牦牛与犏牛支持细胞差异表达基因的比较RNA-Seq分析

Comparative RNA-Seq analysis of differentially expressed genes in the sertoli cells of yak and cattle-yak.

作者信息Xue-Mei Chen, Ming-Xiu Wang, Peng Zhang, Ke-Min Jing, Bing-Lin Yue, Zhi-Juan Wu, Zhi-Xin Chai, Xin-Rui Liu, Jin-Cheng Zhong, Xin Cai
PMID39987073
发布时间2025-02-22
DOI10.1186/s12917-025-04540-2

实验完整度

研究包含支持细胞分离鉴定、转录组测序、GO/KEGG分析及RT-qPCR和Western blot验证,但缺乏深入的功能验证实验,样本量小。

主要模型

牦牛睾丸支持细胞 犏牛睾丸支持细胞

重点核对

样本来源:3头24月龄犏牛和3头牦牛(迈瓦品种),来自同一牧场 支持细胞分离:混合酶消化、差速贴壁、血清饥饿处理 细胞鉴定:GATA-4和SOX9免疫荧光染色确认细胞纯度>90% 测序数据质量控制:剔除YST3样本,组内重复性通过Pearson相关分析验证 差异表达基因筛选阈值:padj≤0.05且|log2FC|≥1

摘要

背景:为研究犏牛雄性不育问题并改善牦牛杂交育种,本研究获取了牦牛和犏牛的睾丸支持细胞,并比较了两个牛种在转录组水平上的差异。采集了3头健康雄性犏牛和3头F1代雄性牦牛(应为犏牛?原文如此)在24月龄时的睾丸组织。经酶消化、差速贴壁和饥饿处理后分离支持细胞。使用GATA-4和SOX9免疫荧光染色鉴定细胞类型。对支持细胞进行转录组测序、GO分析、KEGG分析,并通过RT-qPCR和Western blotting验证差异表达基因。结果:本研究成功分离纯化了牦牛和犏牛的支持细胞。对转录组测序数据进行了比较、分析和注释。与牦牛支持细胞相比,犏牛支持细胞中鉴定出6592个差异表达基因,其中3007个基因上调,3585个基因下调。GO分析表明,上调基因可能主要涉及翻译、肽生物合成过程、酰胺生物合成过程、肽代谢过程、核糖体、细胞质部分、核糖体结构组成、结构分子活性、内膜系统、蛋白激酶活性和磷酸转移酶活性等过程。下调基因似乎主要涉及蛋白质磷酸化、磷酸化、内膜系统、蛋白激酶活性和磷酸转移酶活性。KEGG分析比较了316条通路中的差异基因,其中8条通路显著富集。上调通路可能在犏牛支持细胞中富集,包括核糖体、产热和氧化磷酸化,而下调通路似乎在粘附连接、mTOR信号通路、AMPK信号通路、FoxO信号通路和粘着斑中显著富集。与牦牛支持细胞相比,ISOC2、RPL27A和FISI在犏牛中高表达,RT-qPCR分析证实了这一点。PDPN、SORBS2、TF、PLSCR1、TJP2、KIF2C、ITGA3、SMTNL2、DSP、ADGRG1、DDR1、GSK3A、RBBP6、ZC3H15和Claudin 11在犏牛中表达水平较低。结论:与牦牛支持细胞相比,犏牛支持细胞中与蛋白质激活、细胞功能和膜性细胞器组成相关的基因表达似乎异常。犏牛支持细胞的潜在缺陷可能阻碍精子发生适宜环境的建立,这可能是导致雄性犏牛不育的因素之一。Claudin-11可能是进一步研究犏牛雄性不育的潜在重要基因。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
牦牛与犏牛支持细胞在转录组水平上的差异及其与犏牛雄性不育的关系。
核心机制
犏牛支持细胞中与蛋白激活、细胞功能及膜性细胞器组成相关的基因表达异常,可能影响精子发生微环境的建立,导致雄性不育。
主要证据
RNA-Seq鉴定6592个差异表达基因,GO/KEGG分析显示上调基因富集于核糖体、氧化磷酸化等通路,下调基因富集于mTOR、AMPK等通路;RT-qPCR验证关键基因,Western blot显示Claudin11表达降低。
研究意义
研究揭示了犏牛支持细胞的潜在缺陷,为理解犏牛雄性不育提供了基础,Claudin11可能是进一步研究的关键基因。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

支持细胞分离与培养

获取高纯度的牦牛和犏牛睾丸支持细胞。

采集睾丸组织,经混合酶消化、过滤、离心、差速贴壁、血清饥饿处理获得支持细胞,并培养观察。

2

支持细胞鉴定

验证分离的细胞是否为支持细胞并评估纯度。

采用油红O染色和GATA-4、SOX9免疫荧光染色鉴定细胞类型和纯度。

3

转录组测序与差异表达分析

比较牦牛和犏牛支持细胞的转录组差异。

提取总RNA,进行转录组测序,分析差异表达基因。

4

RT-qPCR验证

验证RNA-Seq结果的可靠性。

对17个差异表达基因进行RT-qPCR验证。

5

Western blot检测Claudin11蛋白表达

验证Claudin11在蛋白水平的差异表达。

提取蛋白,用Western blot检测Claudin11的表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
样本采集
动物年龄(24月龄)、品种(迈瓦),样本量n=3,动物饲养条件
阅读提示:Methods: 'Isolation and culture of sertoli cells...'
细胞分离与培养
酶消化时间(30-40 min)、差速贴壁时间(24h)、血清饥饿时间(48h)
阅读提示:Methods: 'Isolation and culture of sertoli cells...'
细胞鉴定
抗体稀释度(GATA-4: 1:150, SOX9: 1:200),固定和透化条件
阅读提示:Methods: 'GATA-4 and SOX9 immunofluorescence staining...'
转录组测序
RNA质量阈值,测序平台(NovaSeq 6000),文库构建试剂盒
阅读提示:Methods: 'Transcriptome sequencing'
RT-qPCR
引物序列(见表1),扩增条件(退火58°C),定量方法(2^-ΔΔCt)
阅读提示:Methods: 'Reverse transcription quantitative real-time PCR...' 及表1
Western blot
蛋白上样量(15 µg),一抗浓度(1:1000),二抗孵育时间
阅读提示:Methods: 'Western blotting...'