ARF6在脂质刺激下调控血管平滑肌细胞表型转化,促进炎症信号传导,从而推动动脉粥样硬化的进展

ARF6 controls VSMC phenotypic switching upon lipid stimulation to promote inflammatory signaling contributing to the progression of atherosclerosis.

作者信息Émilie Fiola-Masson, Shirley Campbell, Véronique Laplante, Rania Lejri, Yasunori Kanaho, Jean-François Gauchat, Marc J Servant, Audrey Claing
PMID41539563
发布时间2026-03
DOI10.1016/j.jbc.2026.111165

实验完整度

包含体外HASMCs功能实验(脂质摄取、迁移、增殖、炎症因子分泌)及体内SMC特异性ARF6敲除小鼠模型,并进行机制验证(TLR4、NF-κB、p38通路)。

主要模型

人主动脉平滑肌细胞(HASMCs) Acta2-Cre-ERT2+/−/Apoee−/−/Arf6f/f小鼠(SMC特异性ARF6敲除)

重点核对

ARF6敲低(shRNA)效率及对照(shCtl) OxLDL浓度(80 μg/ml)及刺激时间(4h迁移,72h增殖/脂质摄取) 他莫昔芬(TAM)剂量(75 mg/kg/day,5天腹腔注射)及对照组(花生油) 小鼠高脂饮食(Envigo TD.96121)持续时间(10周) 小鼠数量(主动脉弓:TAM n=12,对照 n=14;主动脉窦:TAM n=14,对照 n=9)

摘要

血管平滑肌细胞在动脉粥样硬化的发展和进展中发挥关键作用。传统上被视为维持血管张力和结构的收缩细胞,血管平滑肌细胞响应致动脉粥样硬化刺激(如高循环水平的LDL)而发生表型转化,从而呈现合成性、成骨性或巨噬细胞样表型。这种可塑性促进斑块形成、细胞外基质重塑和炎症信号传导。我们先前已表明,ADP-核糖基化因子1(一种小GTP结合蛋白)调节肌动蛋白的表达和功能,这对维持血管平滑肌细胞的收缩表型非常重要。然而,ARF6在表型转化中的作用仍有待阐明。在此,我们证明,在人主动脉平滑肌细胞中敲低ARF6可减少脂质摄取,这是通过改变清道夫受体(凝集素样氧化低密度脂蛋白受体-1、巨噬细胞清道夫受体1)的表达、细胞因子产生(IL-6)以及炎症标志物和通路(黏附分子、PI3K、NF-kB、p38)的调节实现的。为在体内环境中证实我们的发现,我们构建了一种新型的条件性平滑肌细胞特异性ARF6基因敲除小鼠,其背景为动脉粥样硬化易感(Acta2-Cre-ERT2+/−/Apoee−/−/Arf6f/f小鼠)。给小鼠喂食高脂饮食以加速斑块形成。ARF6敲除导致主动脉弓动脉粥样硬化病变显著减少,这与胶原蛋白和泡沫细胞减少相关。此外,我们观察到ARF6调节炎症标志物的表达。这些发现强调了ARF6在血管平滑肌细胞中的表达及其在动脉粥样硬化发病机制中的重要性。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ARF6在血管平滑肌细胞表型转化和动脉粥样硬化进展中的作用是什么?
核心机制
ARF6通过TLR4信号通路促进OxLDL诱导的p38和NF-κB激活,上调清道夫受体(LOX-1、MSR1)表达,促进脂质摄取和巨胞饮,从而促进泡沫细胞形成和炎症反应。
主要证据
体外HASMCs中ARF6敲低减少OxLDL诱导的迁移、增殖、脂质摄取(Oil Red O、AcLDL摄取)和IL-6分泌,并降低炎症标志物表达;体内SMC特异性ARF6敲除小鼠(HFD喂养10周)主动脉弓和主动脉窦病变面积显著减少,胶原沉积和泡沫细胞减少。
研究意义
ARF6是血管平滑肌细胞活性的重要调节因子和动脉粥样硬化进展的关键介质,为治疗以平滑肌细胞功能障碍为特征的血管壁疾病提供了潜在治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外细胞模型验证ARF6功能

确定ARF6在OxLDL刺激的HASMCs中对脂质摄取、迁移、增殖和炎症反应的影响

使用shRNA敲低HASMCs中ARF6,用OxLDL(80 μg/ml)刺激,检测迁移(Boyden chamber)、增殖(alamarBlue)、脂质摄取(Oil Red O、AcLDL-488)、清道夫受体表达(Western blot)和IL-6分泌(ELISA)。

