亮氨酰-tRNA合成酶通过mTORC1-LAT1通路调控奶牛酪蛋白合成

Leucyl-tRNA synthetase regulates casein synthesis in dairy cows via the mTORC1-LAT1 pathway.

作者信息Yongding Ke, Ximeng Du, Binglan Chen, Xi Chen, Chengchuang Song, Xingtang Fang, Yanhong Wang, Chunlei Zhang
PMID40045634
发布时间2025-06
DOI10.5713/ab.24.0711

实验完整度

包含体外细胞模型(MAC-T、HEK293T),过表达和敲低稳定细胞系验证,以及CCK-8、EdU、Western blot、qRT-PCR、免疫荧光等多项功能验证和机制验证。

主要模型

牛乳腺上皮细胞MAC-T HEK293T细胞(用于病毒包装)

重点核对

LARS过表达和敲低稳定细胞系的构建及验证 亮氨酸饥饿和刺激条件(饥饿4小时,刺激0.9 mM亮氨酸1小时) 雷帕霉素(mTORC1抑制剂)处理浓度和时间 BCH(LAT1抑制剂)处理浓度和时间 BC-LI-0186(LARS亮氨酸感知抑制剂)处理条件

摘要

目的:亮氨酰-tRNA合成酶(LARS)是哺乳动物中必需的多功能酶,在维持细胞蛋白质和氨基酸平衡中起关键作用。它促进tRNA氨酰化,启动细胞内蛋白质合成,并作为细胞内亮氨酸传感器。传感器功能使LARS能够通过Rag GTPase结合激活mTORC1通路,在蛋白质合成调控中发挥关键作用。尽管其重要性,这些功能的确切机制尚未完全阐明。本研究探讨LARS及其在调节乳蛋白合成中的作用。方法:本研究利用稳定的牛乳腺上皮细胞系、LARS过表达和LARS敲低,并通过Cell Counting Kit-8、Click-iT EdU、Western blot、实时荧光定量聚合酶链反应和免疫共聚焦技术进行验证。结果:我们的研究结果表明,牛乳腺上皮细胞(MAC-T)中LARS过表达增强细胞增殖并提高细胞内亮氨酸水平,从而通过mTORC1通路增加酪蛋白产生。LARS通过机械性靶标雷帕霉素复合物1、L型氨基酸转运体1(mTORC1-LAT1)通路增强酪蛋白表达。这种相互作用得到LAT1的正反馈机制支持,增强mTORC1通路的激活。此外,LARS过表达导致LAT1表达增加、LAT1稳定性提高以及其膜定位增强。我们的研究表明,LARS对LAT1表达的增强依赖于其在翻译和亮氨酸感知中的双重作用,而其影响LAT1定位则完全依赖于其亮氨酸感知功能。结论:LARS通过检测细胞内亮氨酸水平,经mTORC1通路调节LAT1表达和膜定位,从而影响酪蛋白合成。这些见解为提高乳蛋白产量奠定了理论基础,并为改善乳制品质量提供了新策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
LARS是否通过mTORC1-LAT1通路调控奶牛乳腺上皮细胞中酪蛋白合成?
核心机制
LARS作为细胞内亮氨酸传感器,通过mTORC1通路调节LAT1表达和膜定位,LAT1再通过正反馈激活mTORC1,最终促进酪蛋白合成。
主要证据
在MAC-T细胞中,LARS过表达增强酪蛋白表达和S6K磷酸化,敲低则降低;雷帕霉素抑制mTORC1后减弱LARS效应;BCH抑制LAT1后减弱LARS效应;BC-LI-0186抑制LARS传感器功能后影响LAT1表达和定位。
研究意义
揭示LARS调控乳蛋白合成的新机制,为提高乳蛋白产量和改善乳制品质量提供理论依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建LARS过表达和敲低稳定细胞系

