hucMSC-EVs的提取与鉴定
获取并验证hucMSC-EVs的纯度、大小和标志物。
通过超速离心从hucMSC培养上清中提取EVs,使用TEM、DLS、纳米流式细胞术和Western blot检测外泌体标志物。
Umbilical Cord Mesenchymal Stem Cell-Derived Extracellular Vesicles Attenuate Oxidative Damage via the miR-191-5p/DAPK1/AKT Axis in Type 2 Diabetes.
包含T2DM小鼠模型和INS-1细胞模型的体内外实验,并进行了功能验证(氧化损伤、凋亡)和机制验证(miR-191-5p/DAPK1/AKT轴)。
BALB/c小鼠T2DM模型(高脂饮食联合STZ诱导) INS-1细胞氧化损伤模型(STZ诱导) HepG2细胞胰岛素抵抗模型(葡萄糖胺诱导) 293T细胞(用于双荧光素酶报告实验)
T2DM小鼠模型:6周龄雄性BALB/c小鼠,高脂饮食(60%)喂养26天后,连续3天腹腔注射STZ(40 mg/kg)诱导,FBG > 11.0 mM hucMSC-EVs处理:2剂(20和30 μg),尾静脉注射,分5次(33、36、39、42、45天) INS-1细胞氧化损伤模型:STZ浓度15.15 mM处理24小时 miR-191-5p靶向验证:双荧光素酶报告实验(野生型和突变型DAPK1结合位点)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并验证hucMSC-EVs的纯度、大小和标志物。
通过超速离心从hucMSC培养上清中提取EVs,使用TEM、DLS、纳米流式细胞术和Western blot检测外泌体标志物。
评估hucMSC-EVs对T2DM小鼠血糖、胰岛素抵抗和氧化损伤的影响。
使用HFD和STZ诱导T2DM小鼠模型,尾静脉注射hucMSC-EVs或灌胃二甲双胍,检测血糖、OGTT、ITT、血清生化指标和组织病理。
验证hucMSC-EVs对胰岛素抵抗和β细胞氧化损伤的直接影响。
建立IR-HepG2模型和STZ诱导的INS-1氧化损伤模型,检测葡萄糖摄取、糖原合成、胰岛素分泌、氧化应激指标和凋亡。
探索hucMSC-EVs保护作用的分子机制。
通过Western blot检测PI3K/AKT和STAT通路磷酸化水平及Nrf2、SOD1、Bcl2表达。
验证miR-191-5p是否通过靶向DAPK1调控PI3K/AKT通路并影响氧化损伤。
miRNA过表达和抑制、siRNA敲低DAPK1、双荧光素酶报告实验、检测ROS、凋亡和抗氧化指标。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | MeilunBio | -- |
| RPMI 1640培养基 | MeilunBio | -- | |
| MEM培养基 | MeilunBio | -- | |
| 胎牛血清 | Hyclone | SH30406.05 | |
| DMEM培养基 | MeilunBio | -- | |
| RPMI 1640培养基 | MeilunBio | -- | |
| MEM培养基 | MeilunBio | -- | |
| 胎牛血清 | Hyclone | SH30406.05 | |
| 药物处理 | 盐酸氨基葡萄糖 | Aladdin | -- |
| 链脲佐菌素 | Macklin | -- | |
| 细胞培养 | 磷酸盐缓冲液 | -- | -- |
| 细胞外囊泡提取 | 0.22微米滤器 | Biofil | -- |
| Optima L-80XP超速离心机 | Beckman Coulter | -- | |
| 细胞外囊泡表征 | 流式系统 | Apogee | -- |
| HT7820透射电子显微镜 | Hitachi | -- | |
| 细胞外囊泡内化 | Dil细胞膜红色荧光探针 | Beyotime | -- |
| 动物实验 | 血糖仪 | Yuyue | -- |
| 血清生化检测 | 天冬氨酸转移酶检测试剂盒 | Njjcbio | -- |
| 丙氨酸转氨酶检测试剂盒 | Njjcbio | -- | |
| 高密度脂蛋白胆固醇检测试剂盒 | Njjcbio | -- | |
| 低密度脂蛋白胆固醇检测试剂盒 | Njjcbio | -- | |
| 总胆固醇检测试剂盒 | Njjcbio | -- | |
| 甘油三酯检测试剂盒 | Njjcbio | -- | |
| 氧化应激检测 | 丙二醛检测试剂盒 | Njjcbio | -- |
| 过氧化氢酶检测试剂盒 | Njjcbio | -- | |
| 超氧化物歧化酶检测试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 谷胱甘肽过氧化物酶检测试剂盒 | Njjcbio | -- | |
| 活性氧检测 | 活性氧检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 细胞活力检测 | 活/死细胞染色试剂盒 | MeilunBio | -- |
| 糖原合成检测 | 糖原含量检测试剂盒 | Solarbio | -- |
| Eclipse Ni-U显微镜 | Nikon | -- | |
| 细胞凋亡检测 | Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 流式细胞仪 | Beckman | -- | |
| 胰岛素分泌检测 | ELISA试剂盒 | Mkbio | -- |
| 双荧光素酶报告实验 | 双荧光素酶检测试剂盒 | UElandy | -- |
| 转染试剂 | UElandy | -- | |
| 基因敲低和过表达 | LipoRNAi转染试剂 | Beyotime | -- |
| Western blotting | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 增强化学发光试剂 | Biosharp | -- | |
| TSG101抗体 | Zenbio | -- | |
| CD9抗体 | Zenbio | -- | |
| CD81抗体 | Zenbio | -- | |
| DAPK1抗体 | Zenbio | -- | |
| p-PI3K抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| PI3K抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| p-AKT抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| AKT抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| p-STAT抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| STAT抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| Nrf2抗体 | ABclonal | -- | |
| SOD1抗体 | ABclonal | -- | |
| Bcl2抗体 | Bioss | -- | |
| β-actin抗体 | Yeasen | -- | |
| HRP标记的山羊抗兔或山羊抗小鼠二抗 | Bioss | -- | |
| RNA提取 | SPARKeasy超纯总RNA提取试剂盒 | Sparkjade | -- |
| 逆转录 | SPARKscript II第一链cDNA合成试剂盒 | Sparkjade | -- |
| qRT-PCR | 2× SYBR Green qPCR预混液 | Sparkjade | -- |
| ABI 7500实时荧光定量PCR仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 统计分析 | GraphPad Prism 10 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| hucMSC-EVs提取 | 超速离心参数(100,000g,90分钟) 阅读提示:Methods: Exosome purification and characterization |
| T2DM动物模型 | 小鼠品系(BALB/c)、性别(雄性)、年龄(6周龄)、高脂饮食比例(60%)、STZ剂量(40 mg/kg)和给药方式(腹腔注射) 阅读提示:Methods: Induction of the T2DM animal model |
| hucMSC-EVs治疗 | 给药剂量(20和30 μg)、途径(尾静脉注射)、时间点(第5、8、11、14、17天) 阅读提示:Methods: Groups and treatment |
| INS-1氧化损伤模型 | STZ浓度(15.15 mM)和处理时间(24小时) 阅读提示:Methods: Cell culture |
| miR-191-5p靶向验证 | 双荧光素酶报告实验的野生型和突变型载体构建、miR-191-5p mimic和NC浓度 阅读提示:Results: HucMSC-EV miR-191-5p mediates cellular oxidative damage and apoptosis and directly targets DAPK1 |