动物感染与组织采集
建立ASFV感染猪模型并获取不同感染阶段的多器官样本,用于蛋白质组学分析。
对33头猪肌内注射ASFV CN/GS/2018毒株,在0、1、3、5、7天处死并采集13种组织,其中肾脏、颌下淋巴结和脾脏用于蛋白质组学分析。
Quantitative proteomic analysis identifies the unfolded protein response as a host pathway co-opted by ASFV to promote replication.
包含体内动物感染模型、体外细胞感染模型、蛋白质组学分析、UPR分支激活验证、D117L功能与机制实验等多层级验证。
猪(体内感染模型) 猪肺泡巨噬细胞(PAM) HEK293T细胞 iPAM细胞
ASFV CN/GS/2018毒株感染猪的剂量和途径(肌内注射) 感染后时间点(0, 3, 5, 7天)和器官(肾脏、颌下淋巴结、脾脏) PAM细胞感染MOI 0.1和处理时间 UPR抑制剂浓度(4-PBA 50μM, 4μ8C 5μM, GSK2606414 0.5μM, Ceapin-A7 5μM) siRNA敲除效率和转染浓度
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立ASFV感染猪模型并获取不同感染阶段的多器官样本,用于蛋白质组学分析。
对33头猪肌内注射ASFV CN/GS/2018毒株,在0、1、3、5、7天处死并采集13种组织,其中肾脏、颌下淋巴结和脾脏用于蛋白质组学分析。
鉴定ASFV感染后不同器官的蛋白质表达变化并识别关键通路。
使用4D无标记LC-MS/MS定量蛋白质组学分析组织样本,通过MaxQuant处理数据,通过DEP分析、TCseq、PPI网络和GSVA等识别差异表达蛋白和功能模块。
验证ASFV感染在体内外是否激活UPR及其三个分支。
通过qPCR和Western blot检测UPR标志物HSPA5以及PERK、IRE1、ATF6的磷酸化或剪切形式,在感染猪组织和PAM细胞中进行。
鉴定ASFV蛋白中负责激活UPR的关键因子。
通过共表达网络筛选10个候选病毒蛋白,在HEK293T细胞中过表达并检测UPR标志物HSPA5和ATF6荧光素酶报告基因,发现D117L为最强激活因子。构建D117L缺失突变体,确定38-60氨基酸跨膜域为激活UPR所必需。
揭示D117L激活UPR的分子机制。
通过免疫沉淀和质谱鉴定D117L及其突变体的相互作用蛋白,发现HSPA5和CANX为D117L的相互作用蛋白,并通过免疫共沉淀和免疫荧光验证。
验证UPR激活对ASFV复制的影响。
使用UPR抑制剂(4-PBA、4μ8C、GSK2606414、Ceapin-A7)或siRNA敲除UPR传感器(EIF2AK3、ERN1、ATF6)处理PAM细胞,评估ASFV复制水平(蛋白质、mRNA、病毒滴度)。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 药物处理 | 4-苯基丁酸 | -- | -- |
| 4μ8C | Med Chem Express | -- | |
| GSK2606414 | Med Chem Express | -- | |
| Ceapin-A7 | Med Chem Express | -- | |
| Western blot | GRP78/BIP兔多克隆抗体 | Proteintech | 11587-1-AP |
| 兔抗磷酸化PERK (Thr980)抗体 | Bioss | bs-3330R | |
| PERK兔多抗 | ABclonal | A18196 | |
| XBP1S特异性多克隆抗体 | Proteintech | 24868-1-AP | |
| 兔单抗(EPR5253)抗IRE1 (phosphoS724) | abcam | AB124945 | |
| IRE1; ERN1多克隆抗体 | Proteintech | 27528-1-AP | |
| ATF6多克隆抗体 | Proteintech | 24169-1-AP | |
| 单克隆抗Flag M2抗体 | Sigma-Aldrich | F1804 | |
| Myc标签兔单抗(C端) | ABclonal | AE070 | |
| MYC标签小鼠单克隆抗体 | Proteintech | 60003-2-1g | |
| 免疫荧光 | 山羊抗兔IgG (H+L)交叉吸附二抗, AlexaFluor 488 | Thermo Fisher Scientific | A-11008 |
| 山羊抗兔IgG (H+L)高交叉吸附二抗, Alexa Fluor 594 | Thermo Fisher Scientific | A11037 | |
| 山羊抗小鼠IgG (H+L)交叉吸附二抗, Alexa Fluor 594 | Thermo Fisher Scientific | A11005 | |
| 山羊抗小鼠IgG (H+L)超克隆二抗, Alexa Fluor 488 | Thermo Fisher Scientific | A28175 | |
| Western blot | GAPDH小鼠单克隆抗体 | Origene | TA802519M |
| β-微管蛋白小鼠单克隆抗体 | Proteintech | 66240-1-1g | |
| 抗β-肌动蛋白单克隆抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-8432 | |
| 转染 | Namipo转染试剂 | TranSheepBio | TSBBBR003 |
| RNA提取 | RNA提取试剂 | Vazyme | -- |
| 反转录 | HiScript II Q RT SuperMix | Vazyme | -- |
| qPCR | ChamQ通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme | -- |
| ABI StepOnePlus系统 | Applied Biosystems | -- | |
| 质粒构建 | 一步克隆试剂盒 | Vazyme | -- |
| 免疫沉淀 | Myc磁珠 | MCE | HY-K0206 |
| DYKDDDDK磁珠 | Selleck Chemicals | b26103 | |
| 荧光素酶报告基因 | pGL4.39(luc2P/ATF6 RE/Hygro) | Promega | E3661 |
| 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | E1960 | |
| 转染 | PolyPlus转染试剂 | Polyplus Transfection | 101000046 |
| 免疫荧光 | DAPI | Sigma-Aldrich | D9542-5mg |
| 显微镜 | 蔡司共聚焦显微镜(LSM980) | Zeiss | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物感染 | 猪的品系、年龄(10周龄)、体重(~40kg)、感染剂量和途径(肌内注射) 阅读提示:Materials and Methods: Infection procedures |
| 细胞感染 | PAM细胞来源、培养条件(RPMI 1640+10%FBS)、感染MOI(0.1)和处理时间(24或36小时) 阅读提示:Materials and Methods: Animals, cells, and viruses; 图6图注 |
| 蛋白质组学 | LC-MS/MS参数、MaxQuant版本(v1.6.5.0)、数据库(Sus scrofa)、FDR<1%、DEP阈值 阅读提示:Materials and Methods: LC-MS/MS for protein identification and quantitation |
| UPR抑制剂处理 | 抑制剂浓度(4-PBA 50μM, 4μ8C 5μM, GSK2606414 0.5μM, Ceapin-A7 5μM)、溶解溶剂(DMSO)、预处理时间(24小时) 阅读提示:Materials and Methods: Antibodies and inhibitors; 图6图注 |
| siRNA敲除 | siRNA序列、转染试剂(Namipo)、转染浓度(50pM)、敲除效率(文中未明确说明) 阅读提示:Materials and Methods: RNA interference and qPCR analysis |