荷瘤小鼠模型构建及不同序贯治疗
比较不同给药顺序的抗PD-L1和抗VEGFR2治疗对肿瘤生长的影响。
LLC细胞皮下接种至C57BL/6小鼠建立异种移植瘤模型,按不同时间顺序注射抗PD-L1抗体和抗VEGFR2抗体,监测肿瘤体积。
Sequential treatment of anti-PD-L1 therapy prior to anti-VEGFR2 therapy contributes to more significant clinical benefits in non-small cell lung cancer.
包含荷瘤小鼠模型不同给药顺序的体内比较、免疫组化和流式细胞术分析、肿瘤再移植实验、荟萃分析及临床病例回顾。
LLC荷瘤小鼠模型 肿瘤组织再移植小鼠模型 NSCLC患者 临床队列
治疗分组:PBS对照、AA-ICB序贯、ICB-AA序贯、同步给药四组,每组n=3 给药剂量:抗VEGFR2抗体10 mg/kg,抗PD-L1抗体100 μg/只,每2天通过尾静脉注射 给药时间:治疗于肿瘤接种后7天开始,各治疗组给药天数有具体安排 检测时间:治疗后21天获取肿瘤样本进行流式细胞术和免疫组化
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
比较不同给药顺序的抗PD-L1和抗VEGFR2治疗对肿瘤生长的影响。
LLC细胞皮下接种至C57BL/6小鼠建立异种移植瘤模型,按不同时间顺序注射抗PD-L1抗体和抗VEGFR2抗体,监测肿瘤体积。
评估不同序贯治疗对肿瘤微血管密度、血管正常化及免疫细胞浸润的影响。
治疗结束后取肿瘤组织,通过免疫组化检测CD31、NG2、HIF-1α、PD-L1表达,通过流式细胞术分析肿瘤浸润免疫细胞群。
验证不同序贯治疗对肿瘤复发和长期效应的影响。
将从各处理组收获的肿瘤组织切块(直径约2mm)移植到未接种的小鼠右腋下,监测肿瘤生长并分析免疫细胞和血管标记。
验证动物实验发现的给药顺序对临床疗效的影响。
回顾性收集接受不同顺序ICB和AA治疗的NSCLC患者数据,并系统检索数据库进行荟萃分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| MycoBlue试剂盒 | FuHeng | -- | |
| 动物实验 | 抗VEGFR2抗体(DC101) | BioXCell | BE0060 |
| 抗PD-L1抗体(B7-H1) | BioXCell | BE0101 | |
| 流式细胞术 | IV型胶原酶 | Worthington | -- |
| Percoll | Cytiva | -- | |
| 固定/破膜缓冲液 | BD Biosciences | -- | |
| CytoFlex LX流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- | |
| 抗CD45抗体 | BD Biosciences | 557659 | |
| 抗CD3e抗体 | BD Biosciences | 553061 | |
| 抗CD4抗体 | BD Biosciences | 553051 | |
| 抗CD8a抗体 | BD Biosciences | 551162 | |
| 抗CD25抗体 | BD Biosciences | 553075 | |
| 抗Foxp3抗体 | BD Biosciences | 562996 | |
| 抗F4/80抗体 | BD Biosciences | 565410 | |
| 抗CD16/CD32抗体 | BD Biosciences | 553141 | |
| 抗CD11b抗体 | BioLegend | 557396 | |
| 抗PD-1抗体 | BioLegend | 135216 | |
| 抗Ly-6G/Ly-6C抗体 | BioLegend | 108416 | |
| 抗CD206抗体 | BioLegend | 141708 | |
| 免疫组化 | 柠檬酸钠缓冲液 | Biosharp | -- |
| 内源性过氧化物酶阻断缓冲液 | Biyuntian | -- | |
| 牛血清白蛋白 | -- | -- | |
| 抗小鼠CD31抗体 | Bioss | -- | |
| 抗NG2抗体 | Affinity Biosciences | -- | |
| 抗HIF-1α抗体 | Bioss | -- | |
| 抗PD-L1抗体 | Bioss | -- | |
| 抗小鼠/兔免疫组化二抗 | Bioss | -- | |
| DAB底物试剂盒 | Solarbio | -- | |
| Leica DM2000显微镜 | Leica | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型构建与分组 | 小鼠品系、周龄、性别、细胞系、细胞数量、接种部位、分组(四组)及每组样本量(n=3)。 阅读提示:见Materials and methods中的“Lung cancer cell lines”和“The xenograft tumor mouse model”小节。 |
| 药物给药方案 | 药物名称、剂量(抗VEGFR2 10 mg/kg,抗PD-L1 100 μg/只)、给药途径(尾静脉)、给药频率(每2天)、给药开始时间(接种后第7天)和具体天数。 阅读提示:见Materials and methods中的“Administration of therapeutic drugs”小节及图1A。 |
| 肿瘤样本处理与分析 | 治疗结束时肿瘤采集时间(治疗后21天)、样本分配比例(40%流式、40%病理、20%冷冻)、消化酶浓度和时间、Percoll梯度离心条件、抗体信息及浓度(部分未明确)。 阅读提示:见Materials and methods中的“Flow cytometry assay”和“Immunohistochemistry assay”小节。 |
| 再移植实验 | 肿瘤组织块大小(直径约2mm)、移植受体鼠周龄、监测时间和终点(肿瘤体积达2000 mm3处死)。 阅读提示:见Materials and methods中的“The xenograft tumor mouse model”小节及图4A。 |
| 统计学分析 | 统计方法(unpaired/paired Student t test, one-way ANOVA, Kaplan-Meier survival analysis),显著性标准(P<0.05),数据表示(Mean ± SEM)。 阅读提示:见Materials and methods中的“Statistical analysis”小节。 |