建立FMR诱导的TMJ退变模型并评估表型
验证机械压缩是否导致TMJ退变和软骨细胞肥大
对SD大鼠实施FMR,2周和4周后收集TMJ髁状突,通过Safranin O/Fast Green染色评估软骨降解,micro-CT评估软骨下骨吸收,H&E和免疫组化检测软骨细胞肥大。
Mechanical compression induces chondrocyte hypertrophy by regulating Runx2 O-GlcNAcylation during temporomandibular joint condyle degeneration.
结合FMR诱导的SD大鼠TMJ退变模型与体外软骨细胞机械压缩模型,运用组织化学染色、micro-CT、免疫组化/免疫荧光、共免疫沉淀、免疫印迹、荧光素酶报告基因和qRT-PCR进行多层级验证。
SD大鼠TMJ退变模型 原代大鼠TMJ髁状突软骨细胞
SD大鼠FMR模型及对照组,压缩2周和4周 体外软骨细胞机械压缩:50-400 kPa,0.1 Hz,持续3天 OSMI-1(20 μM)或WZB117(40 μM)体外处理 大鼠关节内注射OSMI-1(10 mg/ml,0.5 ml/侧)或WZB117(10 mg/ml,1 ml/侧),每日一次 qRT-PCR、Western blot、免疫组化、免疫荧光、共免疫沉淀和荧光素酶报告基因检测
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证机械压缩是否导致TMJ退变和软骨细胞肥大
对SD大鼠实施FMR,2周和4周后收集TMJ髁状突,通过Safranin O/Fast Green染色评估软骨降解,micro-CT评估软骨下骨吸收,H&E和免疫组化检测软骨细胞肥大。
验证O-GlcNAc修饰是否参与软骨细胞肥大
通过免疫组化检测RL2整体O-GlcNAc水平,并给予OSMI-1关节内注射,评估O-GlcNAc抑制对肥大标志物和软骨细胞肥大的影响。
验证压缩直接诱导软骨细胞肥大,并探讨O-GlcNAc修饰对Runx2和Sox9的调控
分离大鼠TMJ软骨细胞,经NK-P40压缩仪施加不同强度压缩,检测肥大和软骨形成标志物,并通过共免疫沉淀、双免疫荧光、荧光素酶报告基因检测Runx2和Sox9的O-GlcNAc修饰及转录活性,使用Thiamet G和OSMI-1验证,并使用Runx2 shRNA敲低验证下游效应。
验证GLUT1上调是否为压缩诱导O-GlcNAc和肥大的关键
检测GLUT1在体内和体外压缩模型中的表达,给予WZB117抑制GLUT1,评估O-GlcNAc水平和软骨细胞肥大变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | α改良Eagle培养基 | Invitrogen (Thermo Fisher Scientific) | -- |
| 杜氏改良Eagle培养基 | Invitrogen (Thermo Fisher Scientific) | -- | |
| 胎牛血清 | Invitrogen (Thermo Fisher Scientific) | -- | |
| Western blot | 抗Runx2抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-86506 |
| 抗Col X抗体 | Thermo Fisher Scientific | 14-9771-82 | |
| 抗Col II抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-99159 | |
| 抗Sox9抗体 | Thermo Fisher Scientific | 14-9765-82 | |
| 抗RL2抗体 | Thermo Fisher Scientific | MA1-072 | |
| 抗GLUT1抗体 | Thermo Fisher Scientific | MA5-31960 | |
| 抗ALP抗体 | Abcam | ab229126 | |
| 抗聚集蛋白聚糖抗体 | Abcam | ab313636 | |
| 抗GAPDH抗体 | Beyotime | -- | |
| 组织染色 | HE染色试剂盒 | Beyotime | C0105S |
| 番红O/固绿染色试剂盒 | Bioss Antibodies | S0335 | |
| 微CT扫描 | PerkinElmer Quantum GX2 | PerkinElmer | -- |
| 免疫组化/免疫荧光 | HRP标记的山羊抗兔IgG多克隆抗体 | -- | -- |
| 免疫荧光 | 抗IgG-异硫氰酸荧光素和IgG-Texas Red | -- | -- |
| DAPI | -- | -- | |
| 明胶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| Triton X-100 | Fisher | -- | |
| 牛血清白蛋白 | -- | -- | |
| 机械压缩 | NK-P40 | Naturethink | -- |
| 药物处理 | OSMI-1 | Sigma | SML1621 |
| WZB117 | Sigma | SML0621 | |
| RNA提取 | RNA纯化试剂盒 | Corning | -- |
| 逆转录 | PrimeScript RT试剂盒 | TaKaRa | -- |
| qRT-PCR | SYBR Premix Ex Taq | Takara | -- |
| LightCycler 96系统 | Roche | -- | |
| 免疫共沉淀 | 蛋白G琼脂糖 | Santa Cruz Biotechnology | -- |
| 蛋白质定量 | BCA蛋白定量分析 | -- | -- |
| 荧光素酶报告基因检测 | 荧光素酶检测系统 | Promega | -- |
| Berthold Lumat LB 9507发光检测仪 | Berthold Technologies | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 6周龄SD雄性大鼠;FMR干预2周或4周;液体饮食;样本量每组2-4只 阅读提示:Methods, Animal model establishment |
| 组织学染色 | 4%多聚甲醛固定,4% EDTA脱钙4周,5 μm切片;Safranin O/Fast Green和H&E染色 阅读提示:Methods, H&E and Safranin O/Fast Green staining |
| micro-CT分析 | 扫描参数70 kV, 60 μA,曝光4000 ms,分辨率12 μm;参数BMD, BV/TV, Tb.N, Tb.Th, Tb.Sp 阅读提示:Methods, Micro-CT scanning |
| 体外机械压缩 | 分离软骨细胞,0.5% II型胶原酶处理4小时;α-MEM含15% FBS培养;压缩强度50-400 kPa,0.1 Hz,持续3天 阅读提示:Methods, Primary culture and mechanical compression of TMJ condyle chondrocytes |
| 药物干预 | OSMI-1(体外20 μM,体内关节内注射10 mg/ml,0.5 ml/侧);WZB117(体外40 μM,体内10 mg/ml,1 ml/侧);每日一次 阅读提示:Methods, Intra-articular administration of OSMI-1 or WZB117 |
| 分子检测 | qRT-PCR引物序列;Western blot抗体稀释度1:1000;共免疫沉淀使用Runx2或Sox9抗体;荧光素酶报告基因p-4Col2a1-luc和p-6OSE2-luc 阅读提示:Methods, qRT-PCR, Co-immunoprecipitation and immunoblotting, Luciferase reporter gene assay |