硒通过激活PI3K/AKT/GSK3β通路减轻地塞米松诱导的成骨细胞功能障碍并预防股骨头骨坏死

Selenium Attenuates Dexamethasone-Induced Osteoblast Dysfunction and Prevents Femoral Head Osteonecrosis via PI3K/AKT/GSK3β Pathway Activation.

作者信息Sun Xuecheng, Chen Changjun, Ma Xiaojie, Li Shufeng, Zhang Lei, Xinlong Ma
PMID41253602
发布时间2025-12
DOI10.1111/os.70191

实验完整度

包含体内大鼠模型(LPS+MPS诱导)和体外原代成骨细胞及MC3T3-E1细胞实验,涵盖功能验证(CCK-8、流式)和机制验证(Western blot、IF)。

主要模型

Sprague-Dawley大鼠GC-ONFH模型 原代大鼠成骨细胞 MC3T3-E1细胞系

重点核对

GC-ONFH模型:LPS(10 μg/kg)两次腹腔注射,间隔24 h;MPS(40 mg/kg)肌肉注射连续3天 硒干预剂量:10 mg/kg口服灌胃,每天一次,持续4周 体外DEX浓度:10 μM 硒最佳浓度:10 μM 实验分组:Control、Model(或DEX)、Se,每组6只大鼠

摘要

目的 糖皮质激素诱导的股骨头骨坏死(GC-ONFH)是类固醇治疗的严重并发症,主要由成骨细胞凋亡和成骨功能受损驱动。尽管硒(Se)以其强大的骨保护特性而闻名,但其在GC-ONFH中的治疗潜力和具体机制仍未被充分探索,需要进一步研究。 方法 为了评估口服补硒在GC-ONFH中的治疗效果,使用了大鼠GC-ONFH模型。将大鼠随机分为三组(每组n=6):(1)对照组,(2)甲泼尼龙琥珀酸钠(MPS)组,(3)硒组。干预持续4周。体外实验使用原代大鼠成骨细胞和MC3T3-E1细胞来阐明硒减轻地塞米松(DEX)诱导的细胞增殖、凋亡和成骨分化改变的机制。使用显微CT和组织形态计量学、CCK-8法和流式细胞术,以及RT-qPCR、Western印迹和免疫荧光进行评估。 结果 补硒可有效预防GC-ONFH大鼠的骨小梁塌陷,并显著减少空骨陷窝数量。具体来说,10 μmol硒的最佳剂量可成功逆转DEX造成的损伤,包括恢复细胞增殖、抑制凋亡和挽救成骨活性。在机制上,硒抵消了DEX诱导的磷酸化磷脂酰肌醇3激酶(p-PI3K)、磷酸化蛋白激酶B(p-AKT)和磷酸化糖原合酶激酶3β(GSK3β)(p-GSK3β)的抑制,从而激活PI3K/AKT/GSK3β信号通路,促进成骨细胞增殖、抑制凋亡并增强成骨作用。 结论 硒能激活PI3K/AKT/GSK3β通路,逆转DEX诱导的增殖低下和凋亡,恢复成骨能力,防止骨小梁塌陷,并减轻大鼠模型中的GC-ONFH。我们的发现表明,补硒可被视为一种临床上可行的策略,用于阻止高危患者GC-ONFH的进展。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
硒是否能够通过调节成骨细胞功能预防GC-ONFH,并探究其具体分子机制?
核心机制
硒通过恢复DEX抑制的p-PI3K、p-AKT和p-GSK3β水平,激活PI3K/AKT/GSK3β信号通路,从而促进成骨细胞增殖、抑制凋亡并增强成骨分化。
主要证据
在体外,10 μM硒可逆转DEX诱导的成骨细胞活力下降、凋亡增加和成骨标志物(RUNX2、COL1A1、ALP、骨钙素)表达降低;在体内,硒补充可减少股骨头空骨陷窝比例并增加骨密度。
研究意义
补硒可作为阻止高危患者GC-ONFH进展的临床可行性策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立GC-ONFH大鼠模型

通过LPS和MPS诱导GC-ONFH大鼠模型,以评估硒的保护作用。

18只大鼠分为三组,模型组和硒组接受LPS(10 μg/kg)两次腹腔注射(间隔24小时),随后连续3天肌肉注射MPS(40 mg/kg);对照组给予等量生理盐水。硒组在MPS注射完成后24小时开始,每天灌胃10 mg/kg硒代蛋氨酸,持续4周。

