miR-122-5p通过诱导hiPSCs分化为肝细胞样细胞抑制肝癌细胞的上皮间质转化

MiR-122-5p inhibits the epithelial mesenchymal transition of liver cancer cells by inducing hiPSCs to differentiate into hepatocyte-like cells.

作者信息Qianzhe Xing, Yanjie Xu, Ying Luo, Chenglong Li, Peng Wang, Bin Kang, Chengjun Lu
PMID40336362
发布时间2025-04-07
DOI10.4081/ejh.2025.4190

实验完整度

包含细胞培养、免疫荧光、流式、RT-PCR、Western blot、CCK8、Transwell、划痕、凋亡检测等体外实验,但缺乏动物模型和临床样本验证。

主要模型

hiPSCs细胞系 HepG2肝癌细胞系

重点核对

hiPSCs来源:Ubigene Biotechnology Co., Ltd. HepG2细胞来源:Procell Life Science & Technology Co., Ltd. 共培养体系中,hiPSCs接种于Transwell上层(1×10^6细胞/孔),HepG2细胞接种于6孔板下层(1×10^6细胞/孔) 转染剂量:5 μL mimic/inhibitor, 120 μL riboFECT CP Buffer, 12 μL riboFECT CP Reagent,共孵育48小时 EMT标志物检测:E-Cadherin和N-Cadherin的mRNA和蛋白表达水平

摘要

上皮间质转化(EMT)与肝癌预后、侵袭性和攻击性密切相关。一种有前景的肝癌治疗方法是细胞治疗,即刺激干细胞发育为功能性肝细胞。本研究旨在探讨miR-122-5p对人诱导多能干细胞(hiPSCs)分化为肝细胞样细胞的影响,及其对肝癌细胞EMT过程的作用。在hiPSCs中过表达或沉默miR-122-5p,分析肝特异性标志物(包括AFP、ALB和ASGPR)的表达,以确认肝细胞样分化。同时使用与HepG2肝癌细胞的共培养体系,评估过表达miR-122-5p的hiPSCs或沉默miR-122-5p的hiPSCs对EMT标志物表达的影响。结果显示,hiPSCs中miR-122-5p的过表达诱导了肝细胞样特性,表现为AFP、ALB和ASGPR水平升高。然而,敲低miR-122-5p则产生相反效果。在共培养体系中,过表达miR-122-5p的hiPSCs抑制了HepG2细胞的EMT过程,导致间充质标志物水平升高和上皮标志物水平降低。总之,miR-122-5p促进hiPSCs分化为肝细胞样细胞,并抑制肝癌细胞的EMT过程。靶向miR-122-5p可能通过细胞治疗预防肝癌进展的新方法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
miR-122-5p是否通过诱导hiPSCs分化为肝细胞样细胞来抑制肝癌细胞的上皮间质转化过程?
核心机制
miR-122-5p通过促进hiPSCs向肝细胞样细胞分化,进而抑制HepG2细胞的上皮间质转化,表现为E-Cadherin上调、N-Cadherin下调
主要证据
实验中,在hiPSCs中过表达miR-122-5p后,肝脏标志物(AFP, ALB, ASGPR)表达增加,而敲低则降低;与HepG2共培养时,过表达miR-122-5p的hiPSCs增加了上皮标志物E-Cadherin表达,降低了间充质标志物N-Cadherin表达,同时抑制了HepG2细胞的增殖、迁移、侵袭,并诱导凋亡
研究意义
miR-122-5p处理的hiPSCs可能作为治疗终末期肝衰竭的新型细胞来源,为肝癌的靶向诊断和治疗提供了重要的理论基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

