先抗PD-L1治疗后抗VEGFR2治疗对非小细胞肺癌的临床获益更显著

Sequential treatment of anti-PD-L1 therapy prior to anti-VEGFR2 therapy contributes to more significant clinical benefits in non-small cell lung cancer.

作者信息Qiao-Xin Lin, Wen-Wen Song, Wen-Xia Xie, Yi-Ting Deng, Yan-Na Gong, Yi-Ru Liu, Yi Tian, Wen-Ya Zhao, Ling Tian, Dian-Na Gu
PMID39561585
期刊Neoplasia
发布时间2025-01
DOI10.1016/j.neo.2024.101077

实验完整度

包含荷瘤小鼠模型不同给药顺序的体内比较、免疫组化和流式细胞术分析、肿瘤再移植实验、荟萃分析及临床病例回顾。

主要模型

LLC荷瘤小鼠模型 肿瘤组织再移植小鼠模型 NSCLC患者 临床队列

重点核对

治疗分组:PBS对照、AA-ICB序贯、ICB-AA序贯、同步给药四组,每组n=3 给药剂量:抗VEGFR2抗体10 mg/kg,抗PD-L1抗体100 μg/只,每2天通过尾静脉注射 给药时间:治疗于肿瘤接种后7天开始,各治疗组给药天数有具体安排 检测时间:治疗后21天获取肿瘤样本进行流式细胞术和免疫组化

摘要

目的:抗血管生成治疗和免疫检查点阻断治疗目前是非小细胞肺癌的重要治疗方法。然而,这两种疗法的联合使用存在争议,且很少有研究探讨这两种疗法不同时间顺序对治疗结果的影响。方法:建立荷瘤小鼠模型,将小鼠分为四组,包括AA-ICB序贯组、ICB-AA序贯组、同步组和对照组。采用免疫组织化学评估肿瘤微血管和PD-L1表达。采用流式细胞术评估选定的免疫细胞群。采用荟萃分析和临床信息阐明给药顺序的临床效果。结果:我们发现抗PD-L1治疗随后抗VEGFR2治疗对肿瘤生长具有最佳的抑制作用。抗血管生成治疗和免疫检查点阻断治疗的不同顺序导致肿瘤微环境中肿瘤微血管和免疫细胞群比例不同。我们进一步揭示,在抗VEGFR之前给予抗PD-L1可带来更多肿瘤血管正常化和CD8+T细胞浸润,并减少肿瘤微环境中的免疫抑制细胞。随后的再移植实验证实了该治疗策略的长期获益。荟萃分析进一步证实,在晚期非小细胞肺癌中,免疫治疗先于抗血管生成治疗或联合治疗具有更好的治疗效果。结论:我们的研究表明,免疫检查点治疗后的抗血管生成治疗的效果优于同期治疗,而抗血管生成治疗后进行免疫治疗并未比单独单药治疗带来更显著的临床获益。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
不同给药顺序(抗血管生成治疗与免疫检查点阻断治疗)对非小细胞肺癌治疗效果的影响。
核心机制
免疫检查点阻断先于抗血管生成治疗可促进肿瘤血管正常化、增加CD8+T细胞浸润并减少免疫抑制细胞(Treg、MDSC、M2-TAM),从而增强抗肿瘤免疫。
主要证据
LLC荷瘤小鼠模型中,ICB-AA序贯组肿瘤生长抑制最显著,免疫组化显示微血管密度降低、NG2/CD31比值升高、HIF-1α表达降低,流式细胞术显示CD8+T细胞比例升高、Treg、MDSC、M2-TAM比例降低;再移植实验证实长期获益;荟萃分析显示ICB-AA序贯或联合治疗相比单药改善OS和PFS。
研究意义
ICB-AA序贯治疗策略为临床应用中抗VEGFR抗体和抗PD-L1抗体的使用顺序提供了理论依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