2

活体水平评估骨结构

通过Micro-CT和HE染色评估硒对股骨头骨小梁结构、骨密度和空骨陷窝的影响。

治疗后4周,处死大鼠,收集股骨头进行Micro-CT扫描(Quantum GX2)和3D重建,并进行HE染色组织学检查。

3

体外细胞活力评估

评估硒对DEX诱导的成骨细胞增殖抑制的逆转作用。

使用原代成骨细胞和MC3T3-E1细胞,CCK-8法检测硒浓度梯度(1-25 μM)和DEX(10 μM)共存时的细胞活力。

4

体外凋亡检测

验证硒对DEX诱导的成骨细胞凋亡的抑制作用。

使用Annexin V-FITC/PI双染流式细胞术检测细胞凋亡率,并通过RT-qPCR、Western blot和免疫荧光检测凋亡相关分子(Bax、Bcl-2、cleaved Caspase-3)的表达。

5

体外成骨分化评估

验证硒对DEX抑制的成骨分化功能的恢复作用。

通过RT-qPCR检测成骨标志物mRNA(Runx-2、Collagen I、Osteocalcin、ALP),通过免疫荧光和Western blot检测RUNX2、COL1A1、ALP蛋白表达。

6

机制信号通路验证

探索硒发挥保护作用的分子机制,验证PI3K/AKT/GSK3β通路的激活。

通过Western blot检测PI3K、p-PI3K、AKT、p-AKT、GSK3β和p-GSK3β的蛋白水平,分析硒对DEX抑制的该通路磷酸化的逆转作用。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
胶原酶IISigma-Aldrich--
α-MEM培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素溶液Gibco--
细胞计数试剂盒-8BestBio--
TRIzol试剂Invitrogen--
HiScript II Q RT SuperMixVazyme Biotechnology--
Taq Pro通用SYBR qPCR预混液Vazyme Biotechnology--
RIPA裂解液Beyotime--
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime--
抗PI3K一抗Affinity Biosciences--
抗p-PI3K一抗Abcam--
抗AKT一抗Affinity Biosciences--
抗p-AKT一抗Abcam--
抗GSK3β一抗Affinity Biosciences--
抗Bcl-2一抗Abcam--
抗Runx-2一抗BIOSS--
抗I型胶原一抗BIOSS--
抗Bax一抗Affinity Biosciences--
抗caspase-3一抗Abways Technology--
β-actin抗体ZENBIO--
HRP标记二抗ZENBIO--
CoraLite488偶联二抗Proteintech--
DAPIBeyotime--
Annexin V-FITC----
碘化丙啶----
甲泼尼龙琥珀酸钠Pfizer--
脂多糖Sigma-Aldrich--
硒代蛋氨酸MCE--
EDTAServicebio--
Quantum GX2显微CT系统PerkinElmer--
酶标仪Bio-Rad--
CFX96实时荧光定量PCR系统Bio-Rad--
Nikon荧光显微镜Nikon--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型构建
大鼠品系(SD),年龄(10周),体重(300±20 g),LPS剂量(10 μg/kg),注射方式(腹腔),间隔(24小时),MPS剂量(40 mg/kg),注射方式(肌肉),持续时间(3天)
阅读提示:见 'Animal Model and Grouping' 小节
硒干预
硒剂量(10 mg/kg),给药方式(口服灌胃),频率(每天一次),持续时间(4周)
阅读提示:见 'Animal Model and Grouping' 小节
Micro-CT分析
扫描参数:电压70 kV,电流200 μA,分辨率15 μm,扫描时间4分钟
阅读提示:见 'Micro-CT Assessment' 小节
体外细胞处理
DEX浓度(10 μM),硒浓度(0-25 μM,最佳10 μM),处理时间(24小时),细胞类型(原代成骨细胞、MC3T3-E1)
阅读提示:见 'Cell Viability Assay' 和 'Flow Cytometry' 小节,以及图2和图3图注
Western blot检测
蛋白上样量(20 μg),SDS-PAGE凝胶浓度(10%或12%),一抗孵育条件(4°C过夜),二抗孵育(室温1.5小时)
阅读提示:见 'Western Blotting' 小节