通过诱导型E和M蛋白表达在稳定细胞系中生产SARS-CoV-2病毒样颗粒作为疫苗候选

Production of SARS-CoV-2 virus-like particles as a vaccine candidate in stable cell lines through inducible E and M protein expression.

作者信息Yu Liu, Zhian Chen, Li Yang, Chunmei Gan, Jieshi Tang, Zhaoyue Zheng, JingYa Ye, C Alexander Valencia, Hoi Yee Chow, Biao Dong
PMID40717071
发布时间2025-07-28
DOI10.1186/s12896-025-01016-x

实验完整度

包含细胞转染、稳定细胞系建立、VLPs生产与纯化、免疫电镜、小鼠免疫及ELISA检测等多个独立证据层级,并有功能验证。

主要模型

HEK293T细胞系 BALB/c小鼠 SARS-CoV-2 VLPs

重点核对

HEK293T细胞(ATCC CRL-3216) 诱饵质粒pTetcoM-coN-BSD和pTetcoE-coS-Puro 1 μg/mL doxycycline诱导 选择抗生素:15 μg/mL blasticidin和1 μg/mL puromycin 小鼠免疫剂量:3 μg VLP与铝佐剂

摘要

病毒样颗粒(VLPs)提供了潜在的高免疫原性/低成本疫苗平台。SARS-CoV-2 VLPs的生产是通过瞬时转染编码病毒结构蛋白的基因实现的,但成本高且难以放大。为了解决这个问题,稳定的VLPs生产细胞系是可取的。在本研究中,我们通过优化密码子的S、M、N和E基因的四个质粒瞬时转染HEK293T细胞,实现了高效的VLPs生产。此外,在小鼠中引发了刺突特异性IgG抗体,但在检测的时间点未检测到显著的中和活性。透射电子显微镜(TEM)显示VLPs直径约为120 nm。然而,E或M蛋白的过表达对细胞有毒性。通过构建两个质粒建立稳定细胞系,其中E和M的表达由诱导型Tet-on启动子控制,它们分别与S和N相邻。通过用两种抗生素嘌呤霉素和杀稻瘟菌素共同选择,建立了稳定表达SARS-CoV-2 VLPs的HEK293T细胞系。在接种了用铝佐剂配制的VLPs的小鼠中检测到针对S蛋白的特异性IgG抗体。我们的研究结果为大规模生产SARS-CoV-2 VLPs作为疫苗候选提供了有效方法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何建立稳定、可放大的哺乳动物细胞平台用于生产SARS-CoV-2 VLPs,同时避免结构蛋白过表达的细胞毒性?
核心机制
M和E蛋白的过表达诱导细胞毒性,通过Tet-on诱导系统严格控制其表达,可维持细胞活力并实现VLPs的稳定生产。
主要证据
M和E蛋白过表达导致HEK293T细胞死亡,而Tet-on系统在无doxycycline时抑制表达,有doxycycline时诱导表达并产生VLPs,TEM确认约120 nm的颗粒,小鼠免疫后检测到刺突特异性IgG。
研究意义
该平台可实现大规模、可控的VLPs生产,减少瞬时转染的变异性,为SARS-CoV-2及其变异株和未来疫情提供快速、灵活的疫苗候选。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

瞬时转染生产VLPs

验证密码子优化基因提高结构蛋白表达和VLPs产量,并评估其免疫原性。

HEK293T细胞共转染编码密码子优化的S、M、N、E的质粒,生产VLPs,纯化后进行TEM成像和小鼠免疫。

2

评估M和E蛋白过表达的细胞毒性

确定结构蛋白过表达对细胞活力的影响,为稳定细胞系设计提供依据。

单独转染编码密码子优化的S、M、N、E的质粒,在24和48小时通过台盼蓝染色检测细胞活力,并观察细胞形态。

3

构建Tet-on诱导质粒并验证可控表达

验证Tet-on系统能否调控M和E蛋白的表达,避免细胞毒性。

构建pTetcoM-BSD和pTetcoE-Puro质粒,转染HEK293T细胞,使用doxycycline诱导,通过Western blot检测蛋白表达,并检测细胞活力。

4

构建多基因共表达质粒

实现两个结构基因在同一质粒中的表达,简化转染和稳定细胞系构建。

构建pTetcoM-coN-BSD和pTetcoE-coS-Puro质粒,转染HEK293T细胞,验证在doxycycline诱导下四蛋白的表达和细胞活力。

5

建立稳定细胞系并验证VLPs生产

通过双重抗生素筛选获得稳定表达四结构蛋白的细胞克隆,并验证其生产VLPs的能力。

共转染两个多基因质粒,用puromycin和blasticidin双重筛选,分离单细胞克隆并扩增,诱导表达后纯化VLPs,进行Western blot和TEM分析。

6

小鼠免疫评价

评估稳定细胞系生产的VLPs的免疫原性。

BALB/c小鼠肌肉注射3 μg VLPs加铝佐剂,两次免疫,收集血清检测刺突特异性IgG抗体。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证细胞功能变化
验证分子表达变化

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Pan-Biotech--
青霉素-链霉素Solarbio--
胰蛋白酶-EDTAGibco--
Dulbecco's磷酸盐缓冲液Gibco--
台盼蓝溶液Sangon Biotech--
PolyJet转染试剂SignaGen Laboratories--
嘌呤霉素Sangon Biotech--
杀稻瘟菌素InvivoGen--
多西环素----
S蛋白标准品Novoprotein--
M蛋白标准品Novoprotein--
E蛋白标准品Novoprotein--
N蛋白标准品General Biosystems--
抗SARS-CoV-2刺突蛋白抗体Sino Biological--
抗核衣壳蛋白抗体Bioss--
抗膜蛋白抗体HuaBio--
抗SARS-CoV包膜蛋白抗体Abcepta--
抗兔IgGAbbkine--
抗小鼠IgGAbbkine--
化学发光试剂盒NCM biotech--
磷钨酸----
透射电子显微镜JEOL--
重组SARS-CoV-2 S三聚体抗原Novoprotein--
HRP标记的抗小鼠IgGAbbkine--
VSV假病毒----
Vero细胞----
Ensight微孔板读取仪PerkinElmer--
Countstar IC1000细胞计数仪ALIT Life Science--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养和转染
HEK293T细胞来源(ATCC CRL-3216),培养基和FBS,转染方法,质粒剂量
阅读提示:见Methods中的'Cell culture'和'Plasmid construction'
稳定细胞系建立
筛选抗生素浓度(1 μg/mL puromycin, 15 μg/mL blasticidin),转染后筛选时间
阅读提示:见Methods中的'Establishment of stable cell lines'
诱导表达
Doxycycline浓度(1 μg/mL),诱导时间(48小时)
阅读提示:见Methods中的'Establishment of stable cell lines'和'Production and purification of VLPs'
VLPs生产与纯化
细胞密度,培养体积,收集时间,离心和过滤条件
阅读提示:见Methods中的'Production and purification of VLPs'
小鼠免疫
小鼠品系、年龄、性别,免疫剂量,佐剂类型和剂量,免疫时间表
阅读提示:见Methods中的'Mouse immunization'