荷瘤小鼠模型构建及不同序贯治疗

比较不同给药顺序的抗PD-L1和抗VEGFR2治疗对肿瘤生长的影响。

LLC细胞皮下接种至C57BL/6小鼠建立异种移植瘤模型,按不同时间顺序注射抗PD-L1抗体和抗VEGFR2抗体,监测肿瘤体积。

2

肿瘤微环境和血管状态分析

评估不同序贯治疗对肿瘤微血管密度、血管正常化及免疫细胞浸润的影响。

治疗结束后取肿瘤组织,通过免疫组化检测CD31、NG2、HIF-1α、PD-L1表达,通过流式细胞术分析肿瘤浸润免疫细胞群。

3

肿瘤组织再移植实验

验证不同序贯治疗对肿瘤复发和长期效应的影响。

将从各处理组收获的肿瘤组织切块(直径约2mm)移植到未接种的小鼠右腋下,监测肿瘤生长并分析免疫细胞和血管标记。

4

临床数据和荟萃分析

验证动物实验发现的给药顺序对临床疗效的影响。

回顾性收集接受不同顺序ICB和AA治疗的NSCLC患者数据,并系统检索数据库进行荟萃分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素Gibco--
MycoBlue试剂盒FuHeng--
抗VEGFR2抗体(DC101)BioXCellBE0060
抗PD-L1抗体(B7-H1)BioXCellBE0101
IV型胶原酶Worthington--
PercollCytiva--
固定/破膜缓冲液BD Biosciences--
CytoFlex LX流式细胞仪Beckman Coulter--
抗CD45抗体BD Biosciences557659
抗CD3e抗体BD Biosciences553061
抗CD4抗体BD Biosciences553051
抗CD8a抗体BD Biosciences551162
抗CD25抗体BD Biosciences553075
抗Foxp3抗体BD Biosciences562996
抗F4/80抗体BD Biosciences565410
抗CD16/CD32抗体BD Biosciences553141
抗CD11b抗体BioLegend557396
抗PD-1抗体BioLegend135216
抗Ly-6G/Ly-6C抗体BioLegend108416
抗CD206抗体BioLegend141708
柠檬酸钠缓冲液Biosharp--
内源性过氧化物酶阻断缓冲液Biyuntian--
牛血清白蛋白----
抗小鼠CD31抗体Bioss--
抗NG2抗体Affinity Biosciences--
抗HIF-1α抗体Bioss--
抗PD-L1抗体Bioss--
抗小鼠/兔免疫组化二抗Bioss--
DAB底物试剂盒Solarbio--
Leica DM2000显微镜Leica--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型构建与分组
小鼠品系、周龄、性别、细胞系、细胞数量、接种部位、分组(四组)及每组样本量(n=3)。
阅读提示:见Materials and methods中的“Lung cancer cell lines”和“The xenograft tumor mouse model”小节。
药物给药方案
药物名称、剂量(抗VEGFR2 10 mg/kg,抗PD-L1 100 μg/只)、给药途径(尾静脉)、给药频率(每2天)、给药开始时间(接种后第7天)和具体天数。
阅读提示:见Materials and methods中的“Administration of therapeutic drugs”小节及图1A。
肿瘤样本处理与分析
治疗结束时肿瘤采集时间(治疗后21天)、样本分配比例(40%流式、40%病理、20%冷冻)、消化酶浓度和时间、Percoll梯度离心条件、抗体信息及浓度(部分未明确)。
阅读提示:见Materials and methods中的“Flow cytometry assay”和“Immunohistochemistry assay”小节。
再移植实验
肿瘤组织块大小(直径约2mm)、移植受体鼠周龄、监测时间和终点(肿瘤体积达2000 mm3处死)。
阅读提示:见Materials and methods中的“The xenograft tumor mouse model”小节及图4A。
统计学分析
统计方法(unpaired/paired Student t test, one-way ANOVA, Kaplan-Meier survival analysis),显著性标准(P<0.05),数据表示(Mean ± SEM)。
阅读提示:见Materials and methods中的“Statistical analysis”小节。