hiPSCs培养与鉴定
验证hiPSCs的多能性和自我更新特性
使用无饲养层方法培养hiPSCs,通过免疫荧光检测OCT4、SOX2、NANOG的表达
MiR-122-5p inhibits the epithelial mesenchymal transition of liver cancer cells by inducing hiPSCs to differentiate into hepatocyte-like cells.
包含细胞培养、免疫荧光、流式、RT-PCR、Western blot、CCK8、Transwell、划痕、凋亡检测等体外实验,但缺乏动物模型和临床样本验证。
hiPSCs细胞系 HepG2肝癌细胞系
hiPSCs来源:Ubigene Biotechnology Co., Ltd. HepG2细胞来源:Procell Life Science & Technology Co., Ltd. 共培养体系中,hiPSCs接种于Transwell上层(1×10^6细胞/孔),HepG2细胞接种于6孔板下层(1×10^6细胞/孔) 转染剂量:5 μL mimic/inhibitor, 120 μL riboFECT CP Buffer, 12 μL riboFECT CP Reagent,共孵育48小时 EMT标志物检测:E-Cadherin和N-Cadherin的mRNA和蛋白表达水平
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证hiPSCs的多能性和自我更新特性
使用无饲养层方法培养hiPSCs,通过免疫荧光检测OCT4、SOX2、NANOG的表达
探究miR-122-5p对hiPSCs增殖和肝细胞样分化的影响
用miR-122-5p mimic或inhibitor转染hiPSCs,通过CCK8、流式、免疫荧光和RT-PCR检测增殖和肝细胞标志物表达
评估miR-122-5p修饰的hiPSCs对肝癌细胞恶性表型的影响
将hiPSCs和HepG2细胞共培养,通过CCK8、Transwell、划痕和流式凋亡检测评估HepG2细胞的增殖、侵袭、迁移和凋亡
验证miR-122-5p修饰的hiPSCs对HepG2细胞EMT的影响
通过RT-PCR、Western blot和免疫荧光检测E-Cadherin和N-Cadherin表达
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | EZ stemTM干细胞完全培养基 | Ubigene Biotechnology | -- |
| EZ干细胞消化液 | Ubigene Biotechnology | -- | |
| MEM(含NEAA)培养基 | Pricella | -- | |
| 胎牛血清 | Excell Bio | -- | |
| 链霉素 | Beyotime | -- | |
| 青霉素 | Beyotime | -- | |
| 0.25%胰蛋白酶 | Gibco | -- | |
| 免疫荧光 | Triton X100 | Beyotime | -- |
| 山羊血清 | Bioss | -- | |
| OCT4抗体 | Abcam | ab181557 | |
| SOX2抗体 | Abcam | ab92494 | |
| NANOG抗体 | Abcam | ab109250 | |
| ALB抗体 | Abcam | ab19194 | |
| ASGPR抗体 | Abcam | ab254262 | |
| E-cadherin抗体 | Abcam | ab1416 | |
| N-cadherin抗体 | Abcam | ab18203 | |
| Alexa Fluor® 488标记的山羊抗小鼠IgG | Abcam | ab150113 | |
| Alexa Fluor® 594标记的山羊抗兔IgG | Abcam | ab150080 | |
| DAPI | -- | -- | |
| EVOS M5000荧光显微镜 | Thermo Fisher | -- | |
| 转染 | riboFECT CP缓冲液 | Ribobio | -- |
| riboFECT CP试剂 | Ribobio | -- | |
| CCK8检测 | CCK8试剂盒 | Bioss | -- |
| RT-6000酶标仪 | Rayto | -- | |
| 流式细胞术 | ASGPR抗体 | Abcam | ab254262 |
| 山羊抗兔IgG二抗 | Abcam | ab6717 | |
| 流式细胞仪(BD FACSCanto II) | BD Biosciences | -- | |
| RT-PCR | 细胞/组织总RNA提取试剂盒V2 | Vazyme | -- |
| Nano 600 | Jiapeng | -- | |
| HiScript lll 第一链cDNA合成试剂盒 | Vazyme | -- | |
| Taq Pro Universal SYBR qPCR预混液 | Vazyme | -- | |
| CFX96 Touch实时荧光定量PCR仪 | Bio-Rad | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | NCM Biotech | -- | |
| 聚偏二氟乙烯膜 | Millipore | -- | |
| 抗E-Cadherin抗体 | Abcam | ab40772 | |
| 抗N-Cadherin抗体 | Abcam | ab18203 | |
| 抗GAPDH抗体 | Abcam | ab9485 | |
| 山羊抗兔IgG H&L/HRP二抗 | Bioss | bs-0295G-HRP | |
| 化学发光成像系统 | Tanon | -- | |
| Transwell检测 | Transwell小室 | Corning | -- |
| 基质胶 | -- | -- | |
| 结晶紫染色液 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 凋亡检测 | AnnexinV-FITC试剂盒 | Beyotime | -- |
| 碘化丙啶 | -- | -- | |
| Attune NxT流式细胞仪 | Invitrogen | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | hiPSCs和HepG2细胞的来源、培养基组成(如FBS浓度、抗生素浓度)、培养条件(温度、CO2浓度)、传代比例和消化时间 阅读提示:Materials and Methods: Cell culture |
| 转染 | 转染试剂(riboFECT CP Buffer和Reagent)用量、miR-122-5p mimic/inhibitor及对照的浓度和孵育时间(48小时) 阅读提示:Materials and Methods: Cell transfection |
| 共培养 | 共培养体系中hiPSCs和HepG2细胞的接种密度、Transwell规格、上层和下层培养基类型 阅读提示:Materials and Methods: Cell culture |
| EMT检测 | E-Cadherin和N-Cadherin的抗体稀释比例、RT-PCR引物序列、Western blot上样量(20 μg) 阅读提示:Materials and Methods: RT-PCR, Western blot |
| 功能检测 | CCK8检测时的细胞密度和处理时间、Transwell实验的细胞浓度(1-5×10^5 cells/mL)、划痕实验的细胞密度(1×10^6/well)和观察时间(24小时)、凋亡检测的试剂盒和染色步骤 阅读提示:Materials and Methods: CCK8, Transwell, Wound healing, Detection of cell apoptosis |