发育期LRCs动态追踪
观察唾液腺发育过程中,GFP标记的LRCs在不同细胞类型中的分布和变化。
使用TetOP-H2B-GFP小鼠,在E15或从胚胎期至出生后1周通过饮用含Dox的水诱导GFP表达,随后在不同时间点(P0-P70)取样,并通过免疫组化检测GFP、Ki67、αSMA等标记。
Stem/progenitor cell dynamics during salivary gland development and regeneration demonstrated by the double pulse-chase paradigm.
包含体外细胞标记追踪(H2B-GFP和EdU双重标记)、体内导管结扎再生模型、免疫组化检测及统计分析,多个独立证据层级且包含功能验证。
TetOP-H2B-GFP转基因小鼠 C57/BL6小鼠唾液腺导管结扎模型
Dox诱导H2B-GFP表达的时间窗口(E15至P7或6周龄4天) EdU注射剂量(100 μg/g体重)和频率(每日两次) 导管结扎持续时间(1周)及去结扎后观察时间点 细胞类型鉴定标记(Ki67、SOX2、αSMA、AQP5等)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
观察唾液腺发育过程中,GFP标记的LRCs在不同细胞类型中的分布和变化。
使用TetOP-H2B-GFP小鼠,在E15或从胚胎期至出生后1周通过饮用含Dox的水诱导GFP表达,随后在不同时间点(P0-P70)取样,并通过免疫组化检测GFP、Ki67、αSMA等标记。
结合H2B-GFP和EdU标记,识别发育过程中的LRCs并分析其增殖和定位。
在P10-P14天,对已用GFP标记的小鼠腹腔注射EdU(100 μg/g体重),每日两次,持续4天,随后在1、2、8周后取样,通过共聚焦显微镜观察GFP和EdU的分布,并进行免疫组化检测Ki67、SOX2等。
建立可逆的唾液腺损伤模型,观察损伤和再生过程中的细胞动力学变化。
对6周龄4天大的C57/BL6小鼠进行主排泄管结扎,1周后拆除结扎,在结扎后3天、5天、1周以及去结扎后1、2、4周取样,通过H&E染色、Ki67和AQP5免疫组化观察形态和增殖变化。
在损伤再生过程中,追踪GFP和EdU标记的LRCs,观察其分化去向。
在6周龄诱导TetOP-H2B-GFP小鼠GFP表达4天,然后进行导管结扎,1周后拆除,去结扎后注射EdU(100 μg/g体重)每日两次持续1周,在1、2、8周后取样分析GFP和EdU共定位,并进行SOX2和αSMA免疫组化。
观察再生早期(3-14天)LRCs的分布和分化。
在TetOP-H2B-GFP小鼠中,从胚胎期至出生后1周标记GFP,于6周龄结扎,1周后去结扎,随后注射EdU(100 μg/g体重)每日两次持续1周,在去结扎后3、5、7、14天取样分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物麻醉 | Domitor | Nippon Zenyaku Kogyo Co, Ltd | -- |
| Vetorphale | Meiji Seika Pharma Co, Ltd | -- | |
| 七氟烷 | Fujifilm Wako | -- | |
| 标记试剂 | 多西环素 | -- | -- |
| EdU | Fujifilm Wako | -- | |
| EdU检测 | Click-iT EdU成像试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | C10269 |
| 成像 | 共聚焦激光扫描显微镜FV300 | Olympus | -- |
| 立体显微镜 | 立体显微镜CLS 150 MR | Leica Microsystems, Inc. | -- |
| 免疫荧光显微镜 | 尼康E800荧光显微镜 | Nikon | -- |
| 图像采集 | NIS-Elements | Nikon Instrument Inc. | -- |
| 统计分析 | WINROOF | Mitani Trading | -- |
| EZR | -- | -- | |
| 免疫组化 | Ki67抗体 | DakoCytomation | M7249 |
| AQP5抗体 | Bioss | bs-1554R | |
| αSMA抗体 | DakoCytomation | M0851 | |
| K19抗体 | Abcam | ab8591 | |
| K14抗体 | Sigma-Aldrich | MAB3232 | |
| SOX2抗体 | Abcam | ab92494 | |
| GFP抗体 | Medical and Biological Laboratories | #598 | |
| 波形蛋白抗体 | DaKoCytomation | M0725 | |
| EdU检测 | Alexa Fluor叠氮化物594 | Thermo Fisher Scientific | A10270 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型与伦理 | 小鼠品系(C57/BL6和TetOP-H2B-GFP)、性别(雌雄并用)、伦理批准号(SA01232和SD01692) 阅读提示:Materials and Methods, 2.1 Animals |
| GFP标记 | Dox给药浓度(1 mg/g)、给药时间(发育实验:E15至P7或6周龄4天;再生实验:6周龄连续4天)、给药方式(饮水中) 阅读提示:Materials and Methods, 2.3.1 Development (1)和(2), 2.3.3 Regeneration |
| EdU标记 | EdU剂量(100 μg/g体重)、注射频率(每日两次)、注射时间(发育实验:P10-14持续4天;再生实验:去结扎后持续1周) 阅读提示:Materials and Methods, 2.3.1 Development (2), 2.3.3 Regeneration |
| 导管结扎模型 | 结扎年龄(6周龄4天)、结扎持续时间(1周)、结扎部位(主排泄管)、缝线材料(5-0丝线) 阅读提示:Materials and Methods, 2.2 Ligation experiment |
| 组织处理与检测 | 固定方法(4% PFA/4°C过夜)、包埋(石蜡)、切片厚度(4 μm)、抗体稀释度(Ki67 1:100, AQP5 1:100, αSMA 1:100, K19 1:300, K14 1:300, SOX2 1:100, GFP 1:400, vimentin 1:100) 阅读提示:Materials and Methods, 2.4 Histological analysis and immunohistochemistry |