检测Hippo信号活性
确定YAP和LATS在牙上皮中的表达和活性状态
通过免疫染色检测YAP、pYAP、pLATS1在切牙上皮中的表达,并确认BrdU标记的增殖区域
Lats1/2 Differentially Modulate the Proliferative State of Dental Epithelial Progenitors and Ameloblasts in the Murine Incisor.
包含体内基因敲除小鼠模型(Lats1/2K14-cKO)、免疫染色、EdU/BrdU标记、3D培养及药理学抑制等,功能验证和机制验证明确。
小鼠切牙牙上皮 Lats1/2K14-cKO小鼠 3D培养的原代牙上皮细胞
Lats1和Lats2基因敲除小鼠模型的构建与诱导时间 YAP核定位变化 EdU/BrdU标记时间点及注射方案 TRULI浓度(10 μM)及处理时间(5天) 3D培养中Matrigel的使用和细胞来源(颈环或成釉细胞区域)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定YAP和LATS在牙上皮中的表达和活性状态
通过免疫染色检测YAP、pYAP、pLATS1在切牙上皮中的表达,并确认BrdU标记的增殖区域
特异性地在牙上皮中删Lats1和Lats2,以激活YAP
使用K14CreER或Sox2CreER小鼠与Lats1f/f;Lats2f/f小鼠交配,通过他莫昔芬诱导Cre活性,并验证敲除效率和YAP核定位
评估敲除后组织结构、细胞增殖和分化标志物的变化
对切牙切片进行H&E染色和免疫染色,检测P-CAD、NICD、K17、AMELX、AMBN、Ki67等标志物
评估敲除后祖细胞增殖和位移的动态变化
在不同时间点注射EdU和BrdU,通过双重染色分析标记细胞的分布和位移
测试在脱离组织环境后,抑制LATS是否能诱导成釉细胞增殖
从颈环和成釉细胞区域分离细胞,与Matrigel混合,用DMSO或TRULI处理5天,计数球体形成
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫染色 | 抗成釉蛋白抗体 | Abcam | ab153915 |
| 抗BrdU抗体 | Thermo | B35128 | |
| 抗裂解Notch1胞内域抗体 | Cell Signaling | 4147 | |
| 抗角蛋白17/19抗体 | Cell Signaling | 12434 | |
| 抗Ki67抗体 | Abcam | ab15580 | |
| 抗P-钙黏蛋白抗体 | Thermo | 13-2000Z | |
| 抗磷酸化LATS1 (Ser909)抗体 | Cell Signaling | 9157 | |
| 抗磷酸化LATS1 (Thr1079)抗体 | Bioss | bs-7913R | |
| 抗磷酸化YAP (Ser127)抗体 | Cell Signaling | 4911 | |
| 抗YAP抗体 | Cell Signaling | 4912 | |
| 3D培养 | 生长因子减少型Matrigel | Corning | 356231 |
| TRULI | -- | -- | |
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | GIBCO | -- |
| 表皮生长因子 | R&D | -- | |
| 碱性成纤维细胞生长因子 | R&D | -- | |
| B27添加剂 | GIBCO | -- | |
| 组织处理 | 石蜡 | -- | -- |
| 免疫检测 | ABC HRP试剂盒 | Vector Laboratories | -- |
| 酪酰胺 | PerkinElmer | -- | |
| 显微镜 | 徕卡DM1000显微镜 | Leica | -- |
| 奥林巴斯IX81显微镜 | Olympus | -- | |
| 徕卡SP8共聚焦显微镜 | Leica | -- | |
| 图像分析 | Fiji | -- | -- |
| 组织处理 | 徕卡ASP300S脱水机 | Leica | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠模型与诱导 | 小鼠品系:K14CreER;Lats1f/f;Lats2f/f,以及Sox2CreER;Lats1f/f;Lats2f/f;他莫昔芬剂量:5 mg/30 g体重/天,连续2天口服灌胃 阅读提示:见Materials and Methods中'Mouse lines and induction of alleles' |
| 组织处理和染色 | 组织固定:4%PFA;切片厚度:7 μm;抗体稀释:1:100 阅读提示:见Materials and Methods中'Tissue preparation and staining' |
| EdU/BrdU标记 | EdU和BrdU注射剂量:100 μl(10 mg/ml);注射时间点:第3天和第6天,或第5天和第7天 阅读提示:见Results中'Lats1/2 deletion promotes proliferation in progenitor cells but not differentiated cells'及图4 |
| 3D培养 | TRULI浓度:10 μM;培养时间:5天;细胞来源:颈环和成釉细胞区域;每实验2只小鼠,3次实验 阅读提示:见Materials and Methods中'3D culture of dental epithelial cells' |