体内SANFH模型建立与hUC-MSCs干预
评估hUC-MSCs对SANFH小鼠股骨头骨微结构和微血管的保护作用。
使用C57BL/6小鼠,通过LPS和MPS诱导SANFH模型,分为NC、MPS和hUC-MSCs组,hUC-MSCs组接受尾静脉注射hUC-MSCs。
Human Umbilical Cord Mesenchymal Stem Cells Protect Against Steroid-Induced Osteonecrosis of the Femoral Head Through Hippo Pathway.
包含体内动物模型和体外细胞实验两个独立证据层级,并通过Western blot、免疫荧光、生化检测和电子显微镜等进行了功能与机制验证。
C57BL/6小鼠SANFH模型 原代小鼠骨微血管内皮细胞(BMECs) 人脐带间充质干细胞(hUC-MSCs)
SANFH小鼠模型建立:LPS(20 μg/kg)腹腔注射和甲泼尼龙(MPS,20 mg/kg)肌肉注射,周期和频率需核对 hUC-MSCs干预:尾静脉注射5×10^5细胞/只,注射频率和周期需核对 BMECs损伤条件:Dex浓度10 μM处理24小时 hUC-MSCs与BMECs共培养比例:8:1 铁死亡抑制对照:Fer-1浓度1 μM处理24小时
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估hUC-MSCs对SANFH小鼠股骨头骨微结构和微血管的保护作用。
使用C57BL/6小鼠,通过LPS和MPS诱导SANFH模型,分为NC、MPS和hUC-MSCs组,hUC-MSCs组接受尾静脉注射hUC-MSCs。
检测hUC-MSCs对SANFH小鼠股骨头骨微结构和血管生成的影响。
通过Micro-CT评估骨小梁参数,HE染色分析空骨陷窝率,免疫组化检测CD31和VEGF表达。
获得BMECs并确定Dex损伤和hUC-MSCs共培养的最佳条件。
培养原代BMECs,通过免疫荧光鉴定CD31和vWF表达。使用CCK-8评估不同Dex浓度和不同共培养比例对细胞活力的影响。
评估Dex和hUC-MSCs对BMECs迁移、侵袭和成管能力的影响。
使用划痕实验、Transwell侵袭实验和Matrigel成管实验检测BMECs功能。
验证Dex是否诱导BMECs铁死亡以及hUC-MSCs的作用。
检测ROS、脂质过氧化物、Fe2+、MDA、GSH水平,Western blot检测ACSL4、GPX4、NOX4表达,透射电镜观察线粒体形态。
探究hUC-MSCs是否通过Hippo通路调节BMECs铁死亡和血管生成相关蛋白。
Western blot检测YAP、p-YAP、TAZ、p-TAZ、NOX4、CD31、VEGF表达,免疫荧光检测CD31和VEGF表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型建立 | 脂多糖 | -- | -- |
| 甲泼尼龙 | -- | -- | |
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | HyClone | -- |
| 胎牛血清 | Serapro | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Biosharp | -- | |
| 内皮细胞培养基 | ScienCell | -- | |
| 胎牛血清 | ScienCell | -- | |
| 内皮细胞生长补充剂 | ScienCell | -- | |
| 青霉素/链霉素溶液 | ScienCell | -- | |
| Transwell共培养系统 | Corning | -- | |
| 地塞米松 | MCE | -- | |
| 细胞活力检测 | 细胞计数试剂盒-8 | Keycell | -- |
| 免疫荧光 | Triton X-100 | -- | -- |
| 山羊血清 | -- | -- | |
| DAPI | -- | -- | |
| Cy3标记的山羊抗兔IgG | BOSTER | -- | |
| HE染色 | 伊红 | -- | -- |
| 侵袭实验 | 基质胶 | Corning | -- |
| 结晶紫 | -- | -- | |
| 透射电镜 | EPON 812树脂 | SPI | -- |
| 醋酸铀酰 | SPI | -- | |
| 柠檬酸铅 | SPI | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | GCBIO Technologies | G3522-2 | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| ECL化学发光液 | -- | -- | |
| MDA检测 | 丙二醛检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | A003-1-1 |
| GSH检测 | 谷胱甘肽检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | A006-2-1 |
| Fe2+检测 | 亚铁离子含量检测试剂盒 | Solarbio | BC5415 |
| ROS检测 | 活性氧检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| Hoechst 33342 | Yeasen | -- | |
| LPO检测 | C11 BODIPY 581/591细胞检测试剂盒 | Thermofisher | -- |
| 流式细胞术 | 抗CD4抗体 | Beyotime | AC0062 |
| 抗CD8抗体 | Beyotime | AC063 | |
| 抗CD19抗体 | Beyotime | AC0516 | |
| 免疫组化 | 抗CD31抗体 | Novus Biologicals | -- |
| 抗VEGF抗体 | Santa Cruz | -- | |
| Western blot | 抗GPX4抗体 | Bioss | -- |
| 抗ACSL4抗体 | Affinity Biosciences | -- | |
| 抗NOX4抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗YAP抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗磷酸化YAP抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗TAZ抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| 抗磷酸化TAZ抗体 | Affinity Biosciences | -- | |
| 抗CD31抗体 | Abcam | -- | |
| 抗VEGF抗体 | Santa Cruz | -- | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | -- | |
| 免疫荧光 | 抗CD31抗体 | Bioss | -- |
| 抗vWF抗体 | Proteintech | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、年龄、性别、体重、分组数量、LPS剂量和注射途径、MPS剂量和注射途径、注射时间表、hUC-MSCs注射剂量和频率 阅读提示:见2.1节 |
| Micro-CT分析 | 扫描参数、感兴趣区域、骨小梁参数计算 阅读提示:见2.2节 |
| 细胞培养与处理 | BMECs的来源、代数、培养基组成、Dex浓度、处理时间、hUC-MSCs共培养比例、共培养时间 阅读提示:见2.5、2.6节 |
| 细胞功能检测 | 划痕实验的细胞密度、划痕宽度、观察时间点;侵袭实验的细胞密度、Matrigel浓度、孵育时间;成管实验的细胞密度、Matrigel体积、孵育时间 阅读提示:见2.9、2.10、2.11节 |
| 铁死亡指标检测 | ROS探针浓度和孵育时间、LPO探针浓度和孵育时间、Fe2+、MDA、GSH检测试剂盒及操作步骤、蛋白指标对应的抗体稀释比例 阅读提示:见2.13-2.17节 |