纳米颗粒的制备与表征
合成并表征负载Pt和NSC的N-PG/NSC纳米颗粒,验证其结构和电动力性能。
通过双模板法制备DLMSN,在其孔内生长Pt纳米颗粒得到N-PG,再负载NSC得到N-PG/NSC;通过TEM、SEM、XPS、XRD、UV-Vis等手段表征,并通过亚甲基蓝降解实验评估电动力效应。
Light-cured millineedle platform delivers "nano-pomegranate" for combinatorial electrodynamic therapy and cuproptosis against oral carcinoma.
包含体外细胞实验、体内动物模型和免疫联合治疗等多个证据层级,并进行了功能验证和机制验证。
SCC-7小鼠口腔鳞状细胞癌细胞系 皮下SCC-7肿瘤小鼠模型 远隔SCC-7口腔肿瘤小鼠模型
N-PG/NSC+Cu2+微针组在电场下对SCC-7细胞的杀伤能力 N-PG/NSC+Cu2+处理后细胞内ROS生成水平 N-PG/NSC+Cu2+处理后LIAS表达和DLAT寡聚化状态 体内N-PG/NSC+Cu2+ MNs+E处理后的肿瘤生长抑制和免疫细胞浸润
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
合成并表征负载Pt和NSC的N-PG/NSC纳米颗粒,验证其结构和电动力性能。
通过双模板法制备DLMSN,在其孔内生长Pt纳米颗粒得到N-PG,再负载NSC得到N-PG/NSC;通过TEM、SEM、XPS、XRD、UV-Vis等手段表征,并通过亚甲基蓝降解实验评估电动力效应。
制备光固化微针并评估其机械性能和药物递送能力。
将HAMA、HA、N-PG/NSC和Cu2+混合,经UV固化制成微针;通过力学测试、溶解实验和瘤内注射实验评估其性能。
评估N-PG/NSC+Cu2+在电场下对SCC-7细胞的杀伤作用及其机制。
使用MTT法检测细胞活力,通过流式细胞术检测细胞凋亡,通过活死染色观察细胞状态,并检测ROS生成、细胞色素c释放、Bcl-2表达、LIAS表达和DLAT分布。
评估N-PG/NSC+Cu2+微针在电场下对皮下SCC-7肿瘤的抑制效果。
构建皮下SCC-7肿瘤模型,通过微针给药并进行电场处理,监测肿瘤体积和体重,通过H&E、TUNEL、免疫荧光等分析肿瘤组织。
验证N-PG/NSC+Cu2+治疗是否诱导ICD并激活免疫反应,以及与R848联合的效果。
通过免疫荧光和流式检测CRT和HSP70表达,使用Transwell系统评估BMDC迁移,通过流式和免疫组化检测肿瘤组织中的CD4+和CD8+ T细胞、Tregs、细胞因子和记忆T细胞。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 纳米颗粒合成 | 十六烷基三甲基溴化铵 | Heowns Biochem Technologies, LLC | -- |
| 地拉罗司 | Heowns Biochem Technologies, LLC | -- | |
| 正硅酸四乙酯 | Heowns Biochem Technologies, LLC | -- | |
| 3-氨丙基三乙氧基硅烷 | Heowns Biochem Technologies, LLC | -- | |
| 药物负载 | NSC319726 | Macklin Biochemical Co., Ltd. | -- |
| 细胞实验 | DCFH-DA | Meilun Biotechnology | -- |
| 钙黄绿素-AM | Meilun Biotechnology | -- | |
| 碘化丙啶 | Meilun Biotechnology | -- | |
| MTT | Solarbio Science & Technology | -- | |
| Annexin-V-FITC/PI凋亡试剂盒 | Solarbio Science & Technology | -- | |
| 免疫荧光 | 抗Cyt c抗体 | Bioss Biotechnology | bs-0013R |
| 抗DLAT抗体 | Bioss Biotechnology | bs-19695R | |
| 抗LIAS抗体 | Bioss Biotechnology | bs-1824R | |
| 抗HSP70抗体 | Bioss Biotechnology | bs-0126R | |
| 抗Ki67抗体 | Bioss Biotechnology | bs-2130R | |
