人脐带间充质干细胞软骨下注射通过抑制成骨细胞凋亡和TGF-β活性改善膝骨关节炎

Subchondral injection of human umbilical cord mesenchymal stem cells ameliorates knee osteoarthritis by inhibiting osteoblast apoptosis and TGF-beta activity.

作者信息Congzi Wu, HuiHui Xu, Zhen Wu, Haipeng Huang, Qinwen Ge, Jianbo Xu, Jiali Chen, Pinger Wang, Wenhua Yuan, Hongting Jin, Peijian Tong
PMID40346614
发布时间2025-05-09
DOI10.1186/s13287-025-04366-7

实验完整度

高

包含ACLT大鼠模型和TNFα诱导的MC3T3-E1细胞体外模型两个独立证据层级,并进行了功能验证(凋亡、成骨分化)和机制验证(TGF-β/pSmad2信号通路)。

主要模型

ACLT诱导的OA大鼠模型 TNFα诱导的MC3T3-E1成骨细胞模型 人脐带间充质干细胞(UCMSCs)

重点核对

UCMSCs注射剂量:5×10^5细胞/50 μL生理盐水,每周一次,共3周 ACLT手术模型:雄性Sprague-Dawley大鼠,10周龄,体重300±20 g 分组:Sham组(n=6)、Control-IA组(n=8)、Control-SC组(n=8)、UCMSC-IA组(n=9)、UCMSC-SC组(n=9) TNFα浓度:10 ng/mL用于体外诱导MC3T3-E1细胞炎症微环境 µCT扫描参数:11 μm像素分辨率,65 kV电压,80 μA电流

摘要

背景:骨关节炎(OA)是一种由多种病理机制引起的常见退行性疾病,其中软骨下骨功能障碍起着重要作用。近年来,软骨下(SC)注射生物制剂越来越受到关注,尽管间充质干细胞(MSCs)的主要给药方式是关节内(IA)注射。本研究探讨了SC注射人脐带间充质干细胞(UCMSCs)对OA的作用及其可能的治疗机制,并与IA注射进行比较。方法:对前交叉韧带横断(ACLT)的雄性Sprague-Dawley大鼠进行SC或IA注射生理盐水或UCMSCs。连续注射每周一次,持续三周,再停药四周,然后进行放射学扫描、组织病理学、免疫组织化学和末端脱氧核苷酸转移酶(TdT)介导的dUTP缺口末端标记(TUNEL)染色。在TNFα诱导的MC3T3-E1细胞中采用细胞计数试剂盒-8(CCK-8)测定、碱性磷酸酶(ALP)、茜素红染色(ARS)、TUNEL、流式细胞术、实时定量聚合酶链反应(qRT-PCR)和蛋白质印迹法来阐明确切的发病机制。结果:IA和SC注射UCMSCs均保留了软骨、滑膜和软骨下骨参数,如骨小梁体积分数(BV/TV)。SC注射独特地改善了骨小梁分离度(Tb.Sp)和骨小梁数量(Tb.N)。SC和IA注射UCMSCs在促进成骨细胞骨形成和减弱软骨下骨异常血管生成方面显示出等效的功效。此外,我们证明成骨细胞凋亡和Smad2依赖性TGF-β(TGF-β)是OA中关键且相互作用的软骨下骨病理特征。体内和体外研究进一步揭示,UCMSCs抑制过度的TGF-β/pSmad2信号传导,以调节异常血管化、成骨细胞凋亡和分化失衡,最终维持骨软骨稳态。结论:通过SC注射UCMSCs治疗OA大鼠的疗效与IA注射相当;且在调节成骨细胞凋亡和TGF-β/pSmad2信号传导方面,SC注射在软骨下骨表型上甚至优于IA注射,提示SC注射UCMSCs是一种潜在且有前景的OA治疗细胞疗法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
与关节内注射相比,软骨下注射人脐带间充质干细胞能否改善骨关节炎,并探讨其潜在的治疗机制。
核心机制
UCMSCs通过抑制成骨细胞凋亡和Smad2依赖性TGF-β信号通路,调节异常血管化和成骨细胞分化失衡,从而维持骨软骨稳态。
主要证据
体内实验显示UCMSCs注射减轻ACLT大鼠软骨退变、软骨下骨丢失、异常血管生成、成骨细胞凋亡及TGF-β/pSmad2表达;体外实验显示UCMSC-CM促进TNFα诱导的MC3T3-E1细胞活力、成骨分化,并抑制凋亡和pSmad2表达。
研究意义
本研究首次证实SC注射UCMSCs治疗OA的疗效与IA相当,且在维持软骨下骨微结构方面更有效,为临床采用不同注射方式应用UCMSCs提供了支持。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