研究LARS在MAC-T细胞中的功能

利用慢病毒包装技术,在HEK293T细胞中包装LARS过表达和敲低病毒,感染MAC-T细胞,经嘌呤霉素筛选获得稳定细胞系。

2

检测LARS对MAC-T细胞增殖的影响

探究LARS是否影响细胞增殖

使用CCK-8和EdU实验分别检测细胞活力和增殖。

3

检测LARS对酪蛋白表达的影响

探究LARS是否调控酪蛋白合成

使用qRT-PCR和Western blot检测α-酪蛋白和β-酪蛋白的mRNA和蛋白水平。

4

验证LARS通过mTORC1通路调控酪蛋白合成

确定mTORC1通路是否介导LARS的作用

在亮氨酸充足或饥饿条件下,用雷帕霉素抑制mTORC1,检测酪蛋白表达和S6K磷酸化。

5

验证LARS通过mTORC1-LAT1通路调控酪蛋白合成

确定LAT1在LARS调控酪蛋白中的作用

使用LAT1抑制剂BCH处理,检测酪蛋白表达和S6K磷酸化。

6

探究LARS对LAT1表达和稳定性的影响

确定LARS如何调节LAT1表达

通过qRT-PCR和Western blot检测LAT1 mRNA和蛋白水平,使用放线菌酮处理检测LAT1蛋白降解速率。

7

探究LARS对LAT1膜定位的影响

确定LARS是否调节LAT1亚细胞分布

通过Western blot检测膜组分中LAT1水平,并使用免疫荧光共聚焦检测LAT1定位。

8

区分LARS的翻译功能和亮氨酸感知功能

确定LARS调控LAT1的机制依赖其哪种功能

使用BC-LI-0186抑制LARS的亮氨酸感知功能,检测LAT1表达和定位。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证细胞功能变化
验证分子表达变化
验证免疫效应
验证机制链路
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
高糖DMEM培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素溶液----
胰岛素----
氢化可的松----
催乳素----
聚乙烯亚胺转染试剂----
聚凝胺----
嘌呤霉素----
细胞计数试剂盒-8----
EdU试剂----
荧光显微镜OLYMPUS U-RFL-T--
Infinite F50 Plus酶标仪TECAN--
Trizol试剂----
Evo M-MLV逆转录试剂盒Akora Bio--
SYBR Green Pro Taq HS预混qPCR试剂盒Eric Biotechnology--
ABI Step One Plus实时PCR仪ABI--
RIPA蛋白提取试剂----
BCA蛋白浓度测定试剂盒----
PVDF膜----
β-肌动蛋白抗体Proteintech66009-1-Ig
LARS抗体BioworldBS72681
LAT1抗体Cell Signaling Technology5347S
4F2hc抗体Proteintech15193-1-AP
ATP1A1抗体Proteintech14418-1-AP
mTOR抗体Proteintech66888-1-Ig
S6K抗体Proteintech14485-1-AP
p-S6K抗体Proteintech28735-1-AP
α-酪蛋白抗体HUABIOER1905-45
β-酪蛋白抗体Biossbs-23551R
辣根过氧化物酶标记的二抗----
增强化学发光试剂----
e-BLOT Touch成像仪e-BLOT--
coralite594标记二抗Proteintech--
DAPI溶液----
激光共聚焦显微镜Yohogawa CV1000--
亮氨酸----
雷帕霉素----
BCH----
BC-LI-0186----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与诱导
MAC-T细胞培养条件;泌乳诱导培养基成分(胰岛素、氢化可的松、催乳素浓度);诱导时间
阅读提示:Methods: Cell lines and storage conditions; Cell culture and transfection
LARS过表达和敲低
慢病毒包装和感染效率;嘌呤霉素筛选浓度;LARS过表达和敲低效率验证
阅读提示:Methods: Construction of stable cell lines; Figure 1C-D
细胞增殖检测
CCK-8和EdU实验的具体条件和处理时间
阅读提示:Methods: Cell counting kit-8 assay; 5-Ethynyl 2′-deoxyuridine assay
酪蛋白表达检测
诱导条件;qRT-PCR引物序列;Western blot抗体稀释比例
阅读提示:Methods: Quantitative real-time polymerase chain reaction; Western blot assay; Table 1
亮氨酸饥饿与刺激
亮氨酸饥饿时间和刺激时间;亮氨酸浓度
阅读提示:Methods: Leucine starvation and stimulation of cells; Figure 2D-E, Figure 5A-B
mTORC1抑制
雷帕霉素浓度和处理时间
阅读提示:Methods: 未明确,见图2F
LAT1抑制
BCH浓度和处理时间
阅读提示:Methods: 未明确,见图3B
LARS亮氨酸感知功能抑制
BC-LI-0186浓度和处理时间
阅读提示:Methods: 未明确,见图5C-D