基于GEO数据库的UC-坏死性凋亡关联分析
利用公共数据库分析溃疡性结肠炎(UC)与坏死性凋亡通路的相关性,为后续研究提供方向
从GEO数据库获取GSE193677和GSE186507数据集,进行差异表达基因分析,并通过RRA整合、GO和KEGG富集分析,发现UC与坏死性凋亡信号通路和STAT3信号通路相关。
Amomum tsaoko extract from Nujiang alleviates DSS-induced colitis through inhibiting necroptosis.
包括体外TSZ诱导HT-29细胞坏死性凋亡模型、体内DSS诱导小鼠UC模型,并有多层次验证:Western blot、免疫荧光、TUNEL、组织病理等,机制验证包含STAT3激动剂实验。
HT-29细胞系 DSS诱导的C57BL/6J小鼠UC模型
TSZ诱导HT-29细胞坏死性凋亡模型的建立,包括10 nM SM-164、20 μM Z-VAD-fmk、20 ng/mL h-TNF-α处理12小时 DSS诱导UC小鼠模型:2.5% DSS饮水7天,CG灌胃给药(0.91 g/kg或1.82 mg/kg,每日一次) Nec-1阳性对照剂量为5 mg/kg,腹腔注射 STAT3激活剂Colivelin(0.4 μM)处理HT-29细胞,验证STAT3通路参与 蛋白检测:RIPK1、RIPK3、MLKL及其磷酸化水平,以及ZO-1、Occludin、STAT3/p-STAT3的表达
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
利用公共数据库分析溃疡性结肠炎(UC)与坏死性凋亡通路的相关性,为后续研究提供方向
从GEO数据库获取GSE193677和GSE186507数据集,进行差异表达基因分析,并通过RRA整合、GO和KEGG富集分析,发现UC与坏死性凋亡信号通路和STAT3信号通路相关。
鉴定CG的化学成分,以解析其药效物质基础
利用UPLC-Q-TOF/MS分析CG水提物,结合数据库和文献,共鉴定出42种化合物。
评估CG在细胞水平上对坏死性凋亡的抑制作用
利用TSZ(TNF-α、SM-164、Z-VAD-FMK)诱导HT-29细胞坏死性凋亡模型,CG预处理后检测细胞活力、活/死细胞染色以及坏死性凋亡关键蛋白RIPK1、RIPK3、MLKL及其磷酸化水平。
验证CG在体内对UC的改善作用及对肠道屏障和坏死性凋亡的影响
使用DSS诱导C57BL/6J小鼠UC模型,CG灌胃给药,Nec-1作为阳性对照。通过DAI评分、结肠长度、组织病理(HE)、AB-PAS、TUNEL、免疫荧光和Western blot检测肠道屏障蛋白(ZO-1、Occludin)和坏死性凋亡相关蛋白(p-RIPK3、p-MLKL、p-STAT3)的表达。
验证STAT3是CG抑制坏死性凋亡的关键靶点
使用STAT3激活剂colivelin处理HT-29细胞,检测CG对TSZ诱导坏死性凋亡的保护作用是否被逆转,以验证STAT3通路介导CG的作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 化学成分分析 | 沃特世H-Class超高效液相色谱系统 | Waters | -- |
| Sciex Triple TOF 4600高分辨质谱仪 | AB Sciex | -- | |
| ACQUITY UPLC CSH C18色谱柱(2.1×100 mm,1.7 µm) | Waters | -- | |
| 细胞培养 | HT-29细胞系 | Procell | CL-0118 |
| 生长培养基 | Procell | CM-0118 | |
| 胎牛血清 | BI | C04001-500 | |
| 青霉素/链霉素 | Gibco | 15140-122 | |
| 细胞凋亡诱导 | 坏死性凋亡抑制剂Nec-1 | Selleck | S8037 |
| 人肿瘤坏死因子-α | Novoprotein | C008 | |
| SM-164盐酸盐 | Med Chem Express | HY-15989A | |
| Z-VAD-fmk | TargetMol | T6013 | |
| 细胞活力检测 | CellTiter-Glo发光法细胞活力检测试剂盒 | Beyotime | C0065L |
| 细胞活性检测 | Calcein-AM/PI细胞活力/细胞毒性检测试剂盒 | Beyotime | C2015M |
| 动物模型诱导 | 葡聚糖硫酸钠 | Coolaber | CD4421 |
| Western blot | RIPA裂解液 | CWBIO | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | CWBIO | CW0014S | |
