重组蛋白表达与纯化
获得用于免疫小鼠的IBV刺突蛋白S2亚基保守区域蛋白。
构建pET28a-S860–1088重组质粒,转化大肠杆菌BL21(DE3),经IPTG诱导表达,通过His标签亲和层析纯化,并用Western blot验证。
Two novel conserved linear B-cell epitopes identified in the S2 subunit of the infectious bronchitis virus spike protein.
研究包括重组蛋白表达、小鼠免疫、单克隆抗体制备、表位鉴定(截短突变)、序列保守性分析和交叉反应性验证等多个实验层级。
小鼠模型(BALB/c小鼠) SPF鸡胚肾细胞(CEK) Vero E6细胞 SP2/0骨髓瘤细胞
免疫原为刺突蛋白S2亚基860-1088氨基酸重组蛋白 使用小鼠免疫和杂交瘤技术制备单克隆抗体 通过Western blot和间接免疫荧光鉴定表位 表位氨基酸序列:1040KWWND1044和1046KHELPDF1052 交叉反应性测试包括SD、M41和GD三种IBV毒株
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得用于免疫小鼠的IBV刺突蛋白S2亚基保守区域蛋白。
构建pET28a-S860–1088重组质粒,转化大肠杆菌BL21(DE3),经IPTG诱导表达,通过His标签亲和层析纯化,并用Western blot验证。
产生特异性识别IBV刺突蛋白S2亚基的单克隆抗体。
用纯化的重组蛋白免疫BALB/c小鼠,取脾细胞与SP2/0细胞融合,经HAT筛选和有限稀释克隆化,获得杂交瘤细胞。
确定单克隆抗体识别的精确线性表位。
通过构建截短突变体,在Vero E6细胞中表达GST标记的刺突蛋白片段,利用Western blot和IFA检测抗体的识别情况。
评估两个表位在不同IBV毒株中的保守性及单克隆抗体的交叉反应性。
比较800株IBV毒株的表位序列,分析第1044位氨基酸变异对抗体识别的影响,并通过IFA和Western blot测试不同毒株的反应性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 重组蛋白表达 | pET-28a载体 | -- | -- |
| Uniclone一步无缝克隆试剂盒 | Genesand Biotech | -- | |
| 异丙基硫代半乳糖苷 | -- | -- | |
| 动物免疫 | 完全弗氏佐剂 | Sigma-Aldrich | -- |
| 不完全弗氏佐剂 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 细胞融合 | 聚乙二醇4000 | Sigma-Aldrich | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 间接免疫荧光 | DAPI染色液 | Sigma-Aldrich | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| ECL底物 | Beyotime | -- | |
| ChemiDoc MP成像系统 | Bio-Rad | -- | |
| 表位鉴定 | pCMV-FLAG-GST载体 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 重组蛋白表达 | 重组蛋白片段:S860–1088;诱导条件:0.5 mM IPTG,16°C,12小时;纯化方式:His标签亲和层析。 阅读提示:Materials and methods 2.3 |
| 单克隆抗体制备 | 免疫剂量:60 μg;佐剂:完全/不完全弗氏佐剂;融合比例:10:1;筛选方法:IFA。 阅读提示:Materials and methods 2.4, 2.5 |
| 表位鉴定 | 截短突变体构建:将片段克隆至pCMV-FLAG-GST载体,转染Vero E6细胞;检测方法:WB和IFA。 阅读提示:Materials and methods 2.8 |
| 交叉反应性评估 | 毒株:SD (GI-19), M41 (GI-1), GD (GI-7);感染MOI:0.1;IFA固定时间:36 hpi;WB裂解时间:24 hpi。 阅读提示:Materials and methods 2.6, 2.7; Results 3.5 |