肿瘤来源的SEMA7A通过调节肿瘤相关巨噬细胞中的脂肪酸氧化促进非小细胞肺癌的进展

Tumor-derived SEMA7A regulates fatty acid oxidation in the tumor-associated macrophages to promote the progression of non-small cell lung cancer.

作者信息Jia Wang, Yang Shao, Jiameng Zhang, Fangfang Han, Si Wang, Beixing Liu
PMID41019072
发布时间2025-09-11
DOI10.3389/fimmu.2025.1625208

实验完整度

包含生物信息学分析、体外细胞实验(siRNA敲低、共培养)、小鼠模型和体内验证,并进行了功能验证和机制研究(ITGB1、FAO、ERK1/2通路)。

主要模型

小鼠Lewis肺癌皮下移植瘤模型(C57BL/6J小鼠) 小鼠NSCLC细胞系LLC和RAW264.7巨噬细胞共培养体系 人NSCLC细胞系H1299

重点核对

SEMA7A在NSCLC组织中的表达水平及预后相关性(TCGA/HPA) SEMA7A敲低对LLC和H1299细胞增殖、凋亡、侵袭和迁移的影响 SEMA7A敲低对体内肿瘤生长和TAMs M1/M2极化的影响 ITGB1敲低对巨噬细胞M2极化的影响 脂肪酸氧化(etomoxir)和ERK1/2通路(PD98059)对巨噬细胞极化的影响

摘要

非小细胞肺癌(NSCLC)是一种预后不良的侵袭性癌症。尽管NSCLC的治疗已取得成功,但仍迫切需要更多研究新的生物标志物用于患者选择。Semaphorin 7A(SEMA7A)是一种可溶性的肿瘤来源分子,可以调节多种类型癌症的增殖、侵袭和血管生成。然而,SEMA7A是否促进NSCLC的进展仍不清楚。在本研究中,通过生物信息学分析和实验性小鼠肿瘤模型,我们发现SEMA7A在人类NSCLC中的表达水平升高,并与不良预后呈正相关。癌细胞中SEMA7A的敲低可能抑制NSCLC的进展,同时肿瘤微环境(TME)中M2极化减少。事实上,SEMA7A可能以ITGB1依赖的方式增加肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)向M2表型的极化。巨噬细胞中的脂肪酸氧化似乎对SEMA7A促进M2极化至关重要。阻断脂肪酸氧化可能逆转TAMs的免疫抑制表型和NSCLC的结局。我们的发现提供了实验证据,表明SEMA7A可能作为巨噬细胞脂质代谢的调节因子,影响TAMs的极化状态。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肿瘤来源的SEMA7A是否以及如何影响NSCLC的进展,特别是其对肿瘤相关巨噬细胞极化的作用。
核心机制
SEMA7A通过ITGB1受体激活ERK1/2信号通路,促进巨噬细胞脂肪酸氧化,从而驱动TAMs向M2表型极化,进而促进NSCLC进展。
主要证据
TCGA和HPA数据显示SEMA7A在NSCLC中高表达且与不良预后相关;SEMA7A敲低抑制LLC和H1299细胞增殖侵袭迁移,并减缓体内肿瘤生长;SEMA7A敲低减少M2极化,而ITGB1敲低或ERK1/2抑制或FAO阻断均可逆转M2极化。
研究意义
本研究提供实验证据表明SEMA7A可能作为巨噬细胞脂质代谢的调节因子,影响TAMs极化状态,为NSCLC的治疗提供潜在的靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

表达与预后分析

评估SEMA7A在NSCLC中的表达水平及其与预后的关系

利用TCGA数据库分析SEMA7A在LUAD和LUSC中的表达,并结合生存分析评估预后;使用HPA数据库的免疫组化验证蛋白水平;在LLC肿瘤模型中检测Sema7A表达随时间的变化。

2

SEMA7A敲低对肿瘤细胞功能的影响

验证SEMA7A在NSCLC细胞增殖、凋亡、侵袭和迁移中的作用

使用siRNA或shRNA敲低LLC和H1299细胞中的SEMA7A,检测细胞活力、凋亡、侵袭和迁移能力;在体内实验中,将shSEMA7A-LLC细胞皮下植入小鼠,监测肿瘤生长和生存期。

