建立模型和样本收集
模拟扩大肝切除术,收集临床样本和小鼠组织以验证ATF6表达。
对小鼠实施80%肝切除(PH80),对患者进行边缘肝切除,收集肝组织和血液样本。
ATF6 Alleviates Endothelial Inflammation Following Extended Hepatectomy Through Inhibition of TRIM10/NF-κB Signaling.
包含小鼠扩大肝切除模型、ATF6基因敲除和LSECs特异性敲低、HUVECs细胞实验、转录组测序、ChIP和荧光素酶报告基因等,涉及体外和体内多层次功能验证和机制研究。
小鼠80%肝切除模型 ATF6基因敲除小鼠 LSECs特异性ATF6敲低小鼠 HUVECs细胞系
小鼠模型:C57BL/6J小鼠,80%肝切除(PH80),检测时间点0、1、6、12、24、72小时,每组N=3-5 ATF6敲除:CRISPR/Cas9系统,LSECs特异性敲低通过AAV-TIE1p-shRNA尾静脉注射(0.5×10^12 vg) HUVECs处理:衣霉素(10 mg/mL)、LPS(10 μg/mL)、Ceapin-A7(10 μM)、AA147(10 μM) 检测指标:血清TNF-α、IL-6、ALT、AST,Western blot、RT-qPCR、免疫组化、TUNEL、Ki-67
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟扩大肝切除术,收集临床样本和小鼠组织以验证ATF6表达。
对小鼠实施80%肝切除(PH80),对患者进行边缘肝切除,收集肝组织和血液样本。
确认ATF6在LSECs中的表达和激活。
使用转录组测序、Western blot、免疫组化和免疫荧光检测肝组织中ATF6及其下游因子。
评估ATF6缺失对术后炎症和肝损伤的影响。
比较野生型、ATF6基因敲除和LSECs特异性敲低小鼠在PH80后的血清炎症因子、肝酶、肝再生和凋亡情况。
探讨ATF6调控内皮炎症的分子机制。
在HUVECs中通过基因编辑或药理学方法调节ATF6,检测NF-κB通路和炎症因子表达。
验证ATF6是否直接抑制TRIM10转录。
使用荧光素酶报告基因和ChIP实验检测ATF6与TRIM10启动子的结合。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | C57BL/6J小鼠 | -- | -- |
| 细胞培养 | 人脐静脉内皮细胞 | Shanghai Cell Bank | -- |
| 药物处理 | 衣霉素 | Apexbio | B7417 |
| 脂多糖 | Sigma-Aldrich | L7770 | |
| Ceapin-A7 | -- | -- | |
| AA147 | -- | -- | |
| 转染 | jetPRIME转染系统 | PolyPlus | -- |
| 质粒构建 | pLVX-mNeonGreen-nTAF6质粒 | -- | -- |
| pCMV-dR8.2 dvpr质粒 | -- | -- | |
| pCMV-VSV-G质粒 | -- | -- | |
| 基因敲低 | ATF6 siRNA | GenePharma | -- |
| TRIM10 siRNA | GenePharma | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| mirVana mRNA分离试剂 | Ambion | -- | |
| 转录组测序 | Illumina HiSeq X Ten测序平台 | Illumina | -- |
| 免疫组化/免疫荧光 | ATF6抗体 | Abcam | ab122897 |
| Ki-67抗体 | Abcam | ab15580 | |
| CD31抗体 | Proteintech | 11265-1-AP | |
| CD68抗体 | Proteintech | 25747-1-AP | |
| CD4抗体 | Proteintech | 65104-1-AP | |
| TRIM10抗体 | Bioss | bs-9409R | |
| 凋亡检测 | 细胞凋亡检测试剂盒 | Servicebio | G1502 |
| Western blot | ATF4抗体 | Proteintech | 10835-1-AP |
| XBP1抗体 | Proteintech | 24868-1-AP | |
| GRP78抗体 | Wanleibio | WL03157 | |
| GRP94抗体 | Proteintech | 14700-1-AP | |
| ATF6抗体 | Proteintech | 24169-1-AP | |
| NF-κB p65抗体 | Bioss | bs-20160R | |
| 磷酸化NF-κB p65 (Ser536)抗体 | Bioss | bs-0982R | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| 山羊抗兔二抗 | Proteintech | SA00001-2 | |
| 山羊抗小鼠二抗 | Proteintech | SA00001-1 | |
| ECL Western印迹底物 | NCM Biotech | P10100 | |
| ChIP | ChIP检测试剂盒 | GZSCBIO | KT101-01 |
| ATF6抗体(ChIP级) | Santa Cruz | sc-166659 | |
| 抗兔IgG | GZSCBIO | KT101-01 | |
| 荧光素酶报告基因 | 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | E1910 |
| ELISA | TNF-α ELISA试剂盒 | Multiscience Biotech | EK282/4-96 |
| IL-6 ELISA试剂盒 | Multiscience Biotech | EK206/3-96 | |
| ALT ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng | C009-2-1 | |
| AST ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng | C010-2-1 | |
| RT-qPCR | SYBR Green预混液 | Applied Biosystems | -- |
| ABI Prism 7000型PCR仪 | Applied Biosystems | -- | |
| 统计分析 | SPSS 21.0软件 | IBM | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6J)、年龄(12周龄)、性别(雄性)、肝切除比例(80%)、时间点(0-72小时)、样本量(N=5) 阅读提示:Methods 2.2 Animals and Development of Partial Hepatectomy in Rodents |
| 细胞实验 | HUVECs来源(上海细胞库)、培养条件(37°C,5% CO2)、药物处理浓度(衣霉素10 mg/mL、LPS 10 μg/mL、Ceapin-A7 10 μM、AA147 10 μM) 阅读提示:Methods 2.3 Cell Lines and Gene Editing |
| 基因操作 | ATF6敲除方法(CRISPR/Cas9)、LSECs特异性敲低使用AAV-TIE1p-shRNA(0.5×10^12 vg)尾静脉注射 阅读提示:Methods 2.2 和 2.3 |
| Western blot | 抗体稀释比例(如ATF6 1:1000)、内参(GAPDH)、磷酸化蛋白定量(相对总蛋白) 阅读提示:Methods 2.7 Western Blot |
| ChIP-qPCR | 抗体(ATF6 ChIP级)、处理(LPS)、结合位点(-317/-302) 阅读提示:Methods 2.8 Chromatin Immunoprecipitation (ChIP) Assay |