病毒繁殖和滴定
获得高滴度的TJ2016病毒用于动物接种。
在BHK-21细胞中连续传代TJ2016六次获得TJ2016-F6,通过微量感染性试验测定病毒滴度。
Pathogenicity analysis of a Chinese Genogroup II Akabane virus strain (TJ2016) in mouse models.
包含体外细胞培养与病毒滴定、体内小鼠模型(不同品系、年龄和途径)以及组织病理学和免疫组化验证,证据层级独立。
7日龄昆明小鼠 8周龄昆明小鼠 7日龄Balb/c小鼠 8周龄Balb/c小鼠
接种途径:脑内(IC)和腹腔(IP) 小鼠品系和年龄:昆明小鼠和Balb/c小鼠,7日龄和8周龄 接种剂量:10^4至10^6 TCID50/只 致死率和存活时间:IC途径75-100%死亡率,IP途径仅乳鼠致死 病毒组织嗜性:仅脑组织阳性,且神经元中检测到抗原
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得高滴度的TJ2016病毒用于动物接种。
在BHK-21细胞中连续传代TJ2016六次获得TJ2016-F6,通过微量感染性试验测定病毒滴度。
评估不同接种途径对不同品系和年龄小鼠的致病性。
对7日龄和8周龄的昆明小鼠和Balb/c小鼠,通过IC、IP、SC和IM途径接种TJ2016,观察存活率、临床症状和体重变化。
分析TJ2016在感染小鼠体内的组织嗜性。
收集脑、心、肝、脾、肺和肾,通过RT-PCR检测AKAV N基因。
定量脑组织中感染性病毒颗粒。
将脑组织匀浆,进行微量感染性试验和免疫荧光分析,计算病毒滴度。
评估脑部病理变化和病毒抗原分布。
对脑组织进行HE染色和IHC染色,评分镜下病变和抗原阳性细胞。
确定TJ2016与其他AKAV毒株的遗传关系。
下载S和M段CDS序列,比对并构建最大似然法系统发育树。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 病毒检测 | RNA快速提取试剂盒 | TianGen Biotech | -- |
| RT-PCR | HiScript II一步法RT-PCR试剂盒 | Vazyme | -- |
| 免疫荧光 | FITC标记的山羊抗小鼠IgG | SolarbioLife Sciences | -- |
| HRP偶联的山羊抗小鼠IgG | SolarbioLife Sciences | -- | |
| EVOS FL细胞荧光成像系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 组织病理 | 山羊抗兔IgG H&L(HRP聚合物) | Bioss | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism软件 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 病毒制备 | BHK-21细胞培养条件、病毒传代次数、TCID50测定方法 阅读提示:Materials and methods, Cells, antibodies, and virus |
| 动物接种 | 小鼠品系、年龄、性别、接种途径、接种剂量、每组数量 阅读提示:Table 1, Table 3, Animal trials |
| 临床症状评估 | 临床评分系统(GCS和NSS)的详细标准、观察时间点 阅读提示:Table 2, Animal trials |
| 病毒分布检测 | RT-PCR引物序列、退火温度、循环数、阳性/阴性对照 阅读提示:RNA extraction and RT-PCR amplification |
| 病毒载量测定 | 脑组织匀浆方法、离心参数、微量感染性试验步骤、TCID50计算(Reed-Muench) 阅读提示:Virus titration and immunofluorescence assay (IFA) |
| 组织病理学和IHC | 固定液和固定时间、石蜡包埋、HE染色流程、IHC一抗稀释度、评分标准 阅读提示:Histopathology examination, Table 5 |