HJURP通过MYC/TOP2A转录轴调控胃癌细胞增殖和化疗耐药

HJURP modulates cell proliferation and chemoresistance via the MYC/TOP2A transcriptional axis in gastric cancer.

作者信息Xu Li, Xiwen Li, Yanlin Ren, Ling Wang, Zehao Mao, Shikun Gao, Peng Ma, Junjie Chen
PMID40290723
发布时间2025-04-11
DOI10.3389/fmolb.2025.1566293

实验完整度

研究包含临床样本检测、细胞功能实验(增殖、耐药)和初步机制验证(MYC/TOP2A),但缺乏动物模型和更深入的体内验证。

主要模型

胃癌细胞系HGC-27 胃癌细胞系AGS 胃癌患者组织样本(6对)

重点核对

HJURP表达在TCGA-STAD和内部患者组中升高,需验证组织样本的配对情况 si-HJURP#2敲低效率及Flag-HJURP过表达效率验证 DDP处理浓度(1 μg/mL)和处理时间(2 h)对化疗耐药评估的影响 MYC过表达对HJURP敲低后TOP2A恢复的依赖性

摘要

背景:组蛋白伴侣Holliday Junction识别蛋白(HJURP)与多种癌症相关,但其在胃癌(GC)中的作用尚未完全阐明。鉴于其在着丝粒稳定性和DNA修复中的功能,研究HJURP在GC中的作用可能提供新的治疗视角。方法:利用TCGA-STAD数据集和一组内部GC患者样本,通过RNA测序和Western blot检测HJURP表达。在AGS和HGC-27 GC细胞系中进行功能实验。通过实时定量PCR和Western blot评估HJURP、MYC和拓扑异构酶IIα(TOP2A)的表达水平。通过EdU、CCK-8和集落形成实验测定细胞增殖率。结果:与邻近正常组织相比,GC组织中HJURP表达显著升高,这一发现在TCGA-STAD数据库和内部患者组中均一致。沉默HJURP显著降低GC细胞生长和化疗耐药。机制上,HJURP增强MYC稳定性,进而促进TOP2A转录。拯救实验证实,TOP2A过表达改变HJURP敲低的GC细胞的增殖和化疗耐药,表明该轴依赖于MYC活性。结论:本研究表明HJURP通过调控MYC/TOP2A转录网络对促进GC增殖和化疗耐药至关重要。靶向HJURP可能为GC提供新的治疗途径,需要进一步探索其临床潜力。这项工作强调了研究组蛋白伴侣作为癌症治疗潜在靶点的价值。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
HJURP在胃癌中的表达模式、功能作用及其是否通过MYC/TOP2A轴调节增殖和化疗耐药。
核心机制
HJURP通过增强MYC蛋白稳定性,进而促进TOP2A转录,形成HJURP-MYC-TOP2A轴,促进胃癌细胞增殖和化疗耐药。
主要证据
TCGA和GEO数据显示HJURP在GC中高表达;细胞实验显示HJURP敲低抑制增殖并降低耐药,过表达增强增殖和耐药;机制实验表明HJURP影响MYC和TOP2A表达,且TOP2A回补部分恢复HJURP敲低表型。
研究意义
HJURP-MYC-TOP2A轴可能成为胃癌治疗的潜在靶点,需进一步探索其临床潜力。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本和数据库分析HJURP表达

评估HJURP在胃癌组织和细胞中的表达水平及其与肿瘤特征的相关性。

利用TCGA-STAD和GEO数据库分析HJURP表达,通过Western blot检测6对临床样本和多种GC细胞系中HJURP蛋白水平。

2

HJURP对胃癌细胞增殖的影响

验证HJURP表达变化(敲低和过表达)对胃癌细胞增殖能力的影响。

通过siRNA敲低HJURP和Flag-HJURP过表达载体转染HGC-27和AGS细胞,采用CCK-8、EdU和集落形成实验检测细胞增殖。

3

HJURP对化疗耐药的影响

评估HJURP过表达对胃癌细胞顺铂敏感性的影响。

用Flag-HJURP或对照载体转染细胞,并用DDP处理,通过集落形成实验和γ-H2AX Western blot评估细胞活力和DNA损伤。

4

HJURP调控TOP2A表达

确定HJURP是否影响TOP2A的表达水平。

通过敲低或过表达HJURP,用RT-qPCR和Western blot检测TOP2A mRNA和蛋白水平变化。

5

验证MYC介导HJURP对TOP2A的调控

验证HJURP通过MYC影响TOP2A表达的机制。

在AGS细胞中同时转染HJURP siRNA和MYC过表达质粒,检测MYC和TOP2A表达变化;分析TCGA数据中的相关性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RNA稳定液ThermoFisherAM7021
RPMI-1640培养基----
胎牛血清Clark--
青霉素-链霉素Life Technologies--
RNA提取试剂VazymeR401-01
HiScript III逆转录预混液VazymeR23-01
SYBR qPCR预混液VazymeQ711-02/03
QuantStudio 5实时荧光定量PCR仪Thermo Fisher Scientific--
RIPA裂解液Epizyme--
Omni-Rapid™蛋白定量试剂盒Epizyme--
GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
HJURP抗体Proteintech15283-1-AP
TOP2A抗体Proteintech66541-1-Ig
磷酸化H2AX抗体Biossbs-3185R
MYC抗体R&D SystemsMAB3696
顺铂----
Polyplus jetPRIME转染试剂Polyplus--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床样本收集
样本数量(6对)、收集时间(2023年1月至12月)、患者入组标准(未接受化疗等)
阅读提示:Methods 2.1 Patients and tissue samples
细胞培养
细胞系来源(HGC-27、AGS等)、培养基(RPMI-1640)、血清浓度(10%)及抗生素浓度
阅读提示:Methods 2.2 Cell culture
siRNA转染和过表达
siRNA序列(si-HJURP#2)、转染试剂(jetPRIME)、细胞密度(1×10^5/孔)、转染时间(48小时)
阅读提示:Methods 2.7 Small interfering RNA (siRNA) and overexpression vector experiments
化疗耐药实验
DDP浓度(1 μg/mL)、处理时间(2小时)、集落形成实验条件
阅读提示:Methods 2.5 Cell proliferation assays
分子表达检测
抗体来源和稀释度(文中未明确说明)、qRT-PCR引物序列
阅读提示:Methods 2.4 Western blot analysis and Methods 2.3 RNA extraction and quantitative real-time PCR