCs的作用。

检测ROS、脂质过氧化物、Fe2+、MDA、GSH水平,Western blot检测ACSL4、GPX4、NOX4表达,透射电镜观察线粒体形态。

6

Hippo通路蛋白表达检测

探究hUC-MSCs是否通过Hippo通路调节BMECs铁死亡和血管生成相关蛋白。

Western blot检测YAP、p-YAP、TAZ、p-TAZ、NOX4、CD31、VEGF表达,免疫荧光检测CD31和VEGF表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
脂多糖----
甲泼尼龙----
DMEM/F12培养基HyClone--
胎牛血清Serapro--
青霉素-链霉素Biosharp--
内皮细胞培养基ScienCell--
胎牛血清ScienCell--
内皮细胞生长补充剂ScienCell--
青霉素/链霉素溶液ScienCell--
Transwell共培养系统Corning--
地塞米松MCE--
细胞计数试剂盒-8Keycell--
Triton X-100----
山羊血清----
DAPI----
Cy3标记的山羊抗兔IgGBOSTER--
伊红----
基质胶Corning--
结晶紫----
EPON 812树脂SPI--
醋酸铀酰SPI--
柠檬酸铅SPI--
RIPA裂解液----
BCA蛋白定量试剂盒GCBIO TechnologiesG3522-2
PVDF膜----
ECL化学发光液----
丙二醛检测试剂盒Nanjing JianchengA003-1-1
谷胱甘肽检测试剂盒Nanjing JianchengA006-2-1
亚铁离子含量检测试剂盒SolarbioBC5415
活性氧检测试剂盒Beyotime--
Hoechst 33342Yeasen--
C11 BODIPY 581/591细胞检测试剂盒Thermofisher--
抗CD4抗体BeyotimeAC0062
抗CD8抗体BeyotimeAC063
抗CD19抗体BeyotimeAC0516
抗CD31抗体Novus Biologicals--
抗VEGF抗体Santa Cruz--
抗GPX4抗体Bioss--
抗ACSL4抗体Affinity Biosciences--
抗NOX4抗体Proteintech--
抗YAP抗体Cell Signaling Technology--
抗磷酸化YAP抗体Cell Signaling Technology--
抗TAZ抗体Cell Signaling Technology--
抗磷酸化TAZ抗体Affinity Biosciences--
抗CD31抗体Abcam--
抗VEGF抗体Santa Cruz--
抗GAPDH抗体Proteintech--
抗CD31抗体Bioss--
抗vWF抗体Proteintech--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
小鼠品系、年龄、性别、体重、分组数量、LPS剂量和注射途径、MPS剂量和注射途径、注射时间表、hUC-MSCs注射剂量和频率
阅读提示:见2.1节
Micro-CT分析
扫描参数、感兴趣区域、骨小梁参数计算
阅读提示:见2.2节
细胞培养与处理
BMECs的来源、代数、培养基组成、Dex浓度、处理时间、hUC-MSCs共培养比例、共培养时间
阅读提示:见2.5、2.6节
细胞功能检测
划痕实验的细胞密度、划痕宽度、观察时间点;侵袭实验的细胞密度、Matrigel浓度、孵育时间;成管实验的细胞密度、Matrigel体积、孵育时间
阅读提示:见2.9、2.10、2.11节
铁死亡指标检测
ROS探针浓度和孵育时间、LPO探针浓度和孵育时间、Fe2+、MDA、GSH检测试剂盒及操作步骤、蛋白指标对应的抗体稀释比例
阅读提示:见2.13-2.17节