建立日本血吸虫病肝纤维化小鼠模型
建立感染小鼠模型以模拟血吸虫病肝纤维化过程。
雄性 C57BL/6 小鼠经皮感染约 25±2 条日本血吸虫尾蚴,于感染后第 36、37 天灌胃给予吡喹酮,第 57 天处死。通过 H&E、Masson 染色及 α-SMA、Col1a1 表达验证纤维化。
CXCR6 recruits Th2 cells and promotes liver fibrosis in schistosomiasis japonica.
包含单细胞测序、体外 Th2 极化实验、CXCR6KO 小鼠体内模型及组织学、流式、Western blot、RT-PCR 等多层级验证。
C57BL/6 小鼠日本血吸虫感染肝纤维化模型 CXCR6KO 小鼠 小鼠原代 CD4+ T 细胞体外 Th2 极化模型
小鼠品系(C57BL/6、CXCR6KO)及周龄(6 周) 感染方式:经皮感染约 25±2 条尾蚴 吡喹酮处理:500 mg/kg,感染后第 36、37 天灌胃 取材时间:感染后第 57 天
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立感染小鼠模型以模拟血吸虫病肝纤维化过程。
雄性 C57BL/6 小鼠经皮感染约 25±2 条日本血吸虫尾蚴,于感染后第 36、37 天灌胃给予吡喹酮,第 57 天处死。通过 H&E、Masson 染色及 α-SMA、Col1a1 表达验证纤维化。
探索纤维化肝脏中免疫细胞异质性及细胞间配体-受体相互作用。
对感染小鼠和健康小鼠的肝细胞进行单细胞测序,使用 Seurat 聚类和 CellChat 分析趋化因子信号通路。
确定 CXCL16 和 CXCR6 在纤维化肝脏中的表达水平及主要细胞来源。
使用 Western blot 检测 CXCL16 蛋白水平;通过流式细胞术检测巨噬细胞中 CXCL16 表达,以及 T 细胞、NK 细胞等免疫细胞中 CXCR6 的表达和亚群分布。
在体内验证 CXCR6 缺失对血吸虫病肝纤维化的影响。
CXCR6KO 小鼠和野生型小鼠均感染血吸虫,通过 H&E 染色测量肉芽肿面积,Masson 染色和 COL1A1 免疫组化评估胶原沉积,Western blot 检测 α-SMA 蛋白水平,RT-PCR 检测 α-SMA 和 Col1a1 表达。
检验 CXCR6 缺失是否影响肝内 T 细胞亚群及 Th2 细胞数量和功能。
通过流式细胞术检测 CXCR6KO 和野生型小鼠肝脏中 CD4+ T 细胞、CD8+ T 细胞、NKT 细胞比例,以及 Th2 细胞(IL-13、IL-4、IL-5)比例和细胞因子水平。
验证 Th2 细胞分化过程中 CXCR6 的表达变化,以支持其介导 Th2 细胞趋化。
从小鼠脾脏分离初始 CD4+ T 细胞,用 anti-CD3/CD28 激活,在 IL-2 和 IL-4 存在条件下诱导 Th2 极化 72 小时,流式检测 CXCR6 表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 吡喹酮 | -- | -- |
| 肝细胞分离 | GentleMACS 组织解离器 | Miltenyi | -- |
| IV 型胶原酶 | -- | -- | |
| 脱氧核糖核酸酶 I | -- | -- | |
| RNA 提取 | SteadyPure 快速 RNA 提取试剂盒 | Accurate Biology | -- |
| RT-PCR | 通用 SYBR Green 预混液 | ABdonal | -- |
| Western blot | RIPA 裂解液 | -- | -- |
| 蛋白酶抑制剂 | -- | -- | |
| 抗 α-SMA 抗体 | Zenbio | 1:1000 | |
| 抗 CXCL16 抗体 | Proteintech | 1:500 | |
| HRP 标记二抗 | -- | -- | |
| 超敏化学发光试剂 | Zenbio | -- | |
| T 细胞分离培养 | 初始 CD4+ T 细胞分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | -- |
| RPMI 1640 培养基 | -- | -- | |
| T 细胞激活 | 抗 CD3ε 抗体 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 抗 CD28 抗体 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Th2 极化 | 重组小鼠 IL-2 | PeproTech | -- |
| 重组小鼠 IL-4 | PeproTech | -- | |
| 免疫组化 | 抗 COL1A1 抗体 | servicebio | -- |
| 流式细胞术 | 可固定活力染料 | BioLegend | -- |
| Fc 受体封闭试剂 | Miltenyi Biotec | -- | |
| CD45-Super bright 600 | BioLegend | -- | |
| CD11b-FITC | BioLegend | -- | |
| F4/80-APC-Cy7 | BioLegend | -- | |
| Ly6G-APC | BioLegend | -- | |
| CD3-FITC | BioLegend | -- | |
| CD4-PerCP-Cy5.5 | BioLegend | -- | |
| CD8-PE-Cy7 | BioLegend | -- | |
| NK1.1-BV421 | BioLegend | -- | |
| CD19-APC-Cy7 | BioLegend | -- | |
| CXCR6-PE | BioLegend | -- | |
| CXCR6-PE-Cy7 | BioLegend | -- | |
| 细胞内细胞因子染色 | 白细胞激活混合物 | BD Biosciences | -- |
| 流式细胞术 | IL-13-PE | eBioscience | -- |
| IL-5-BV421 | BioLegend | -- | |
| CXCL16-PE | Bioss | -- | |
| BD FACS Canto II 流式细胞仪 | BD | -- | |
| 数据分析 | Seurat 程序 | -- | -- |
| CellChat | -- | -- | |
| ImageJ 软件 | -- | -- | |
| FlowJo 软件 | -- | -- | |
| GraphPad Prism | GraphPad Software | -- | |
| R 4.0.2 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、周龄、感染尾蚴数量、吡喹酮剂量及给药时间、取材时间 阅读提示:Methods 中 Hepatic fibrosis mice model of schistosomiasis japonica 部分及 Figure 1A、5A |
| 肝细胞分离 | 胶原酶 IV 浓度、DNase I 浓度、消化时间、Percoll 浓度、离心条件 阅读提示:Methods 中 Liver dissociation and preparation 部分 |
| 单细胞测序分析 | 数据来源、Seurat 版本、差异基因筛选阈值、CellChat 分析参数 阅读提示:Methods 中 Single-cell RNA-seq quantifications and analysis 部分 |
| 体外 Th2 极化 | 初始 CD4+ T 细胞分离方法、anti-CD3/CD28 浓度、IL-2/IL-4 浓度、培养时间 阅读提示:Methods 中 CD4+ T-cell isolation and culture 部分及 Figure 6E |
| 流式细胞术 | 抗体克隆号及荧光素、死活染料、Fc 阻断剂、胞内染色流程 阅读提示:Methods 中 Flow cytometry 部分 |