3

SEMA7A敲低对肿瘤微环境中巨噬细胞极化的影响

探索SEMA7A是否影响TAMs的极化状态

通过流式细胞术分析肿瘤组织中TAMs的M1/M2比例,并检测相关细胞因子的表达;体外共培养实验验证SEMA7A对RAW264.7细胞极化的影响。

4

ITGB1依赖性的验证

验证SEMA7A是否通过ITGB1受体促进M2极化

用siRNA沉默RAW264.7细胞中的ITGB1,然后与LLC细胞共培养,检测巨噬细胞极化标志物。

5

脂肪酸氧化在SEMA7A诱导M2极化中的作用

探讨SEMA7A是否通过脂肪酸氧化影响巨噬细胞极化

从肿瘤组织中分选TAMs,分析脂质积累、游离脂肪酸浓度、线粒体含量和耗氧率;用etomoxir阻断脂肪酸氧化,检测对M2极化的影响。

6

ERK1/2信号通路在SEMA7A调控脂肪酸氧化和M2极化中的作用

探究ERK1/2通路是否介导SEMA7A对脂肪酸氧化和M2极化的调节

检测SEMA7A敲低后TAMs中ERK1/2磷酸化水平;用PD98059抑制ERK1/2通路,检测脂肪酸氧化相关基因、脂质积累、OCR以及M1/M2极化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Pricella--
胎牛血清Pricella--
青霉素/链霉素Gibco--
0.4μm孔径Transwell小室Corning--
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo ScientificL3000001
慢病毒载体(PLV-puro)Sangon BiotechPLVE3866
CCK-8试剂盒----
C57BL/6J小鼠Huafukang Biotechnology--
TRIzol试剂Vazyme--
Prime Script RT试剂盒TaKaRaRR047A
LightCycler 480实时荧光定量PCR仪Roche--
胶原酶DSigma--
脱氧核糖核酸酶IRoche--
抗小鼠CD16/32单克隆抗体BD Bioscience--
F4/80标记磁珠Miltenyi Biotec130-110-443
重组SEMA7A蛋白MCE--
依托莫昔MCEHY-50202
RIPA裂解液Beyotime--
聚偏二氟乙烯膜Millipore--
兔抗SEMA7A抗体Biossbs-2702R
兔抗ERK1/2抗体ImmunowayYT1625
兔抗磷酸化ERK1/2抗体ImmunowayYP0101
BeyoECL Plus化学发光底物Beyotime--
ELISA试剂盒(IL-1β、TNF-α、IL-10、TGF-β)Elabscience--
寡霉素Sigma--
抗霉素/鱼藤酮Sigma--
游离脂肪酸检测试剂盒Boxbio--
PD98059----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
SEMA7A表达与预后分析
SEMA7A在LUAD和LUSC中的表达数据来源(TCGA),预后分析的分组阈值,HPA免疫组化的样本类型。
阅读提示:Materials and Methods 2.1 Bioinformatics analysis;Results 3.1;Figure 1。
细胞培养与处理
细胞系来源(LLC、H1299、RAW264.7、MLE-12、BEAS-2B)、培养基配方(DMEM+10% FBS+1% P/S)、培养条件(37°C、5% CO2)、siRNA序列和转染试剂浓度。
阅读提示:Materials and Methods 2.2, 2.3;Figure 2。
动物模型
小鼠品系(C57BL/6J)、性别(雄性)、年龄(6-8周)、细胞接种数量(1×10^6)、注射体积(100 μl)、注射部位(右腋窝)、肿瘤测量频率(每2天)和计算公式。
阅读提示:Materials and Methods 2.5;Figure 2F-H。
巨噬细胞极化分析
TAMs分选方法(percoll梯度离心和磁珠分选)、流式抗体组合(CD45、CD11b、F4/80、CD86、CD206)、M1/M2标志物定义、共培养条件(细胞比例、时间)。
阅读提示:Materials and Methods 2.7-2.9;Results 3.3;Figures 3B-D, F。
代谢检测
OCR检测的具体步骤和药物浓度(oligomycin、FCCP、antimycin/rotenone)、FFA检测试剂盒、etomoxir浓度(200 μmol/L)和处理时间(24小时或48小时)、重组SEMA7A浓度(100 ng/mL)。
阅读提示:Materials and Methods 2.12-2.13;Results 3.5;Figure 5。
ERK1/2通路验证
PD98059浓度和处理时间、Western blot检测p-ERK1/2的抗体稀释比例、GSEA分析的软件和参数。
阅读提示:Materials and Methods 2.10;Results 3.6;Figure 6。