hiPSCs培养与鉴定

验证hiPSCs的多能性和自我更新特性

使用无饲养层方法培养hiPSCs,通过免疫荧光检测OCT4、SOX2、NANOG的表达

2

miR-122-5p过表达或敲低及hiPSCs分化检测

探究miR-122-5p对hiPSCs增殖和肝细胞样分化的影响

用miR-122-5p mimic或inhibitor转染hiPSCs,通过CCK8、流式、免疫荧光和RT-PCR检测增殖和肝细胞标志物表达

3

与HepG2共培养及恶性表型分析

评估miR-122-5p修饰的hiPSCs对肝癌细胞恶性表型的影响

将hiPSCs和HepG2细胞共培养,通过CCK8、Transwell、划痕和流式凋亡检测评估HepG2细胞的增殖、侵袭、迁移和凋亡

4

EMT标志物检测

验证miR-122-5p修饰的hiPSCs对HepG2细胞EMT的影响

通过RT-PCR、Western blot和免疫荧光检测E-Cadherin和N-Cadherin表达

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
EZ stemTM干细胞完全培养基Ubigene Biotechnology--
EZ干细胞消化液Ubigene Biotechnology--
MEM(含NEAA)培养基Pricella--
胎牛血清Excell Bio--
链霉素Beyotime--
青霉素Beyotime--
0.25%胰蛋白酶Gibco--
Triton X100Beyotime--
山羊血清Bioss--
OCT4抗体Abcamab181557
SOX2抗体Abcamab92494
NANOG抗体Abcamab109250
ALB抗体Abcamab19194
ASGPR抗体Abcamab254262
E-cadherin抗体Abcamab1416
N-cadherin抗体Abcamab18203
Alexa Fluor® 488标记的山羊抗小鼠IgGAbcamab150113
Alexa Fluor® 594标记的山羊抗兔IgGAbcamab150080
DAPI----
EVOS M5000荧光显微镜Thermo Fisher--
riboFECT CP缓冲液Ribobio--
riboFECT CP试剂Ribobio--
CCK8试剂盒Bioss--
RT-6000酶标仪Rayto--
ASGPR抗体Abcamab254262
山羊抗兔IgG二抗Abcamab6717
流式细胞仪(BD FACSCanto II)BD Biosciences--
细胞/组织总RNA提取试剂盒V2Vazyme--
Nano 600Jiapeng--
HiScript lll 第一链cDNA合成试剂盒Vazyme--
Taq Pro Universal SYBR qPCR预混液Vazyme--
CFX96 Touch实时荧光定量PCR仪Bio-Rad--
RIPA裂解液Beyotime--
BCA蛋白定量试剂盒NCM Biotech--
聚偏二氟乙烯膜Millipore--
抗E-Cadherin抗体Abcamab40772
抗N-Cadherin抗体Abcamab18203
抗GAPDH抗体Abcamab9485
山羊抗兔IgG H&L/HRP二抗Biossbs-0295G-HRP
化学发光成像系统Tanon--
Transwell小室Corning--
基质胶----
结晶紫染色液Sigma-Aldrich--
AnnexinV-FITC试剂盒Beyotime--
碘化丙啶----
Attune NxT流式细胞仪Invitrogen--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
hiPSCs和HepG2细胞的来源、培养基组成(如FBS浓度、抗生素浓度)、培养条件(温度、CO2浓度)、传代比例和消化时间
阅读提示:Materials and Methods: Cell culture
转染
转染试剂(riboFECT CP Buffer和Reagent)用量、miR-122-5p mimic/inhibitor及对照的浓度和孵育时间(48小时)
阅读提示:Materials and Methods: Cell transfection
共培养
共培养体系中hiPSCs和HepG2细胞的接种密度、Transwell规格、上层和下层培养基类型
阅读提示:Materials and Methods: Cell culture
EMT检测
E-Cadherin和N-Cadherin的抗体稀释比例、RT-PCR引物序列、Western blot上样量(20 μg)
阅读提示:Materials and Methods: RT-PCR, Western blot
功能检测
CCK8检测时的细胞密度和处理时间、Transwell实验的细胞浓度(1-5×10^5 cells/mL)、划痕实验的细胞密度(1×10^6/well)和观察时间(24小时)、凋亡检测的试剂盒和染色步骤
阅读提示:Materials and Methods: CCK8, Transwell, Wound healing, Detection of cell apoptosis