验证BVDV传播依赖细胞间直接接触
确定BVDV是否通过细胞间直接接触传播,而非仅通过游离病毒颗粒。
使用transwell共培养系统,采用0.4μm和12μm孔径膜分离感染细胞和靶细胞,并在中和抗体存在下观察感染情况。
Tunneling nanotubes provide a new route for bovine viral diarrhea virus spreading.
包含transwell共培养、药物干预、免疫荧光、扫描电镜、iSTORM和活细胞动态成像等多层级实验,并进行了结构验证和功能验证,证据链完整。
MDBK细胞 BVDV NADL株
transwell实验使用0.4μm和12μm孔径聚碳酸酯膜,验证细胞间直接接触传播 药物干预浓度:paclitaxel(10 nM)、nocodazole(50 ng/ml)、cytochalasin D(50 μg/ml)、latrunculin A(10 nM)、carbenoxolone(1 mM) 中和抗体存在下,BVDV仍可通过细胞间接触传播 iSTORM和活细胞成像证实BVDV颗粒通过TNTs转移 统计使用one-way ANOVA和Bonferroni检验,P<0.05
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定BVDV是否通过细胞间直接接触传播,而非仅通过游离病毒颗粒。
使用transwell共培养系统,采用0.4μm和12μm孔径膜分离感染细胞和靶细胞,并在中和抗体存在下观察感染情况。
通过药物干预和形态学验证,确认BVDV诱导的细胞间连接结构是隧道纳米管。
使用paclitaxel、nocodazole、cytochalasin D、latrunculin A和carbenoxolone处理感染细胞,观察TNTs形成;并通过免疫荧光、扫描电镜和3D重建分析结构特征。
确定BVDV感染是否显著增加MDBK细胞间TNTs的数量。
用MOI 1 BVDV感染MDBK细胞,通过光镜和免疫荧光计数TNTs,并测量长度分布。
验证TNTs是否优先从感染细胞延伸至未感染细胞。
用DiO和DiL分别标记感染和未感染细胞,共培养后观察TNTs延伸方向。
利用超分辨显微镜iSTORM直接观察BVDV颗粒是否存在于TNTs内。
BVDV感染细胞固定后,使用BVDV E2抗体和F-actin抗体标记,iSTORM成像观察病毒颗粒。
实时观测BVDV病毒颗粒是否通过TNTs从感染细胞转移到未感染细胞。
用DiL标记BVDV,DiO标记细胞膜,活细胞成像系统每30分钟采集图像,观察病毒移动。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 免疫荧光 | BVDV E2单克隆抗体 | Veterinary Medical Research & Development | # 348 |
| 山羊抗小鼠IgG(H+L)-FITC偶联二抗 | abcam | # ab6785 | |
| F-actin抗体 | Bioss | bs-1571R | |
| 细胞骨架染色 | TRITC标记的鬼笔环肽 | YEASEN | 40734ES75 |
| 药物处理 | 细胞松弛素D | YEASEN | 53215ES03 |
| 紫杉醇 | YEASEN | 53530ES10 | |
| 诺考达唑 | YEASEN | 51301ES08 | |
| 拉特曲林A | Shanghai yuanye Bio-Technology | 76343-93-6 | |
| 甘珀酸 | MACKLIN | 5697-56-3 | |
| 膜染色 | DiO细胞膜荧光探针 | Beyotime | C1038 |
| DiL细胞膜荧光探针 | Beyotime | C1036 | |
| transwell实验 | Transwell聚碳酸酯膜嵌入物 | Corning | -- |
| 扫描电镜 | 扫描电子显微镜 | Hitachi | SU3800 |
| iSTORM | 随机光学重建显微镜 | INVIEW | 3CM |
| 活细胞成像 | Hoechst 33342活细胞染色液 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与病毒感染 | MDBK细胞(Bio-68289)培养条件:DMEM+10%FBS,37°C,5% CO2;BVDV NADL株(ATCC VR-534)感染MOI。 阅读提示:Methods 2.1 Cells and virus |
| transwell传播实验 | transwell膜孔径(0.4μm和12μm)、中和抗体稀释度(1:400)、共培养时间(24h)。 阅读提示:Methods 2.4 Transwell coculture assay; Results 3.1 |
| 药物干预 | 药物种类及浓度:paclitaxel (10 nM)、nocodazole (50 ng/ml)、cytochalasin D (50 μg/ml)、latrunculin A (10 nM)、carbenoxolone (1 mM)。 阅读提示:Methods 2.1; Results 3.2 |
| TNTs形态与定位观察 | 免疫荧光染色(BVDV E2、F-actin)、扫描电镜样品制备(戊二醛固定、乙醇梯度脱水、临界点干燥、Pt溅射)、3D重建。 阅读提示:Methods 2.3, 2.5; Results 3.3 |
| TNTs方向性实验 | DiO和DiL标记,感染与未感染细胞共培养比例(1:1)和时间(24h)。 阅读提示:Methods 2.6; Results 3.4 |
| iSTORM观察 | 固定条件(3% PFA+0.1%戊二醛)、抗体浓度(anti-BVDV E2 1:100, anti-F-actin 1:50)、二抗(CF568 1:200, Alexa Fluor 647 1:400)。 阅读提示:Methods 2.7; Results 3.5 |
| 活细胞动态成像 | DiL标记病毒浓度(250 μM)、染色时间(90min)、DiO染色30min、Hoechst染色20min、成像间隔(30min)、迁移率计算。 阅读提示:Methods 2.8; Results 3.6 |
| 统计分析 | 数据表示(均值±标准误)、统计方法(one-way ANOVA、Bonferroni事后检验)、显著性水平(*P<0.05, **P<0.01, ***P<0.001) 阅读提示:Methods 2.9 |