建立TROP2定量分析方法
验证TROP2在乳腺癌细胞和PBMCs中的差异表达,并确定TROP2抗体用于检测的最佳浓度。
通过流式细胞术检测MDA-MB-453细胞和PBMCs的TROP2表达;免疫荧光染色观察;Western blot验证TROP2和EpCAM蛋白水平;测定TROP2抗体的EC50。
Establishment of a new method for detection of TROP2-positive circulating tumor cells in breast cancer.
包含细胞系实验、临床样本验证和体外捕获实验,但缺乏动物模型等体内验证,且临床样本量小。
乳腺癌细胞系MDA-MB-453、MCF-7、MDA-MB-468、MDA-MB-231 乳腺癌患者外周血样本 健康志愿者外周血样本
TROP2@MNPs浓度10 μg/mL TROP2@MNPs孵育时间60分钟 TROP2@MNPs在4°C下储存4周稳定性 BC细胞系TROP2表达水平与捕获效率相关性 临床样本中TROP2@MNPs与EpCAM@MNPs捕获效率比较
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证TROP2在乳腺癌细胞和PBMCs中的差异表达,并确定TROP2抗体用于检测的最佳浓度。
通过流式细胞术检测MDA-MB-453细胞和PBMCs的TROP2表达;免疫荧光染色观察;Western blot验证TROP2和EpCAM蛋白水平;测定TROP2抗体的EC50。
初步评估基于EpCAM的TUMORFISHER方法捕获的CTCs中TROP2表达,并分析其与临床病理特征的相关性。
从7例乳腺癌患者外周血中捕获CTCs,检测TROP2表达,并与IHC评分比较;分析CTCTROP2+数量和MFI与IHC评分的相关性。
制备靶向TROP2的磁性纳米颗粒,并验证其物理特性和抗体偶联。
将抗TROP2抗体通过生物素-链霉亲和素连接到磁性微珠上;动态光散射测量粒径变化;UV-vis光谱确认抗体存在;TEM和SEM观察形态;荧光显微镜观察抗体标记。
分析TROP2在不同乳腺癌类型中的表达,筛选适合验证TROP2@MNPs捕获效率的细胞系。
利用DISCO数据库分析不同BC细胞类型中TROP2和EpCAM表达;Western blot和免疫荧光检测四种BC细胞系的TROP2和EpCAM表达。
验证TROP2@MNPs对BC细胞系的捕获效率,并优化捕获条件。
将BC细胞与TROP2@MNPs孵育后磁分离,计数捕获效率;比较TROP2@MNPs与EpCAM@MNPs的捕获效率;优化磁珠浓度和孵育时间;评估4周稳定性。
评估TROP2@MNPs在全血环境中的捕获效率和细胞活性影响。
在PBS和裂解血培养基中,将100或200个BC细胞加入2 mL健康供体全血,用TROP2@MNPs捕获并计数;用Calcein-AM/PI染色评估细胞活力。
初步验证TROP2@MNPs在乳腺癌患者CTCs捕获中的临床应用价值。
用TROP2@MNPs和EpCAM@MNPs分别从4例乳腺癌患者的外周血中捕获CTCs,比较捕获数量并与IHC评分比较。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM完全培养基 | -- | -- |
| RPMI 1640完全培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 免疫组织化学 | 柠檬酸盐缓冲液 | -- | -- |
| 流式检测与免疫荧光 | 抗TROP2抗体 | Abcam | ab214488 |
| Alexa Fluor™ 546蛋白标记试剂盒 | Thermo | A10237 | |
| 山羊抗小鼠IgG H&L/Cy5 | Bioss | BA04296728 | |
| DAPI染色液 | Abcam | ab285390 | |
| 流式检测 | 超灵敏纳米流式细胞仪 | Attune NxT | -- |
| 荧光显微观察 | 荧光显微镜 | OLYMPUS IX73 | -- |
| 外周血单个核细胞分离 | 淋巴细胞分离液 | TBDScience | -- |
| Western blot | NP-40裂解液 | Boster | AR0107-100 |
| Triton X-100 | -- | -- | |
| 蛋白酶抑制剂 | MedChemExpress | HY-K0010 | |
| 十二烷基硫酸钠 | Meilunbio | MA0053 | |
| 预制蛋白凝胶 | -- | 36255ES10 | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 脱脂牛奶 | CST | 9999 | |
| 山羊抗兔HRP | Biorad | 1706515 | |
| TROP2@MNPs制备 | 生物素标记试剂盒 | Beijing Biodragon Immunotechnologies Corporation | -- |
| 磁珠 | Ademtech | Bio-Adembeads Streptavidin 0312 | |
| TROP2@MNPs表征 | Zetasizer Nano ZS-90激光粒度分析仪 | -- | -- |
| 透射电子显微镜 | -- | -- | |
| 扫描电子显微镜 | -- | -- | |
| 模拟捕获实验 | TROP2@MNPs | -- | -- |
| Pep@MNPs | -- | -- | |
| CTC捕获 | TUMORFISHER试剂盒 | -- | -- |
| 细胞活性检测 | 钙黄绿素-AM | -- | -- |
| 碘化丙啶 | -- | -- | |
| 基因敲低 | Lipofectamine 3000 | -- | -- |
| Transwell侵袭实验 | 基质胶 | -- | -- |
| Transwell小室 | Corning | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 乳腺癌细胞系来源;培养基类型(DMEM或RPMI 1640);补充10%胎牛血清和1%青霉素-链霉素;培养条件37°C、5% CO2、90%相对湿度。 阅读提示:详见Materials and methods中的Cell lines and cell culture |
| 免疫组织化学 | 抗原修复条件:0.01 M柠檬酸盐缓冲液,10分钟热修复;一抗浓度和孵育条件(4°C过夜);二抗为辣根酶标记;DAB显色;苏木精复染;H-score计算方法。 阅读提示:详见Materials and methods中的Immunohistochemistry |
| TROP2@MNPs制备 | 抗TROP2抗体用量(1 mg/mL);生物素化抗体与磁珠反应时间(60分钟);磁珠洗涤次数(5次);缓冲液成分(PBST pH7.4, 0.05% Tween-20, 0.1% BSA)。 阅读提示:详见Materials and methods中的Preparation and characterization of TROP2@MNPs |
| 体外捕获优化 | TROP2@MNPs浓度(10 μg/mL);孵育时间(60分钟);储存条件(4°C,4周内稳定);捕获效率与TROP2表达水平相关。 阅读提示:详见Results中的Optimization of capture conditions |
| 临床样本CTC捕获 | 临床样本量(4例患者、6例健康志愿者);全血体积(2 mL);TROP2@MNPs和EpCAM@MNPs捕获方法;TROP2-IHC评分;比较TROP2@MNPs与EpCAM@MNPs捕获的CTCTROP2+数量与IHC评分相关性。 阅读提示:详见Materials and methods中的Patients及Results中的Preliminary exploration of TROP2@MNPs in clinical CTC capture |