| 抗CD4抗体 | Bioss Biotechnology | bs-0647R | |
| 抗CD8抗体 | Bioss Biotechnology | bs-10699R | |
| 流式细胞术 | Alexa Fluor 488标记的抗钙网蛋白抗体 | Bioss Biotechnology | bs-5913R-AF488 |
| 免疫荧光 | 抗CD11c抗体 | Proteintech | 17342-1-AP |
| Alexa Fluor 488标记的二抗 | Shandong Sparkjade Biotechnology | EF0008 | |
| 流式细胞术 | FITC标记的CD3抗体 | Thermo Fisher Scientific | 11-0032-82 |
| PE标记的CD4抗体 | Thermo Fisher Scientific | 12-0041-82 | |
| APC标记的CD8抗体 | Thermo Fisher Scientific | 17-0081-82 | |
| APC标记的Foxp3抗体 | Thermo Fisher Scientific | 17-5773-82 | |
| 微针制备 | 甲基丙烯酰化透明质酸 | Henan Micro-Nano BenTeng biotechnology Co., Ltd. | -- |
| 透明质酸 | Henan Micro-Nano BenTeng biotechnology Co., Ltd. | -- | |
| 硅胶微针模具 | Henan Micro-Nano BenTeng biotechnology Co., Ltd. | TM115 | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Solarbio Science & Technology | -- |
| 胎牛血清 | Viva Cell | -- | |
| 青霉素/链霉素 | 文中未明确说明 | -- | |
| 纳米颗粒表征 | Macy UV-1500 PC紫外可见分光光度计 | Macy | -- |
| Hitach 7500透射电子显微镜 | Hitachi | -- | |
| Zeiss sigma 500扫描电子显微镜 | Zeiss | -- | |
| JEM-2100F高分辨透射电子显微镜 | JEOL | -- | |
| Axis Ultra DLD X射线光电子能谱仪 | Kratos | -- | |
| Rigaku X射线衍射仪 | Rigaku | -- | |
| 细胞实验 | 酶标仪 | Molecular Devices | -- |
| 流式细胞仪 | Guava | -- | |
| 细胞成像 | 倒置荧光显微镜 | Olymbus | IX70 |
| 激光共聚焦显微镜 | Leica | SP8 | |
| 微针成像 | 荣耀70手机 | Honor | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外细胞实验 | SCC-7细胞系来源;细胞培养条件(DMEM、10% FBS、1%青霉素/链霉素、37°C、5% CO2);电场参数(0.1 Hz方波交流电,5 mA,5分钟);N-PG浓度50 μg/mL,NSC浓度5.1 μg/mL,Cu2+浓度2.5 μM。 阅读提示:见Materials and methods章节2.1、2.10、2.11。 |
| 纳米颗粒合成 | DLMSN合成条件(双模板法,温度、时间、试剂用量);N-PG合成条件(K2PtCl6浓度、NaBH4浓度、搅拌时间);NSC负载条件(NSC用量、搅拌时间)。 阅读提示:见Materials and methods章节2.2、2.3、2.4。 |
| 微针制备 | HAMA和HA浓度;N-PG/NSC和Cu2+浓度;LAP光引发剂用量;UV固化时间和波长;干燥条件。 阅读提示:见Materials and methods章节2.8。 |
| 体内抗肿瘤实验 | 小鼠品系和性别;SCC-7细胞接种数量;微针给药剂量(N-PG 3.84 μg、NSC 0.391 μg、Cu2+ 51.5 ng);电场参数(5 mA、0.1 Hz、8分钟)和频率;R848剂量和给药途径。 阅读提示:见Materials and methods章节2.20、2.21。 |
| 免疫分析 | 流式抗体克隆和荧光标记;细胞因子检测方法;组织处理条件。 阅读提示:见Materials and methods章节2.22。 |