UCMSCs制备与鉴定

确认UCMSCs的间充质干细胞特性,包括表面标志物表达和多向分化潜能。

流式细胞术检测表面标志物CD29、CD90、CD34、CD45;成骨、成脂、成软骨诱导分化,并通过茜素红、油红O、阿尔辛蓝染色确认。

2

ACLT大鼠模型建立及UCMSCs治疗

模拟创伤后OA,评估SC或IA注射UCMSCs的治疗效果。

对雄性SD大鼠进行ACLT手术,术后2周开始每周注射一次UCMSCs或生理盐水(SC或IA),持续3周,再过4周后取材。

3

影像学与组织学评估

评估关节结构、软骨下骨微结构、软骨和滑膜的组织病理学变化。

通过X线、µCT扫描、ABH/OG染色、OARSI评分、滑膜炎评分、IHC和IF染色分析。

4

体外UCMSC-CM对MC3T3-E1细胞的影响

探究UCMSCs旁分泌作用对TNFα诱导的MC3T3-E1成骨细胞活力、分化、凋亡及TGF-β信号的影响。

制备UCMSC-CM,处理MC3T3-E1细胞,进行CCK-8、ALP、ARS、TUNEL、流式细胞术、qRT-PCR和Western blot分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α改良Eagle培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
胎牛血清Sigma--
CD29-PB450抗体BD Biosciences568994
CD90-APC抗体BD Biosciences561971
CD45-FITC抗体BD Biosciences555482
CD34-PE抗体BD Biosciences550761
流式细胞仪(BD Accuri C6)BD--
成骨、成脂、成软骨诱导培养基Thermo Fisher Scientific--
茜素红染色试剂盒Beyotime--
油红O染色试剂盒Beyotime--
阿尔辛蓝染色试剂盒Beyotime--
X射线(Carestream FX Pro)Carestream--
微型CT扫描仪(Skyscan 1275)Bruker--
柠檬酸盐缓冲液Solarbio--
II型胶原抗体Abcamab34712
蛋白聚糖抗体Biossbs-11655R
MMP13抗体Abcamab39012
Adamts5抗体Biossbs-3573R
骨钙素抗体ServiobioGB11233
CD31抗体ArigoARG52748
TGFβ1抗体Proteintech21898-1-AP
pSmad2抗体Thermofisher44-244G
二抗(PV9001)ZSGQ-BIO--
DAB溶液(ZLI-9019)ZSGQ-BIO--
IL-1β抗体Abcamab254360
荧光二抗Thermo Fisher ScientificA31572
DAPISolarbioC0065
光学显微镜(Axioscope A1)Zeiss--
TUNEL检测试剂盒(C1088)Beyotime--
MC3T3-E1细胞ATCC--
肿瘤坏死因子α----
CCK-8试剂Beyotime--
酶标仪Bio-Rad--
β-甘油磷酸----
抗坏血酸----
1-Step NBT/BCIP试剂盒Thermo Fisher Scientific--
茜素红S染色试剂盒Beyotime--
FITC Annexin V凋亡检测试剂盒BD Pharmingen556547
TRIzol试剂Invitrogen--
PrimeScript RT预混液TaKaRa--
SYBR Premix EX Taq试剂盒Takara--
QuantStudio 7 Flex实时荧光定量PCR系统Thermo Fisher Scientific--
RIPA裂解液CW Biotech--
蛋白酶抑制剂混合物Cell Signaling Technology--
Pierce BCA蛋白定量试剂盒Thermo Fisher Scientific--
SDS-PAGE凝胶Epizyme Biotech--
硝酸纤维素膜Millipore--
β-肌动蛋白抗体Proteintech20536-1-AP
ALP抗体ArigoARG57422
Runx2抗体HuabioET1612-47
pSmad2抗体Thermofisher44-244G
