建立脊髓损伤模型
模拟脊髓损伤引起的神经源性膀胱和充溢性尿失禁。
对雄性C57BL/6J小鼠进行T9-T10挫伤性脊髓损伤(SCI),假手术组仅行椎板切除。
Spinal cord injury-induced overflow incontinence reshapes the activin-follistatin-inhibin axis in mouse bladder and kidney.
包含体内疾病模型(SCI小鼠)、功能检测(尿点实验)、分子检测(qRT-PCR、Western blot)和空间定位(免疫荧光),但缺乏机制干预和功能验证。
C57BL/6J小鼠T9-T10挫伤性脊髓损伤模型 小鼠膀胱组织 小鼠肾脏组织
脊髓损伤模型:T9-T10挫伤,冲击速度1 m/s,深度0.6 mm,停留时间0.5 s 样本量:每组3只雄性C57BL/6J小鼠(8-12周龄) 时间点:SCI后第7天进行尿点实验并取材 分子检测:qRT-PCR检测11个AFI轴基因,Western blot检测FST、INHA、INHBC、INHBB、INHBE,免疫荧光检测FST、INHA、INHBE(膀胱)和INHA、INHBB、INHBE(肾脏)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟脊髓损伤引起的神经源性膀胱和充溢性尿失禁。
对雄性C57BL/6J小鼠进行T9-T10挫伤性脊髓损伤(SCI),假手术组仅行椎板切除。
验证SCI后膀胱功能障碍和膀胱/肾脏大体变化。
术后第6-7天进行尿点实验,记录膀胱和肾脏重量,观察大体形态。
评估SCI后膀胱和肾脏中AFI轴相关基因的mRNA表达变化。
提取膀胱和肾脏RNA,使用qRT-PCR检测11个AFI轴基因(Acvr1, Acvr1b, Acvr1c, Acvr2a, Acvr2b, Fst, Inha, Inhba, Inhbb, Inhbc, Inhbe)的表达。
验证SCI后膀胱和肾脏中AFI轴关键蛋白的表达变化。
提取组织蛋白,进行Western blot检测FST、INHA、INHBC(膀胱)和INHA、INHBB、INHBC、INHBE(肾脏)。
观察SCI后AFI轴蛋白在膀胱和肾脏中的空间分布变化。
使用免疫荧光染色检测膀胱中FST、INHA、INHBE和肾脏中INHA、INHBB、INHBE的分布和强度。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 精密打击器 | RWD Life Science | Model 68099II |
| 组织称重 | 精密天平 | Sartorius | BSA224S-CW |
| RNA提取 | RNAeasy™ RNA提取试剂盒 | Beyotime Biotechnology | -- |
| RNA浓度测定 | NanoDrop™ 2000分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| cDNA合成 | SweScript RT II第一链cDNA合成试剂盒 | Servicebio | -- |
| qPCR | SYBR Green qPCR预混液 | Servicebio | -- |
| 蛋白提取 | RIPA裂解液 | Servicebio | -- |
| 蛋白浓度测定 | BCA蛋白定量试剂盒 | Keygen Biotech | -- |
| 免疫荧光 | DAPI | -- | -- |
| 奥林巴斯BX60荧光显微镜 | Olympus | -- | |
| 图像采集 | cellSens v4.3软件 | -- | -- |
| 图像处理 | ImageJ | -- | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism | -- | version 10.3.0, California, USA |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系、性别、年龄、体重、饲养条件;SCI手术方法(椎板切除节段、打击参数:速度、深度、停留时间);麻醉药物、剂量和途径;术后护理;假手术组处理 阅读提示:见Material and methods: Animals and groups; Spinal cord injury model establishment |
| 功能评估(尿点实验) | VSA实验时间点(术后天数、具体时间)、时长、滤纸尺寸、是否禁水;图像采集和处理参数(阈值设定);尿斑面积计算方法;样本量 阅读提示:见Material and methods: Voiding spot assay; Figure 1 legend |
| 组织取样与称重 | 取材时间点(术后第几天);麻醉及安乐死方法;组织采集顺序、处理方式(如排空尿液);称重方法;是否有肾脏形态学评估 阅读提示:见Material and methods: Animals and groups; Results 3.1; Figure 1C、D |
| 基因表达分析(qRT-PCR) | RNA提取试剂盒、逆转录试剂盒、qPCR预混液、引物序列、内参基因、循环条件;样本量(生物学重复和技术重复);数据分析方法(2^-ΔΔCt) 阅读提示:见Material and methods: Quantitative real-time PCR analysis; Table 1 |
| 蛋白表达分析(Western blot) | 蛋白提取方法、浓度测定试剂盒、SDS-PAGE凝胶浓度、转膜条件、封闭条件、抗体(名称、品牌、货号、稀释度、孵育条件)、内参基因;条带定量方法 阅读提示:见Material and methods: Western blot analysis; Table 2 |
| 蛋白定位(免疫荧光) | 固定液、固定时间、OCT包埋、切片厚度、抗原修复条件(若有)、封闭液、一抗二抗(名称、品牌、货号、稀释度、孵育时间)、核染色剂、图像采集参数、MFI分析方法;每个样本取多少个视野、如何选择ROI 阅读提示:见Material and methods: Immunofluorescence analysis; Table 2; Figure 5及Figure 6 legend |
| 统计分析与结果解释 | 数据表示方式(均值±标准差);比较方法(双尾t检验);多重比较校正方法(Šídák检验);显著性水平;是否有未检测的蛋白(如膀胱INHBE);肾脏变化是直接还是继发于膀胱功能障碍的区分 阅读提示:见Material and methods: Statistical analysis; Discussion(局限性部分) |