建立H2O2诱导的氧化应激模型
确定H2O2诱导HepG2细胞氧化损伤的合适浓度和时间。
用不同浓度H2O2(0.1-2.0 mM)处理HepG2细胞6 h,通过CCK-8检测细胞活力,选用0.8 mM H2O2进行后续实验。
Ameliorative Effects of Vitamin E and Lutein on Hydrogen Peroxide-Triggered Oxidative Cytotoxicity via Combined Transcriptome and Metabolome Analysis.
包含细胞活力、ROS、抗氧化酶活性等生理生化测定,并结合转录组测序和代谢组学分析,且进行了qRT-PCR验证,证据层级较为完整。
HepG2细胞(人肝癌细胞系) H2O2诱导的细胞氧化应激模型
HepG2细胞系来源(Wuhan Pricella Biotechnology Co., Ltd.) 维生素E处理浓度:10 μM;叶黄素处理浓度:80 μM H2O2诱导浓度:0.8 mM,处理时间:6 h 各实验重复6次 qRT-PCR验证基因:HMOX1, SAT1, MT2A, MT1G, SKP2, CDKN1A
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定H2O2诱导HepG2细胞氧化损伤的合适浓度和时间。
用不同浓度H2O2(0.1-2.0 mM)处理HepG2细胞6 h,通过CCK-8检测细胞活力,选用0.8 mM H2O2进行后续实验。
筛选并比较维生素E和叶黄素对H2O2诱导细胞毒性的改善效果。
用不同浓度维生素E(5, 10, 20 μM)或叶黄素(40, 80, 120 μM)预处理12 h,再经0.8 mM H2O2处理6 h,检测细胞活力和ROS水平。
评估维生素E和叶黄素对氧化应激下HepG2细胞抗氧化系统的影响。
在最优浓度维生素E或叶黄素预处理后,检测SOD、CAT活性和GSH含量。
揭示维生素E和叶黄素在转录水平上的作用机制。
提取各组总RNA,构建文库并进行Illumina NovaSeq测序,分析差异表达基因并进行GO富集分析。
验证转录组测序结果的可靠性。
选择6个差异表达基因(HMOX1, SAT1, MT2A, MT1G, SKP2, CDKN1A)进行qRT-PCR验证。
揭示维生素E和叶黄素在代谢水平上的作用机制。
提取各组代谢物,通过UPLC-QTOF-MS/MS进行代谢组学分析,筛选差异累积代谢物并进行KEGG通路富集分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Pricella | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Pricella | -- | |
| 药物处理 | 维生素E | TargetMol Chemicals Inc. | -- |
| 叶黄素 | TargetMol Chemicals Inc. | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Bioss | -- |
| ROS检测 | 活性氧检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 荧光测量 | 多功能酶标仪 | BioTek | -- |
| 抗氧化指标检测 | SOD检测试剂盒 | Jiancheng Biotechnology Co. | -- |
| CAT检测试剂盒 | Jiancheng Biotechnology Co. | -- | |
| GSH检测试剂盒 | Jiancheng Biotechnology Co. | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Life Technologies | -- |
| RNA质量检测 | NanoDrop 2000分光光度计 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| RNA Nano 6000检测试剂盒 | Agilent Technologies | -- | |
| Agilent Bioanalyzer 2100系统 | Agilent Technologies | -- | |
| 转录组文库构建 | Hieff NGS Ultima双模式mRNA文库制备试剂盒 | Yeasen | -- |
| AMPure XP系统 | Beckman Coulter | -- | |
| USER酶 | NEB | -- | |
| Phusion高保真DNA聚合酶 | -- | -- | |
| 转录组测序 | Illumina NovaSeq测序平台 | Illumina | -- |
| qRT-PCR | Trizol试剂 | Invitrogen | -- |
| TUREscript第一链cDNA合成试剂盒 | Aidlab | -- | |
| 2×SYBR® Green预混液 | Takara | -- | |
| 实时荧光定量PCR系统(qTOWER) | Analytik Jena AG | -- | |
| 代谢物提取 | 甲醇 | -- | -- |
| 代谢组学分析 | Waters Acquity I-Class PLUS超高效液相色谱 | Waters | -- |
| Waters Xevo G2-XS四极杆飞行时间质谱 | Waters | -- | |
| Waters Acquity UPLC HSS T3色谱柱 | Waters | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与处理 | HepG2细胞系来源(武汉普诺赛)、培养基(DMEM+10% FBS+1%双抗)、培养条件(37°C,5% CO2)、药物处理浓度与时间(维生素E 10 μM,叶黄素 80 μM,预处理12 h;H2O2 0.8 mM,处理6 h) 阅读提示:材料与方法2.1节,结果3.1和3.2节 |
| 细胞活力检测 | 细胞铺板密度(1×10^4/孔)、CCK-8试剂盒(Bioss)、处理方法(按照说明书) 阅读提示:材料与方法2.2节 |
| ROS检测 | DCFH-DA浓度(10 µM)、孵育时间(20 min)、检测波长(激发488 nm/发射525 nm) 阅读提示:材料与方法2.3节 |
| 抗氧化指标检测 | 检测试剂盒(建成生物)、SOD活性测定方法(WST-1法)、CAT活性测定方法(钼酸铵法)、GSH含量测定方法 阅读提示:材料与方法2.4节 |
| 转录组测序 | RNA提取试剂(TRIzol)、文库构建试剂盒(Yeasen)、测序平台(Illumina NovaSeq)、数据比对软件(Hisat2)、差异表达基因筛选标准(|log2FC| ≥ 1.5, FDR < 0.05) 阅读提示:材料与方法2.5-2.7节 |
| qRT-PCR验证 | 反转录试剂盒(Aidlab)、SYBR Green预混液(Takara)、仪器(qTOWER)、内参基因(β-Actin)、引物序列(补充表S1) 阅读提示:材料与方法2.8节,补充表S1 |
| 代谢组学分析 | 样本量(5×10^6细胞)、提取溶剂(甲醇:乙腈=1:1)、内标浓度(20 mg/L)、色谱柱(Waters HSS T3)、质谱条件(MSE模式,毛细管电压等)、差异代谢物筛选标准(FC>1, p<0.05, VIP≥1) 阅读提示:材料与方法2.9-2.11节 |
| 统计分析 | 重复数(n=6)、统计方法(单因素方差分析,Dunnett检验)、显著性水平(p<0.05) 阅读提示:材料与方法2.12节 |