体外验证LF对PEDV复制的影响
探究LF是否通过作用于宿主细胞而非病毒直接抑制PEDV复制。
将Vero E6细胞与不同浓度LF(100, 250, 500 µg/mL)预孵育,然后感染PEDV(104 PFU/mL),通过RT-qPCR和蚀斑实验检测病毒RNA和滴度。
Lactoferrin exhibits PEDV antiviral activity by interfering with spike-heparan sulfate proteoglycans binding and activating mucosal immune response.
研究包含细胞模型(Vero E6)和动物模型(新生仔猪),并进行分子对接、SPR、功能验证(LF突变体)及免疫细胞功能实验,多层次验证机制。
Vero E6细胞 新生仔猪(PEDV感染模型) 猪骨髓来源树突状细胞 猪T淋巴细胞
LF浓度(100, 250, 500 µg/mL)及LF抑制剂浓度(1, 25, 50 µM)对PEDV复制的影响 LF在PEDV感染前1小时口服给药,剂量为100, 200, 400 mg/kg PEDV接种剂量:104 PFU/mL LF突变体(L1963和L1641)对结合HSPG及抑制PEDV复制的影响 HSPG与LF的KD值(1.027 × 10-6 M)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究LF是否通过作用于宿主细胞而非病毒直接抑制PEDV复制。
将Vero E6细胞与不同浓度LF(100, 250, 500 µg/mL)预孵育,然后感染PEDV(104 PFU/mL),通过RT-qPCR和蚀斑实验检测病毒RNA和滴度。
确认HSPG作为PEDV附着受体,促进病毒复制。
通过免疫荧光观察HSPG分布及其与PEDV共定位,SPR检测PEDV S蛋白与HSPG结合,使用HSPG抑制剂(肝素)处理,评估对PEDV复制的影响。
确定LF结合HSPG的具体位点,并证明竞争性抑制PEDV结合。
通过免疫荧光和SPR证实LF与HSPG结合,分子对接预测结合位点,构建LF突变体(L1963, L1641等),检测突变体对PEDV复制的影响及与HSPG的结合。
评估LF口服给药对PEDV感染新生仔猪的临床保护和抗病毒效果。
新生仔猪分组(PBS对照,PBS+PEDV,LF1-3组)在PEDV感染前1小时口服LF或PBS,感染后观察腹泻评分,收集粪便和肠道组织检测病毒载量和病理变化。
探究LF是否促进DC成熟,增强其抗原呈递能力,从而增强黏膜免疫。
从猪骨髓诱导分化和猪肠系膜淋巴结分离DC和T细胞,用不同浓度LF处理DC,流式检测成熟标志物(MHCII, CD40, CD80),RT-qPCR和ELISA检测IL-1β和IL-6,混合淋巴细胞反应评估DC诱导T细胞增殖能力。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 病毒复制实验 | Vero E6细胞 | -- | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 病毒复制抑制实验 | 乳铁蛋白抑制剂 | -- | -- |
| 细胞毒性检测 | CCK-8试剂盒 | -- | -- |
| 免疫荧光实验 | 兔抗HSPG抗体 | Bioss | bs-5072R |
| 小鼠抗PEDV(PEDV-N)抗体 | Medgenelabs Biological | -- | |
| Alexa Fluor 594标记的山羊抗兔IgG | Bioss | bs-0295G-AF594 | |
| FITC标记的山羊抗小鼠IgG | Bioss | bs-0296G-FITC | |
| DAPI | -- | -- | |
| 小鼠抗乳铁蛋白抗体 | Bioss | bsm-51024M | |
| 分子克隆 | Mut Express® II快速突变试剂盒V2 | Vazyme | C214-01 |
| 树突状细胞培养 | 猪粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子 | -- | -- |
| 猪白细胞介素-4 | -- | -- | |
| 流式细胞术 | APC标记的MHC-II抗体 | Bio-Rad | MCA2314F |
| PE标记的CD40抗体 | eBioscience | 12-0401-82 | |
| PE标记的CD80抗体 | eBioscience | 12-0801-82 | |
| 混合淋巴细胞反应 | CFSE荧光染料 | BD | 565082 |
| 表面等离子共振 | Biacore ATC-018 S200系统 | GE Healthcare | -- |
| RNA提取 | Trizol试剂 | -- | -- |
| 紫外分光光度计 | Thermo Scientific™ | 840-317400 | |
| 反转录 | HiScript TM QRT SuperMix试剂盒 | -- | -- |
| 蛋白印迹 | RIPA裂解缓冲液 | -- | -- |
| 动物实验 | BALB/c小鼠 | -- | -- |
| PEDV毒株 | -- | -- | |
| 细胞培养 | 肝素 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外病毒复制抑制实验 | Vero E6细胞,LF预孵育浓度(100, 250, 500 µg/mL),LF抑制剂浓度(1, 25, 50 µM),PEDV感染剂量(104 PFU/mL),孵育时间(1小时,4°C和37°C),培养时间(24小时) 阅读提示:Materials and methods: Effects of HSPG or LF on PEDV replication |
| 分子对接及突变体验证 | LF与HSPG结合位点(PRO1963, PHE1641, GLN1607等),突变体构建,突变体对PEDV复制的影响 阅读提示:Materials and methods: Screening of interaction sites between LF and HSPG; Results: LF inhibited PEDV replication by binding to HSPG |
| 动物实验 | 仔猪品系(Duroc×Landrace×Large White),日龄(5日龄),LF剂量(100, 200, 400 mg/kg),给药方式(口服),PEDV接种剂量(104 PFU/mL),时间(感染前1小时),观察时间(48小时),腹泻评分标准 阅读提示:Materials and methods: Experimental animals and grouping; Results: Effect of LF on PEDV replication |
| 树突状细胞成熟实验 | 骨髓来源DC,诱导因子浓度(GM-CSF 20 ng/mL, IL-4 10 ng/mL),诱导时间(6天),LF处理浓度,成熟标志物(MHCII, CD40, CD80) 阅读提示:Materials and methods: Isolation of porcine dendritic cells; Effect of LF on DCs phenotype and cytokine secretion |
| 混合淋巴细胞反应 | DC与T细胞比例(1:1或1:5),共培养时间(5天),CFSE标记浓度 阅读提示:Materials and methods: Mixed lymphocyte assay |