Smad2抗体CST5339
LI-COR Odyssey扫描仪LI-COR Biosciences--
Prism 9软件GraphPad--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
UCMSCs培养与鉴定
细胞代数(P2-P6)、培养条件(αMEM+10% FBS,37°C,5% CO2)、流式抗体及其稀释比例、三系分化诱导试剂盒
阅读提示:Materials and methods, 'Human UCMSCs preparation and identification' 部分
ACLT大鼠模型
大鼠品系(Sprague-Dawley)、性别(雄性)、年龄(10周)、体重(300±20 g)、ACLT手术步骤、麻醉剂量(3%戊巴比妥钠40 mg/kg)
阅读提示:Materials and methods, 'Anterior cruciate ligament transection (ACLT) rat model and UCMSCs treatment' 部分
UCMSCs注射
注射途径(SC/IA)、细胞剂量(5×10^5细胞/50 μL)、注射体积(50 μL)、注射频率(每周1次,共3周)、SC注射方法(26G针穿刺,29G微注射针)
阅读提示:Materials and methods, 'Anterior cruciate ligament transection (ACLT) rat model and UCMSCs treatment' 部分,以及Fig. 1A-B
影像学评估
µCT扫描参数(11 μm分辨率,65 kV,80 μA)、ROI选取位置(胫骨内侧平台软骨下骨)、分析软件(NRecon, CTAn, CTVol)
阅读提示:Materials and methods, 'Radiographic (X-ray) and Micro-CT scanning (µCT)' 部分
组织学分析
脱钙条件(14% EDTA,pH 7.4,2个月)、切片厚度(4 μm)、染色方法(ABH/OG, Masson)、OARSI评分系统、滑膜炎评分系统
阅读提示:Materials and methods, 'Histopathological and Immunohistochemical/immunofluorescence analyses' 部分
免疫组织化学/免疫荧光
抗原修复条件(0.01 M柠檬酸盐缓冲液,60°C,4小时)、一抗及稀释比例(Col2, ACAN, MMP13等)、二抗(PV9001)、DAB显色、IF二抗(A31572, 1:1000)、DAPI(1:1000)
阅读提示:Materials and methods, 'Histopathological and Immunohistochemical/immunofluorescence analyses' 部分
体外细胞实验
MC3T3-E1细胞培养条件(αMEM+10% FBS)、TNFα浓度(10 ng/mL)、UCMSC-CM制备(UCMSCs接种密度50-200×10^4细胞/皿,培养48小时)、CCK-8处理时间(24-48小时)、成骨诱导培养基成分(10% FBS, 10 mM β-甘油磷酸, 50 μg/mL抗坏血酸)、ALP染色时间(14天)、ARS染色时间(21天)
阅读提示:Materials and methods, 'Cell culture', 'Conditioned medium (CM) preparation', 'Cell viability assay', 'Osteoblast differentiation analysis', 'Cell apoptosis assays' 部分
分子生物学检测
qRT-PCR引物序列(Ocn, Osx, Runx2, β-actin)、内参基因(β-actin)、Western blot一抗(Alp, Runx2, pSmad2, Smad2, β-actin)及稀释比例
阅读提示:Materials and methods, 'Quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR)' 和 'Western blotting analysis' 部分,及Table 1