| 抗RIPK1抗体 | Cell Signaling Technology | 3493S | |
| 抗磷酸化RIPK1抗体(人特异性) | Cell Signaling Technology | 65746S | |
| RIPK3多克隆抗体 | Proteintech | 17563-1-A | |
| 抗MLKL抗体 | Proteintech | 66675-1-Ig | |
| 抗RIPK3/磷酸化RIPK3抗体 | Abcam | ab209384 | |
| 抗MLKL抗体 | Abcam | ab184718 | |
| 抗磷酸化MLKL抗体(人特异性) | Abcam | ab187091 | |
| 抗磷酸化RIPK3抗体(小鼠特异性) | Abcam | ab195117 | |
| 抗磷酸化MLKL抗体(小鼠特异性) | Bioss | bsm-54104R | |
| 抗磷酸化RIPK1抗体(小鼠特异性) | Biolynx | BX60008 | |
| 抗Occludin抗体 | Servicebio | GB111401 | |
| 抗磷酸化STAT3抗体 | Servicebio | GB150001 | |
| 抗ZO-1抗体 | Servicebio | GB111402 | |
| 抗STAT3抗体 | Selleck | F0200 | |
| 抗GAPDH抗体 | Abcam | ab181602 | |
| TUNEL染色 | TUNEL试剂盒 | Servicebio | G1502 |
| 免疫组化/免疫荧光 | HRP标记的山羊抗兔IgG | Absin | abs20040 |
| Western blot | 高灵敏度ECL Western blot底物 | Tanon | -- |
| 免疫荧光 | Affini Pure山羊抗大鼠IgG | Servicebio | GB21303 |
| 山羊抗小鼠IgG | Servicebio | GB22301 | |
| DAPI | Servicebio | G1012 | |
| 细胞活力检测 | SpectraMax M5酶标仪 | Molecular Devices | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| CG的提取与制备 | 药材来源:杨艳琼博士捐赠;水提方法:十倍量蒸馏水浸泡2小时、煎煮40分钟,八倍量再次煎煮,合并滤液,真空干燥48小时,冻干成粉;提取率13.3% 阅读提示:Materials and methods 2.1.2 |
| 化学成分分析 | UPLC-QTOF-MS条件:色谱柱Waters ACQUITY UPLC CSH C18 (2.1×100mm, 1.7µm),流动相水-乙腈和0.1%甲酸,梯度洗脱,柱温30℃,流速0.3 mL/min;质谱ESI正负离子模式 阅读提示:Materials and methods 2.1.3 |
| 体外坏死性凋亡模型 | 细胞系:HT-29(Procell, CL-0118);培养条件:37°C, 5% CO2,培养基含10% FBS和100 U/mL青霉素/链霉素;TSZ诱导:20 ng/mL h-TNF-α、10 nM SM-164、20 μM Z-VAD-fmk,处理12小时;细胞接种密度:96孔板10,000细胞/孔,每组3个复孔 阅读提示:Materials and methods 2.3.2-2.3.4 |
| 体内UC模型 | 动物:C57BL/6J雄性小鼠,6-7周龄,21-23g;诱导:2.5% DSS饮水7天(第0-7天);给药:CG(0.91 g/kg或1.82 g/kg)灌胃,Nec-1(5 mg/kg)腹腔注射,每日一次,第8-13天给药;第13天处死 阅读提示:Materials and methods 2.3.5-2.3.6 |
| Western blot | 细胞处理:HT-29细胞6孔板100,000细胞/孔,CG预处理30 min,TSZ刺激不同时间;蛋白提取使用RIPA裂解缓冲液,BCA定量;SDS-PAGE(10%胶),PVDF膜,5% BSA封闭2 h,一抗1:1000 4°C孵育过夜,HRP二抗孵育1 h,ECL显影 阅读提示:Materials and methods 2.3.13 |
| STAT3激活实验 | Colivelin浓度0.4 μM;CG浓度50 mg/mL;HT-29细胞,TSZ诱导模型,检测细胞活力 阅读提示:Materials and methods 2.3.14 |