2

机制研究:ARF6参与TLR4信号通路

阐明ARF6调节IL-6分泌和炎症信号的下游机制

使用TLR4抑制剂TAK-242、MyD88抑制剂TJ-m2010-5、p38抑制剂SB203580、NF-κB抑制剂BOT-4预处理细胞,检测IL-6分泌和ARF6激活(GTP-loading assay)。

3

体内动物模型构建及验证

在动脉粥样硬化小鼠模型中验证ARF6缺失对斑块形成和炎症的影响

构建Acta2-Cre-ERT2+/−/Apoee−/−/Arf6f/f小鼠,腹腔注射他莫昔芬诱导SMC特异性ARF6敲除,高脂饮食喂养10周,分析主动脉斑块面积(ORO染色)、胶原含量(Masson Trichrome、Sirius Red)和炎症标志物表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
平滑肌细胞培养基ScienCell Research Laboratories--
聚凝胺Sigma-Aldrich--
嘌呤霉素Sigma-Aldrich--
psPax.2包装质粒Addgene--
pMD2.G包装质粒Addgene--
Qiagen AllPrep DNA/RNA提取试剂盒Qiagen--
Qiagen RNeasy RNA提取试剂盒Qiagen--
抗ARF6抗体AbcamAb131261
抗ICAM-1抗体AbcamAb53013
抗LDLR抗体AbcamAb52818
抗VCAM-1抗体BIOSSbs-0920R
抗ARF1抗体Proteintech202260-1-ap
抗ICAM-1抗体Proteintech10020-1-AP
抗CD36抗体Proteintech18836-1-AP
抗TLR4抗体Proteintech19811-1-ap
抗LOX-1抗体Proteintech11837-1-AP
抗ARF6抗体Santa Cruz Biotechnologysc-7971
Amersham ECL Prime Western检测试剂GE Healthcare--
Alexa Fluor 488标记的鬼笔环肽Thermo Fisher Scientific--
Alexa Fluor 488标记的乙酰化LDLThermo Fisher Scientific--
氧化低密度脂蛋白Sigma-Aldrich--
Boyden小室文中未明确说明--
alamarBlue试剂Bio-Rad--
Synergy H1酶标仪BioTek--
IL-6 ELISA试剂盒Thermo Fisher Scientific--
Amicon Ultra-15离心过滤装置Sigma-Aldrich--
胰蛋白酶----
Easy-nLC 1200液相色谱系统Thermo Fisher Scientific--
Orbitrap HF Biopharma质谱仪Thermo Fisher Scientific--
他莫昔芬----
花生油----
高脂饮食(TD.96121)EnvigoTD.96121
Masson三色染色试剂盒SigmaHT15
Alexa Fluor 568标记的二抗Invitrogen--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体外细胞实验
HASMCs代数(4-8代)和来源;ARF6 shRNA靶序列(TRCN0000380270);慢病毒感染时polybrene浓度(8 μg/ml);嘌呤霉素筛选浓度(2 μg/ml);OxLDL浓度(80 μg/ml)及刺激时间(迁移4h、增殖72h、脂质摄取72h、IL-6 24h);AcLDL浓度(1 μg/ml)及孵育时间(18h);迁移实验中使用胶原I包被的Boyden小室。
阅读提示:参见Methods中"HASMCs cell culture"、"Lipid uptake"、"Migration assay"、"Proliferation assay"、"IL-6 enzyme-linked immunosorbent assay"部分
信号通路抑制剂处理
抑制剂浓度:LY294002 50 μM,Dynasore 100 μM,TAK-242 30 μM,TJ-m2010-5 40 μM,SB203580 10 μM,BOT-4 10 μM;预处理时间为1h;ARF6激活检测时OxLDL刺激时间2分钟。
阅读提示:参见Methods中"ARF6 activation assay"及图1I、图3D-F图注
动物模型
小鼠基因型(Acta2-Cre-ERT2+/−/Apoee−/−/Arf6f/f);他莫昔芬剂量(75 mg/kg/day,连续5天腹腔注射);对照组(花生油);高脂饮食(Envigo TD.96121)喂养10周;动物性别(雄性)和年龄(8周龄);主动脉弓斑块面积(TAM组n=12,对照组n=14);主动脉窦斑块面积(TAM组n=14,对照组n=9)。
阅读提示:参见Methods中"Animal protocol"、"En face analysis of atherosclerosis in mice"及图5图注
组织学分析
组织固定(10%福尔马林24h);ORO染色(0.7%丙二醇,37°C 16h);胶原染色(Masson Trichrome、Sirius Red);免疫荧光染色(抗体浓度、孵育条件);切片厚度(4 μm石蜡切片,10 μm冰冻切片)。
阅读提示:参见Methods中"IHC and immunofluorescence"及图6图注