表达与预后分析
评估SEMA7A在NSCLC中的表达水平及其与预后的关系
利用TCGA数据库分析SEMA7A在LUAD和LUSC中的表达,并结合生存分析评估预后;使用HPA数据库的免疫组化验证蛋白水平;在LLC肿瘤模型中检测Sema7A表达随时间的变化。
Tumor-derived SEMA7A regulates fatty acid oxidation in the tumor-associated macrophages to promote the progression of non-small cell lung cancer.
包含生物信息学分析、体外细胞实验(siRNA敲低、共培养)、小鼠模型和体内验证,并进行了功能验证和机制研究(ITGB1、FAO、ERK1/2通路)。
小鼠Lewis肺癌皮下移植瘤模型(C57BL/6J小鼠) 小鼠NSCLC细胞系LLC和RAW264.7巨噬细胞共培养体系 人NSCLC细胞系H1299
SEMA7A在NSCLC组织中的表达水平及预后相关性(TCGA/HPA) SEMA7A敲低对LLC和H1299细胞增殖、凋亡、侵袭和迁移的影响 SEMA7A敲低对体内肿瘤生长和TAMs M1/M2极化的影响 ITGB1敲低对巨噬细胞M2极化的影响 脂肪酸氧化(etomoxir)和ERK1/2通路(PD98059)对巨噬细胞极化的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估SEMA7A在NSCLC中的表达水平及其与预后的关系
利用TCGA数据库分析SEMA7A在LUAD和LUSC中的表达,并结合生存分析评估预后;使用HPA数据库的免疫组化验证蛋白水平;在LLC肿瘤模型中检测Sema7A表达随时间的变化。
验证SEMA7A在NSCLC细胞增殖、凋亡、侵袭和迁移中的作用
使用siRNA或shRNA敲低LLC和H1299细胞中的SEMA7A,检测细胞活力、凋亡、侵袭和迁移能力;在体内实验中,将shSEMA7A-LLC细胞皮下植入小鼠,监测肿瘤生长和生存期。
探索SEMA7A是否影响TAMs的极化状态
通过流式细胞术分析肿瘤组织中TAMs的M1/M2比例,并检测相关细胞因子的表达;体外共培养实验验证SEMA7A对RAW264.7细胞极化的影响。
验证SEMA7A是否通过ITGB1受体促进M2极化
用siRNA沉默RAW264.7细胞中的ITGB1,然后与LLC细胞共培养,检测巨噬细胞极化标志物。
探讨SEMA7A是否通过脂肪酸氧化影响巨噬细胞极化
从肿瘤组织中分选TAMs,分析脂质积累、游离脂肪酸浓度、线粒体含量和耗氧率;用etomoxir阻断脂肪酸氧化,检测对M2极化的影响。
探究ERK1/2通路是否介导SEMA7A对脂肪酸氧化和M2极化的调节
检测SEMA7A敲低后TAMs中ERK1/2磷酸化水平;用PD98059抑制ERK1/2通路,检测脂肪酸氧化相关基因、脂质积累、OCR以及M1/M2极化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Pricella | -- |
| 胎牛血清 | Pricella | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Gibco | -- | |
| 0.4μm孔径Transwell小室 | Corning | -- | |
| RNA干扰 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Scientific | L3000001 |
| 慢病毒载体(PLV-puro) | Sangon Biotech | PLVE3866 | |
| 细胞增殖 | CCK-8试剂盒 | -- | -- |
| 动物模型 | C57BL/6J小鼠 | Huafukang Biotechnology | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Vazyme | -- |
| RT-qPCR | Prime Script RT试剂盒 | TaKaRa | RR047A |
| LightCycler 480实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| 肿瘤组织消化 | 胶原酶D | Sigma | -- |
| 脱氧核糖核酸酶I | Roche | -- | |
| 流式细胞术 | 抗小鼠CD16/32单克隆抗体 | BD Bioscience | -- |
| 巨噬细胞分选 | F4/80标记磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-110-443 |
| 巨噬细胞处理 | 重组SEMA7A蛋白 | MCE | -- |
| 依托莫昔 | MCE | HY-50202 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 聚偏二氟乙烯膜 | Millipore | -- | |
| 兔抗SEMA7A抗体 | Bioss | bs-2702R | |
| 兔抗ERK1/2抗体 | Immunoway | YT1625 | |
| 兔抗磷酸化ERK1/2抗体 | Immunoway | YP0101 | |
| BeyoECL Plus化学发光底物 | Beyotime | -- | |
| ELISA | ELISA试剂盒(IL-1β、TNF-α、IL-10、TGF-β) | Elabscience | -- |
| 耗氧率检测 | 寡霉素 | Sigma | -- |
| 抗霉素/鱼藤酮 | Sigma | -- | |
| 游离脂肪酸检测 | 游离脂肪酸检测试剂盒 | Boxbio | -- |
| ERK抑制 | PD98059 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| SEMA7A表达与预后分析 | SEMA7A在LUAD和LUSC中的表达数据来源(TCGA),预后分析的分组阈值,HPA免疫组化的样本类型。 阅读提示:Materials and Methods 2.1 Bioinformatics analysis;Results 3.1;Figure 1。 |
| 细胞培养与处理 | 细胞系来源(LLC、H1299、RAW264.7、MLE-12、BEAS-2B)、培养基配方(DMEM+10% FBS+1% P/S)、培养条件(37°C、5% CO2)、siRNA序列和转染试剂浓度。 阅读提示:Materials and Methods 2.2, 2.3;Figure 2。 |
| 动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6J)、性别(雄性)、年龄(6-8周)、细胞接种数量(1×10^6)、注射体积(100 μl)、注射部位(右腋窝)、肿瘤测量频率(每2天)和计算公式。 阅读提示:Materials and Methods 2.5;Figure 2F-H。 |
| 巨噬细胞极化分析 | TAMs分选方法(percoll梯度离心和磁珠分选)、流式抗体组合(CD45、CD11b、F4/80、CD86、CD206)、M1/M2标志物定义、共培养条件(细胞比例、时间)。 阅读提示:Materials and Methods 2.7-2.9;Results 3.3;Figures 3B-D, F。 |
| 代谢检测 | OCR检测的具体步骤和药物浓度(oligomycin、FCCP、antimycin/rotenone)、FFA检测试剂盒、etomoxir浓度(200 μmol/L)和处理时间(24小时或48小时)、重组SEMA7A浓度(100 ng/mL)。 阅读提示:Materials and Methods 2.12-2.13;Results 3.5;Figure 5。 |
| ERK1/2通路验证 | PD98059浓度和处理时间、Western blot检测p-ERK1/2的抗体稀释比例、GSEA分析的软件和参数。 阅读提示:Materials and Methods 2.10;Results 3.6;Figure 6。 |